Biogenesis of the sperm head perinuclear theca during human spermiogenesis

We analyzed the appearance and localization of the sub-acrosomal perinuclear theca (PT) during human spermiogenesis. The PT is tightly associated with acrosomal biogenesis.Fil: Alvarez Sedó, Cristian. Centro de Estudios en Ginecología y Reproducción; ArgentinaFil: Oko, Richard. Queens University; CanadáFil: Sutovsky, Peter. University of Missouri; Estados UnidosFil: Chemes, Hector Edgardo. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Parque Centenario. Centro de Investigaciones Endocrinológicas "Dr. César Bergada". Gobierno de la Ciudad de Buenos Aires. Centro de Investigaciones Endocrinológicas "Dr. César Bergada". Fundación de Endocrinología Infantil. Centro de Investigaciones Endocrinológicas "Dr. César Bergada"; ArgentinaFil: Rawe, Vanesa Yanina. Centro de Estudios en Ginecología y Reproducción; Argentin

Influencia de la patología espermática en reproducción asistida

Está ampliamente establecido que el uso de espermatozoides morfológicamente anormales tiene un impacto en los resultados de técnicas de reproducción asistida (ARTs), incluyendo la inyección intracitoplásmica de espermatozoides (ICSI). Desde los años 90´ el ICSI se ha convertido en el tratamiento de preferencia para el paciente con diferentes anomalías espermáticas, permite un examen detallado de la motilidad y morfología del espermatozoide que será microinyectado. Dependiendo de la naturaleza de la patología espermática involucrada, los espermatozoides anormales pueden tener una tasa de éxito diferencial en términos de fertilización y desarrollo embrionario. En los últimos años se ha prestado mucha atención al uso de diferentes herramientas de diagnóstico para caracterizar las patologías espermáticas y establecer un diagnóstico previo a ICSI (Chemes y Rawe, 2003). A pesar de que se han introducido criterios estrictos para la clasificación del espermatozoide y la correlación entre la morfología espermática y el diagnóstico en ARTs ha recibido la aceptación general (Kruger y col, 1986), se conoce poco sobre la estructura interna del espermatozoide (normal o anormal) y su impacto en ICSI. La combinación de microscopía electrónica y estudios de inmunohistoquímica han proporcionado nuevos conocimientos sobre la estructura normal y anormal de espermatozoides y han definido las bases subcelulares de las distintas aberraciones espermáticas. Dependiendo de las anomalías espermáticas involucradas, los resultados reproductivos cambian drásticamente. El presente trabajo resumimos e ilustramos cómo algunas patologías espermáticas influyen en los resultados de ICSI y consecuentemente en el pronóstico de fertilidad de hombres severamente afectados.Fil: Rawe, Vanesa Yanina. Centro de Estudios en Ginecología y Reproducción; ArgentinaFil: Alvarez Sedó, Cristian. Gobierno de la Ciudad Autónoma de Buenos Aires. Hospital General de Niños "Ricardo Gutiérrez". Departamento de Medicina; Argentina. Centro de Estudios en Ginecología y Reproducción; ArgentinaFil: Uriondo, Heydy. Centro de Estudios en Ginecología y Reproducción; ArgentinaFil: Chemes, Hector Edgardo. Gobierno de la Ciudad Autónoma de Buenos Aires. Hospital General de Niños "Ricardo Gutiérrez". Departamento de Medicina; Argentina. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas; Argentin

Influencia de la patología espermática en reproducción asistida

Está ampliamente establecido que el uso de espermatozoides morfológicamente anormales tiene un impacto en los resultados de técnicas de reproducción asistida (ARTs), incluyendo la inyección intracitoplásmica de espermatozoides (ICSI). Desde los años 90´ el ICSI se ha convertido en el tratamiento de preferencia para el paciente con diferentes anomalías espermáticas, permite un examen detallado de la motilidad y morfología del espermatozoide que será microinyectado. Dependiendo de la naturaleza de la patología espermática involucrada, los espermatozoides anormales pueden tener una tasa de éxito diferencial en términos de fertilización y desarrollo embrionario. En los últimos años se ha prestado mucha atención al uso de diferentes herramientas de diagnóstico para caracterizar las patologías espermáticas y establecer un diagnóstico previo a ICSI (Chemes y Rawe, 2003). A pesar de que se han introducido criterios estrictos para la clasificación del espermatozoide y la correlación entre la morfología espermática y el diagnóstico en ARTs ha recibido la aceptación general (Kruger y col, 1986), se conoce poco sobre la estructura interna del espermatozoide (normal o anormal) y su impacto en ICSI. La combinación de microscopía electrónica y estudios de inmunohistoquímica han proporcionado nuevos conocimientos sobre la estructura normal y anormal de espermatozoides y han definido las bases subcelulares de las distintas aberraciones espermáticas. Dependiendo de las anomalías espermáticas involucradas, los resultados reproductivos cambian drásticamente. El presente trabajo resumimos e ilustramos cómo algunas patologías espermáticas influyen en los resultados de ICSI y consecuentemente en el pronóstico de fertilidad de hombres severamente afectados.Fil: Rawe, Vanesa Yanina. Centro de Estudios en Ginecología y Reproducción; ArgentinaFil: Alvarez Sedó, Cristian. Gobierno de la Ciudad Autónoma de Buenos Aires. Hospital General de Niños "Ricardo Gutiérrez". Departamento de Medicina; Argentina. Centro de Estudios en Ginecología y Reproducción; ArgentinaFil: Uriondo, Heydy. Centro de Estudios en Ginecología y Reproducción; ArgentinaFil: Chemes, Hector Edgardo. Gobierno de la Ciudad Autónoma de Buenos Aires. Hospital General de Niños "Ricardo Gutiérrez". Departamento de Medicina; Argentina. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas; Argentin

Evolutionary consequences of environmental effects on gamete performance

Variation in pre- and post-release gamete environments can influence evolutionary processes by altering fertilization outcomes and offspring traits. It is now widely accepted that offspring inherit epigenetic information from both their mothers and fathers. Genetic and epigenetic alterations to eggs and sperm-acquired post-release may also persist post-fertilization with consequences for offspring developmental success and later-life fitness. In externally fertilizing species, gametes are directly exposed to anthropogenically induced environmental impacts including pollution, ocean acidification and climate change. When fertilization occurs within the female reproductive tract, although gametes are at least partially protected from external environmental variation, the selective environment is likely to vary among females. In both scenarios, gamete traits and selection on gametes can be influenced by environmental conditions such as temperature and pollution as well as intrinsic factors such as male and female reproductive fluids, which may be altered by changes in male and female health and physiology. Here, we highlight some of the pathways through which changes in gamete environments can affect fertilization dynamics, gamete interactions and ultimately offspring fitness. We hope that by drawing attention to this important yet often overlooked source of variation, we will inspire future research into the evolutionary implications of anthropogenic interference of gamete environments including the use of assisted reproductive technologies. This article is part of the theme issue 'How does epigenetics influence the course of evolution?

In vitro effects of endosulfan-based insecticides on mammalian sperm

Endosulfan is an organochloride insecticide extensively used in several countries to protect crops from pests. As several studies indicate that endosulfan can affect human and animal development, the aim of this study was to analyse whether sperm parameters and the process of chromatin decondensation could be altered by endosulfan in mice sperm. Spermatozoa from cauda epididymis were obtained from mature male mice and incubated in the presence of two commercial formulations (CFs) of endosulfan (Master® and Zebra Ciagro®) or the active ingredient (AI) alone. A significant decrease in the percentage motility and viability of spermatozoa with respect to controls was found. In vitro decondensation was performed in the presence of glutathione and heparin. Spermatozoa incubated with the AI, endosulfan Master® and endosulfan Zebra Ciagro® showed an increase in chromatin decondensation. In addition, the TUNEL assay showed that DNA fragmentation was significantly higher when sperm were incubated with either one of the CFs when compared to the AI or controls. The ultrastructure analysis of sperm cells showed evident changes in the structure of the plasma and acrosome membranes of sperm incubated with endosulfan AI or the CFs. These results suggest that endosulfan can affect sperm integrity and in vitro chromatin decondensation as well as DNA fragmentation.Fil: Sánchez, M.C.. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Instituto de Biología y Medicina Experimental. Fundación de Instituto de Biología y Medicina Experimental. Instituto de Biología y Medicina Experimental; ArgentinaFil: Alvarez Sedó, C.. Centro de estudios en Genética y Reproducción; ArmeniaFil: Chaufan, Gabriela. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Ciudad Universitaria. Instituto de Química Biológica de la Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Instituto de Química Biológica de la Facultad de Ciencias Exactas y Naturales; Argentina. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Departamento de Química Biológica. Laboratorio de Enzimología, Estrés Oxidativo y Metabolismo; ArgentinaFil: Romanato, Marina. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Instituto de Biología y Medicina Experimental. Fundación de Instituto de Biología y Medicina Experimental. Instituto de Biología y Medicina Experimental; ArgentinaFil: Da Cuña, Rodrigo Hernán. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Ciudad Universitaria. Instituto de Biodiversidad y Biología Experimental y Aplicada. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Instituto de Biodiversidad y Biología Experimental y Aplicada; Argentina. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Departamento de Biodiversidad y Biología Experimental. Laboratorio de Ecotoxicología Acuática; ArgentinaFil: Lo Nostro, Fabiana Laura. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Ciudad Universitaria. Instituto de Biodiversidad y Biología Experimental y Aplicada. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Instituto de Biodiversidad y Biología Experimental y Aplicada; Argentina. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Departamento de Biodiversidad y Biología Experimental. Laboratorio de Ecotoxicología Acuática; ArgentinaFil: Calvo, Juan Carlos. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Instituto de Biología y Medicina Experimental. Fundación de Instituto de Biología y Medicina Experimental. Instituto de Biología y Medicina Experimental; Argentina. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Departamento de Quimica Biologica. Laboratorio de Química de Proteoglicanos y Matriz Extracelular; ArgentinaFil: Fontana, Vanina Andrea. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Instituto de Biología y Medicina Experimental. Fundación de Instituto de Biología y Medicina Experimental. Instituto de Biología y Medicina Experimental; Argentina. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Departamento de Quimica Biologica. Laboratorio de Química de Proteoglicanos y Matriz Extracelular; Argentin

Sperm DNA fragmentation: A new guideline for clinicians

Sperm DNA integrity is crucial for fertilization and development of healthy offspring. The spermatozoon undergoes extensive molecular remodeling of its nucleus during later phases of spermatogenesis, which imparts compaction and protects the genetic content. Testicular (defective maturation and abortive apoptosis) and post-testicular (oxidative stress) mechanisms are implicated in the etiology of sperm DNA fragmentation (SDF), which affects both natural and assisted reproduction. Several clinical and environmental factors are known to negatively impact sperm DNA integrity. An increasing number of reports emphasizes the direct relationship between sperm DNA damage and male infertility. Currently, several assays are available to assess sperm DNA damage, however, routine assessment of SDF in clinical practice is not recommended by professional organizations

Estudio del daño del ADN espermático y su relación con la infertilidad masculina

Trata de demostrar si existe una asociación entre el daño del ADN y la fertilidad del hombre. Para este propósito se incluyeron varones infértiles e fértiles, se evaluaron los parámetros seminales mediante lo establecido por la OMS, y se cuantificó en la muestra entera y post gradiente de centrifugación: los niveles de apoptosis (Anexina V y caspasa 3 activa), daño oxidativo (BODIPY y 8-OHdG), y la estabilidad del núcleo espermático (TUNEL y Naranja de Acridina). Se emplearon técnicas de inmunofluorescencia y western blot. Así mismo, se buscó determinar la asociación entre el daño del ADN vs. la calidad seminal, calidad embrionaria, embarazo y la presencia de comorbilidades clínicas. Se demostró una asociación negativa entre la fragmentación del ADN y la fertilidad del hombre (lograr el embarazo), estableciéndose un valor del corte de 15%. Se determinó una correlación negativa y significativa entre la fragmentación del ADN-daño oxidativo y la baja movilidad espermática, alteración de la morfología espermática e inadecuada calidad embrionaria. Se estableció una correlación positiva con la edad del varón, por encima de los 43 años, se evidenciaron diferencias significativas. La presencia de comorbilidades, tales como, síndrome metabólico y pacientes tratados por trastornos de ansiedad, presentaron un mayor daño del ADN espermático. Todos los parámetros respecto al daño del ADN, estrés oxidativo y apoptosis disminuyeron en la población de espermatozoides móviles post gradiente en comparación a la muestra entera. Se concluye que existe una asociación inversa entre el daño del ADN a nivel testicular con la fertilidad masculina mediado principalmente por el estrés oxidativo y se acentúa con la edad. El estudio de fragmentación del ADN deber ser considerado como un marcador útil para valorar la capacidad reproductiva del hombre.Tesi