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    Plant parasitic Asterinaceae and Microthyriaceae from the Neotropics (Panama)

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    Plant parasitic species of Asterinaceae and Microthyriaceae (Dothideomycetes, Ascomycota, Fungi) are inconspicuous foliicolous fungi with a mainly tropical distribution. They form black colonies on the surface of living leaves. Members of Asterinaceae and Microthyriaceae are characterized by shield-shaped, flat ascomata (thyriothecia) which grow completely superficially on the leaf cuticle. Microthyriaceae, Asterinaceae and other families of thyriothecia-forming ascomycetes belong to the class Dothideomycetes due to the presence of bitunicate asci. However, until today no consistent taxonomic concept nor molecular phylogenetic studies exist for the families of thyriothecioid ascomycetes. In the present thesis, 42 species belonging to 13 different anamorphic and teleomorphic genera of Asterinaceae, Microthyriaceae and ‘Pycnothyriales’ recently collected in Western Panama, are identified, described in detail and illustrated with drawings, transmission and scanning electron microscopical photographs. Among the 42 species, 37 species belong to the Asterinaceae, four species to the Microthyriaceae and one species to the from group ‘Pycnothyriales’. Two species of Asterinaceae are new to sience: Asterina gaiadendricola with an Asterostomella anamorph and Asterina schlegeliae with a Mahanteshamyces anamorph. Among the remaining species of Asterinaceae, 28 species represent new records for Panama: Asterina cestricola, A. ciferriana, A. consobrina, A. corallopoda, A. davillae with anamorph, A. diplocarpa, A. diplopoda, A. ekmanii, A. fuchsiae, A. manihotis, A. phenacis, A. radiofissilis with anamorph, A. siphocampyli, A. sponiae, A. stipitipodia with anamorph, A. styracina, A. tonduzii with anamorph, A. weinmanniae, A. zanthoxyli, Asterostomella dilleniicola, Asterolibertia licaniicola, Asterolibertia nodulosa, Cirsosia splendida with its Homalopeltis chrysobalani anamorph and Prillieuxina winteriana with its Leprieurina winteriana anamorph. The remaining 11 species of Asterinaceae probably respresent new species: Asterina spp. 1-8, Asterolibertia sp., Halbanina sp. and Mahanteshamyces sp. The four species of Microthyriaceae are new records for Panama: Maublanica uleana, Platypeltella irregularis, Platypeltella smilacis and Xenostomella tovarensis. The species Hemisphaeropsis magnoliae in the form group ‘Pycnothyriales’ is a new record for Panama. During this study, voucher material of 44 additional species of plant parasitic thyriothecioid ascomycetes was examined. Thereby, the number of species of Asterinaceae known for Panama since 2006 raises from four to 30, for Microthyriaceae respectively from zero to four and for ‘Pycnothyriales’ from zero to one. 21 of the presented species are new records for Central America and two species are new records for the American Continent. The presented 42 species parasitize 47 host plant species in 39 genera belonging to 28 plant families. For 23 fungal species, new host plant species are discovered. From those, seven belong to host plant genera not reported before to be parasitized by a member of Asterinaceae and Microthyriaceae: Burmeistera (Campanulaceae), Curatella and Davilla (Dilleniaceae), Greigia (Bromeliaceae), Hirtella (Chrysobalanaceae), Oxandra and Xylopia (Annonaceae). In this study, the first molecular phylogenetic approach in Asterinaceae is provided. For the first time, DNA was isolated from fresh material of Asterina spp. and their respective anamorphic stages on leaves in Panama. The hypothesis derived from SSU and LSU rDNA neighbour-joining analysis supports the monophyly of the Asterinaceae and suggests a close relationship to Venturiaceae within the class Dothideomycetes. The data obtained from the ppMP project (plant parasitic microfungi of Panama) indicate a constant but low abundance of plant parasitic thyriothecioid ascomycetes in natural plant communities in Panama, with Asterinaceae as the most species-rich and diverse family. Further collection activities in tropical regions worldwide will certainly increase our knowledge about species diversity and ecology of tropical plant parasitic thyriothecioid ascomycetes.Zusammenfassung Pflanzenparasitische Arten der Asterinaceae und Microthyriaceae (Dothideomycetes, Ascomycota, Echte Pilze) sind unscheinbare Blattbewohner mit hauptsĂ€chlich tropischer Verbreitung. Sie bilden schwarze Kolonien auf der OberflĂ€che von lebenden BlĂ€ttern und infizieren das Wirtsgewebe auf vielfĂ€ltige Weise. Vertreter der Asterinaceae und Microthyriaceae sind durch spezielle, schild-förmig abgeflachte Fruchtkörper charakterisiert, die als Thyriothezien bezeichnet werden und komplett oberflĂ€chlich auf der Wirtskutikula wachsen. Die sehr kleinen Ascomata entstehen meist an einem ausgedehnten OberflĂ€chenmyzel, welches ausserdem spezielle Infektionsstrukturen zur Penetration des Wirtsgewebes ausbildet. In den Thyriothezien werden globose oder zylindrische, bitunicate Asci gebildet in denen acht zweizellige Ascosporen (Meiosporen) entstehen. Neben dem sexuellen Entwicklungsgang besitzen viele Vertreter der Asterinaceae auch asexuelle Stadien, welche durch den Thyriothezien morphologisch Ă€hnliche Konidiomata, sogenannte Pyknothyrien, gekennzeichnet sind und in denen Konidien (Mitosporen) gebildet werden. Thyriothecien-bildende Ascomyceten, auch thyriothecioide Ascomyceten genannt, werden mithilfe morphologischer und ökologischer Merkmale unterschiedlichen Familien zugeordnet (Asterinaceae, Aulographaceae, Brefeldiellaceae, Leptopeltidaceae, Micropeltidaceae, Microthyriaceae, Parmulariaceae, Polystomellaceae, Schizothyriaceae und Vizellaceae), deren VerwandtschaftsverhĂ€ltnisse untereinander sowie innerhalb der bitunicaten Ascomyceten noch nicht aufgeklĂ€rt sind. In Panama sind thyriothecioide Ascomyceten nahezu unbekannt und nur sehr sporadisch untersucht. Dies liegt zum einen an der geringen GrĂ¶ĂŸe der Pilze, sowie deren unwesentlicher Bedeutung als SchĂ€dlinge auf wirtschaftlich genutzen Pflanzen, aber auch am Fehlen von Spezialisten fĂŒr die Pilzgruppe. Bis 2006 waren fĂŒr Panama nur 10 Arten von thyriothecioiden Ascomyceten bekannt. Trotz der relativ geringen GrĂ¶ĂŸe Panamas ist die DiversitĂ€t der vaskulĂ€ren Pflanzen mit ca. 9500 Arten etwa dreimal so hoch wie in dem etwa fĂŒnfmal grĂ¶ĂŸeren Deutschland. Da Vertreter der Asterinaceae und Microthyriaceae obligat biotroph sind und dauerhafte, komplexe Interaktionen mit ihrem Wirt eingehen, wird eine WirtspezifitĂ€t zumindest auf Pflanzenfamilienebene vermutet. Wenn man die enorme Vielfalt der potentiellen Wirtspflanzen in Panama in Betracht zieht, kann man von einer hohen DiversitĂ€t dieser Pflanzenpathogene in dem Land ausgehen. FĂŒr diese Studie wurden insgesamt 379 Belege geprĂŒft, die 86 verschiedenen Arten von pflanzenparasitischen Asterinaceae und Microthyriaceae entsprechen. Insgesamt wurden 174 Belege von pflanzenparasitischen thyriothecioiden Ascomyceten im Westen Panamas in den Provinzen ChiriquĂ­ und Bocas del Toro gesammelt. Zwischen 2005 und 2007 wurden 86 Belege von der Autorin selbst und 74 Belege im Rahmen des ppMP Projektes (pflanzenparasitische Mikropilze Panamas) von T.A. Hofmann, R. Mangelsdorff, M. Piepenbring und T. Trampe gesammelt. Jeweils 5 Belege wurden zwischen 2000 und 2005 von M. Piepenbring, sowie von T. Trampe 2008 gesammelt. 3 Belege wurden von R. Mangelsdorff zwischen 2004 und 2006 gesammelt, und 1 Beleg wurde 2004 von Boris Koch gesammelt. ZusĂ€tzlich wurden insgesamt 205 Belege aus Herbarien konsultiert, 163 Belege aus den U.S. National Fungus Collections (BPI), 25 Belege aus dem Swedish Museum of Natural History (S), 10 Belege aus dem CABI Bioscience UK Centre (formerly International Mycological Institute, IMI), 3 Belege aus der Universidad National de la Plata (LPS), 2 Belege vom Biozentrum Klein-Flottbeck (HBG) and jeweils 1 Beleg aus dem Herbarium Bogoriense (BO) und dem Plant Protection Research Institute (PREM). In der vorliegenden Arbeit werden 42 Arten von pflanzenparasitischen thyriothecioiden Ascomyceten identifiziert, detailliert beschrieben und durch Zeichungen sowie transmissions- und rasterelektronenmikroskopische Aufnahmen zum großen Teil erstmals illustriert. Die 42 Arten gehören zu 13 unterschiedlichen Anamorph- und Teleomorphgattungen in den zwei Familien Asterinaceae (37 Arten) und Microthyriaceae (vier Arten) sowie der Fromgruppe ‘Pycnothyriales’ (eine Art). Zwei der vorgestellten Arten der Asterinaceae sind neu fĂŒr die Wissenschaft: Asterina gaiadendricola mit Asterostomella-Anamorph auf Gaiadendron punctatum (Loranthaceae) und Asterina schlegeliae mit Mahanteshamyces-Anamorph auf Schlegelia parviflora (Schegeliaceae). Asterina gaiadendricola unterscheidet sich von anderen Asterina-Arten auf Loranthaceae durch das hypophylle Wachstum, die besondere Morphologie der Appressorien und deren ausschließliches Vorkommen auf den Schließzellen der Spaltöffungen der Wirtspflanze. Asterina schlegeliae ist die einzige bekannte Art von Asterina, die auf einem Vertreter der Schlegeliaeceae parasitiert und unterscheidet sich von Asterina-Arten auf den nahe verwandten Pflanzenfamilien Scrophulariaceae und Bignoniaceae durch das Mahanteshamycesartige Anamorph mit dreieckigen Konidien. Von den res tlichen Arten der Asterinaceae werden 24 Arten bis auf Artebene identifiziert und reprĂ€sentieren ausnahmslos Erstnachweise fĂŒr das Land Panama: Asterina cestricola auf Cestrum rugulosum (Solanaceae), A. ciferriana auf Caesalpinia bonduc (Fabaceae), A. consobrina auf Solanum aphyodendron (Solanaceae), A. corallopoda auf Solanum trizygum (Solanaceae), A. davillae mit Anamorph auf Curatella americana (Dilleniaceae), A. diplocarpa auf Sida acuta und Sida rhombifolia (Malvaceae), A. diplopoda auf Solanum acerifolium (Solanaceae), A. ekmanii auf Gonzalagunia rudis (Rubiaceae), A. fuchsiae auf Fuchsia paniculata (Onagraceae), A. manihotis auf Manihot esculenta (Euphorbiaceae), A. phenacis auf Phenax mexicanus (Urticaceae), A. radiofissilis mit Anamorph auf Acalypha arvensis (Euphorbiaceae), A. siphocampyli auf Burmeistera vulgaris and Burmeistera sp. (Campanulaceae), A. sponiae auf Trema micrantha (Cannabaceae) und einer nicht identifizierten Tiliaceae, A. stipitipodia mit Anamorph auf Davilla kunthii (Dilleniaceae), A. styracina auf Styrax argenteus (Styracaceae), A. tonduzii mit Anamorph auf Xylosma sp. (Salicaceae), A. weinmanniae auf Weinmannia pinnata (Cunoniaceae), A. zanthoxyli auf Zanthoxylum scheryi (Rutaceae), Asterostomella dilleniicola auf Davilla kunthii (Dilleniaceae), Asterolibertia licaniicola auf Licania arborea (Chrysobalanaceae), Asterolibertia nodulosa auf Oxandra venezuelana (Annonaceae), Cirsosia splendida mit Homalopeltis chrysobalani- Anamorph auf Chrysobalanus icaco und Hirtella triandra (Chrysobalanceae) und Prillieuxina winteriana mit Leprieurina winteriana-Anamorph auf Annona montana (Annonaceae). Die restlichen 11 Arten der Asterinaceae konnten nicht bis auf Artebene identifiziert werden und sind möglicherweise neue Arten: Asterina sp. 1 auf Hansteinia reflexiflora (Acanthaceae), Asterina sp. 2 auf Hansteinia ventricosa (Acanthaceae), Asterina sp. 3 auf Desmopsis bibracteata (Annonaceae), Asterina sp. 4 auf Cleome sp. (Cleomaceae), Asterina sp. 5 auf Clusia sp. (Clusiaceae), Asterina sp. 6 auf Alloplectus ichtyoderma (Gesnericaceae), Asterina sp. 7 auf Compsoneura sprucei (Myristicaceae), Asterina sp. 8 auf Casearia commersoniana (Salicaceae), Asterolibertia sp. auf Annonaceae, Halbanina sp. auf Chrysobalanus icaco (Chrysobalanaceae) und Mahanteshamyces sp. auf Schlegelia parviflora (Schlegeliaceae). Die vier vorgestellten, pflanzenparasitischen Arten der Microthyriaceae werden erstmalig fĂŒr Panama dokumentiert: Maublanica uleana auf Myrcia splendens (Myrtaceae), Platypeltella irregularis auf Greigia sylvicola (Bromeliaceae), Platypeltella smilacis auf Smilax sp. (Smilacaceae) und Xenostomella tovarensis auf Monnina xalapensis (Polygalaceae). Die Art der Formgruppe “Pycnothyiales”, Hemisphaeropsis magnoliae mit Teleomorph Stadium auf Magnolia sororum (Magnoliaceae), ist ein Neunachweis fĂŒr Panama. Insgesamt 16 der vorgestellten Arten werden erstmals in dieser Studie illustriert. Weiterhin werden Listen der aus der Literatur bekannten Arten der Gattungen Asterina, Asterostomella, Asterolibertia, Cirsosia, Halbanina, Maublancia, Prillieuxina, Platypeltella und Xenostomella vorgestellt. Neben Wirtsindizes der gĂŒltigen Arten werden ebenfalls alle ungĂŒltigen und synonymisierten Arten aufgelistet. Die Zahl der fĂŒr bis 2006 in Panama bekannten Arten der Asterinaceae erhöht sich mit dieser Arbeit von vier auf 30, fĂŒr Microthyriaceae respektive von null auf vier und fĂŒr ‘Pycnothyriales’ von null auf eins. 21 der vorgestellten Arten reprĂ€sentieren Neunachweise fĂŒr Zentralamerika und zwei Arten werden das erste Mal fĂŒr den Amerikanischen Kontinent dokumentiert. In dieser Studie werden Infektionsmechanismen von ausgewĂ€hlten Arten von Asterinaceae und Microthyriaceae auf ultrastrucktureller Ebene untersucht. Erstmals werden fĂŒr Ascomyceten spezifische Zellorganellen in Arten von Asterinaceae und Microthyriaceae nachgewiesen. Mithilfe lichtmikrokopischer Techniken wird die Ascusentwicklung von Asterina schlegeliae, Asterina sp. 7., Asterolibertia nodulosa, Cirsosia splendida, Halbanina sp., Maublancia uleana, Prillieuxina winteriana, Platypeltella irregularis und P. smilacis erstmalig analysiert und illustriert. Weiterhin werden morphologische und ontogenetische Besonderheiten der Pilzgruppen diskutiert, die fĂŒr Art-, Gattungs- und Familienkonzepte thyriothecioider Ascomyceten von taxonomischer Bedeutung sein können. In der vorliegenden Arbeit wird eine neue Teleomorph-Anamorph Verbindung vorgestellt, das Teleomorph Cirsosia splendida (Asterinaceae) mit dem Anamorphstadium Homalopeltis chyrsobalani auf Chrysobalanus icaco und Hirtella triandra (Chrysobalanaceae). ZusĂ€tzlich werden in der Studie taxonomische VerĂ€nderungen vorgeschlagen. Drei Arten von Asterinaceae werden synonymisiert, Asterina melanomera mit Asterina saginata, Asterina myrciae mit Maublancia uleana, und Leprieurina radiata mit Homalopeltis chrysobalani (Anamorph von Cirsosia splendida), eine Art wird umkombiniert, Asterina nodulifera zu Asterolibertia nodulifera, und eine Art wird neu benannt, Asterina schroeteri var. licaniae zu Asterolibertia minor. Die 42 vorgestellten Arten parasitieren auf insgesamt 47 Wirtspflanzenarten in 39 Gattungen und 28 unterschiedlichen Pflanzenfamilien. FĂŒr 23 der prĂ€sentierten Pilzarten werden neue Wirtsarten genannt. Von diesen gehören sieben zu Gattungen, von denen bisher keine Wirtsarten fĂŒr Asterinaceae und Microthyriaceae bekannt waren: Burmeistera (Campanulaceae) fĂŒr Asterina siphocampyli, Curatella (Dilleniaceae) fĂŒr Asterina davillae mit Asterostomella-Anamorph, Davilla (Dilleniaceae) fĂŒr Asterina stipitipodia mit Asterostomella stipitipodia-Anamorph sowie fĂŒr Asterostomella dilleniicola, Greigia (Bromeliaceae) fĂŒr Platypeltella irregularis, Hirtella (Chrysobalanaceae) fĂŒr Cirsosia splendida mit Homalopeltis chrysobalani-Anamorph, Oxandra und Xylopia (Annonaceae) fĂŒr Asterolibertia nodulosa. In dieser Arbeit wird zum ersten Mal eine molekularphylogenetische Hypothese zur den VerwandschaftsverhĂ€ltnissen der Asterinaceae mit Gruppen anderer bitunicater Ascomyceten innerhalb der Klasse Dothideomycetes vorgestellt. In Panama konnte erstmals DNA von Frischmaterial von Asterina spp. und deren Anamorph-Stadien von BlĂ€ttern isoliert werden. Die von LSU und SSU rDNA-Sequenzen abgeleitete Neighbour-Joining-Analyse unterstĂŒtzt die Monophylie der Asterinaceae mit enger Beziehung zu den Venturiaceae innerhalb der Klasse der bitunicaten Ascomyceten, Dothideomycetes. Die vorgestellte phylogenetische Analyse ist jedoch nur als vorlĂ€ufiges Ergebnis anzusehen. Sequenzendaten von anderen Arten von Asterinaceae und nahe verwandte Familien der thyriothecioiden Ascomyceten sowie erweiterte phylogenetische Untersuchungen sind notwendig, um die Pilzgruppe anhand molekularer Daten klassifizieren zu können. Die im Rahmen des ppMP Projektes (pflanzenparasitische Mikropilze Panamas) untersuchte HĂ€ufigkeitsverteilung von pflanzenparasitischen thyriothecioiden Ascomyceten zeigt die konstante aber geringe Abundanz dieser Pflanzenpathogene in natĂŒrlichen Pflanzengesellschaften im Westen Panamas. Dabei stellen die Asterinaceae mit 61 verschiedenen Arten die artenreichste Gruppe dar, Asterina ist die am hĂ€ufigsten gefunden Gattung der Asterinaceae. Faktoren wie jahreszeitliche Schwankungen von Regen- und Trockenzeit, LichtintensitĂ€t oder Höhenlage sind nicht fĂŒr ein vermehrtes Vorkommen von Arten von Asterinaceae in einer bestimmten Pflanzengesellschaft maßgebend. Vielmehr spielen das Vorhandensein von Waldhabitaten mit Tendenz zu LĂŒckenbildung sowie der damit assoziierte erhöhte Störungsgrad der jeweiligen Pflanzengesellschaft eine entscheidende Rolle fĂŒr die DiversitĂ€t der Asterinaceae. VerstĂ€rkte SammelaktivitĂ€ten in Panama und tropischen Gebieten weltweit werden zur Erweiterung des Kenntnisstandes ĂŒber die Artenvielfalt und Ökologie tropischer thyriothecioider Ascomyceten beitragen. Resumen Especies de Asterinaceae y Microthyriaceae son hongos parĂĄsitos qu e ocurren especialmente en los trĂłpicos del mundo. Estos pequeños hongos forman colonias negras en la superficie de hojas vivas e infectan el tejido de la planta en diversas formas. Son caracterizados por ascomatas escutiformes llamado thiriothecia que se desarrollan superficialmente sobre la cutĂ­cula de la planta. Asterinaceae y Microthyriaceae pertenecen juntos con otras familias de ascomicetos thiriothecioides de la clase Dothideomycetes por la presencia de ascos bitunicados. Hasta ahora los ascomicetos thiriothecioides no tienen un concepto taxonĂłmico uniforme y estudios filogenĂ©ticos extensos estan ausentes. En esta thesis 42 especies de ascomicetos thiriothecioides recientemente colectados en el Oeste de PanamĂĄ, se presentan con descripciones detalladas e illustraciones en forma de dibujos e imĂĄgenes de microscopĂ­o electrĂłnico de barrido y transmisiĂłn. Las 42 especies pertenecen a 13 diferentes gĂ©neros de las familias Asterinaceae (37 especies), Microthyriaceae (cuatro especies) y ‘Pycnothyriales’ (una especie). Dos especies de Asterinaceae son nuevas para la ciencia: Asterina gaiadendricola con Asterostomella anamorfo y Asterina schlegeliae con Mahanteshamyces anamorfo. 28 especies de Asterinaceae se citan por primera vez para PanamĂĄ: Asterina cestricola, A. ciferriana, A. consobrina, A. corallopoda, A. davillae con anamorfo, A. diplocarpa, A. diplopoda, A. ekmanii, A. fuchsiae, A. manihotis, A. phenacis, A. radiofissilis con anamorfo, A. siphocampyli, A. sponiae, A. stipitipodia con anamorfo, A. styracina, A. tonduzii con anamorfo, A. weinmanniae, A. zanthoxyli, Asterostomella dilleniicola, Asterolibertia licaniicola, Asterolibertia nodulosa, Cirsosia splendida con Homalopeltis chrysobalani anamorfo y Prillieuxina winteriana con Leprieurina winteriana anamorfo. Las otras 11 especies de Asterinaceae representan probablemente nuevas especies: Asterina spp. 1-8, Asterolibertia sp., Halbanina sp. y Mahanteshamyces sp. Las cuatros especies de Microthyriaceae son nuevos reportes para PanamĂĄ: Maublanica uleana, Platypeltella irregularis, Platypeltella smilacis y Xenostomella tovarensis. Hemisphaeropsis magnoliae que pertenece al grupo ‘Pycnothyriales’, tambiĂ©n representa un nuevo reporte para PanamĂĄ. AsĂ­ el nĂșmero de especies de Asterinaceae conocidas en PanamĂĄ aumenta de cuatro a 30, para Microthyriaceae de cero a cuatro y para ‘Pycnothyriales’ de cero a una. 21 de las especies presentadas son nuevos reportes para AmĂ©rica Central y dos especies estĂĄn nuevamente reportadas para el continente AmĂ©ricano. Las 42 especies presentadas crecen en 47 especies de plantas hospederas de 39 gĂ©neros que pertenecen a 28 familias de plantas vasculares. Para 23 especies de hongos se descubrieron nuevas especies de plantas hospederas. De estas, siete pertenecen a gĂ©neros de plantas desconicidas antes como hospederos de especies de Asterinaceae y Microthyriaceae: Burmeistera (Campanulaceae), Curatella y Davilla (Dilleniaceae), Greigia (Bromeliaceae), Hirtella (Chrysobalanaceae), Oxandra y Xylopia (Annonaceae). En esta tĂ©sis se presenta el primer estudio filogenĂ©tico de la familia Asterinaceae. Por primera vez, el ADN fue aislado en PanamĂĄ de material fresco de especies de Asterina y sus estados anamorfos. La hipĂłtesis derivada de SSU y LSU rADN neighbour-joining anĂĄlisis soporta la monofilia de la familia Asterinaceae en la clase Dothideomycetes. Los datos del proyecto ppMP (microhongos parĂĄsitos en plantas de PanamĂĄ) indican una constante presencia de ascomicetos thiriothecioides parasitĂ­cos en comunidades naturales de plantas en PanamĂĄ. En el Oeste de PanamĂĄ los Asterinaceae representan el grupo mĂĄs diverso y rico en especies. Amplias colecciones en las ĂĄreas tropicales del mundo seguramente pueden ampliar el conocimiento sobre la diversidad y ecologĂ­a de ascomicetos thiriothecioides parasitĂ­cos

    Homework from (prospective) teachers\u27 points of view

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    Die Hausaufgabenpraxis von Lehrpersonen ist unterschiedlichen Befunden zufolge sehr verĂ€nderungsresistent und damit ein kritischer Faktor bezĂŒglich der QualitĂ€tsentwicklung von Unterricht. Vor diesem Hintergrund bekommt die Frage Bedeutung, in welchem Ausmaß sich die Vorstellungen von Lehrpersonen hinsichtlich einer Hausaufgabenpraxis von denen von Lehramtsstudierenden unterscheiden. Aus den Ergebnissen lassen sich bezĂŒglich einzelner Merkmale deutliche Vorstellungsunterschiede zwischen Lehrpersonen und Lehramtsstudierenden konstatieren. (DIPF/Orig.)According to various findings individual practices of teachers concerning homework are rather resistant to change and therefore a critical factor when it comes to improving quality of instruction. Bearing this in mind the question whether teachers and (university) students have different beliefs concerning homework gains importance. The results illustrate that beliefs of teachers clearly differ from those of students in teacher training. (DIPF/Orig.

    New records and host plants of fly-speck fungi from Panama

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    Fly-speck fungi are inconspicuous Ascomycota mainly found in the tropics and subtropics. They form small scutellate fruiting bodies, called thyriothecia, on the surface of host organs. They are plant parasites on living leaves and stems (Theissen, 1913; Stevens and Ryan, 1939), saprobes on dead leaves and stems (Ellis, 1976) or commensals (fungal epiphylls) on living leaves (Gilbert et al., 2006). Saprobes are found in temperate zones as well as in the tropics or subtropics. True plant parasites and commensals, which are thought to be species-rich, are delimited to tropical or subtropical regions of the world. Most fly-speck fungi belong to one of two subclasses of bitunicate Ascomycota: Chaetothyriomycetidae or Dothideomycetidae (Kirk et al., 2001). The systematic relationships between families, genera and species are not solved yet, as complete phylogenetic studies are lacking for this group, except for some members of Chaetothyriomycetidae (Berbee, 1996; Liu and Hall, 2004) and Dothideomycetidae (e.g. Tam et al., 2003). In the past, many authors described tropical fly-speck fungi (e.g. Theissen, 1913; Sydow, 1927; Hansford, 1946). During the last decades 55 members of fly-speck fungi have been described from many tropical and subtropical regions: Africa (Mibey and Hawksworth, 1997), Asia (e.g. Hosagoudar and Abraham, 1998; Song et al., 2004), Australia (Reynolds and Gilbert, 2005) and North America (e.g. Ahn and Crane, 2004). However, only Batista (1959), Batista et al. (1963) and Farr (1986, 1987) published morphologic and taxonomic studies on this group in the neotropics, and only from Brazil. As the diversity of fly-speck fungi is very high in tropical latitudes (Batista, 1959), our knowledge is still very incomplete. During recent field work in Panama, many tropical fly-speck fungi were observed. Only the flyspeck fungi Chaetothyrina panamensis (F. Stevens & Dorman) Arx (Dennis, 1970), Chaetothyriopsis panamensis F. Stevens & Dorman (Stevens, 1927), Micropeltis bakeri Syd. & P. Syd. (Cash and Watson, 1955), Yamamotoa carludovicae (Bat.) Arx & E. MĂŒll. (Sivanesan, 1984), Scolecopeltidium bakeri (Syd. & P. Syd.) F. Stevens & Manter (Batista, 1959) and Scolecopeltidium mayteni Bat. & I.H. Lima (Gilbert et al., 1997) are known so far from Panama. In the present study six species new for Panama on several new host plants are described and illustrated. We are convinced that many more species will be found in Panama during future field work

    On‐site non‐destructive determination of the remanent magnetization of archaeological finds using field magnetometers

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    The determination of the natural remanent magnetization (NRM) of archaeological features can be used for magnetic modelling, joining of shards, archaeomagnetic dating or the investigation of the firing–cooling–collapsing order of ancient buildings. The measurement of NRM is normally conducted on cylindrical or cubic samples in the laboratory. Nevertheless, archaeological finds should preferably not be destroyed, and laboratory instruments are high in costs. Therefore, we propose a lightweight and portable measurement set-up including already available field magnetometers (preferably caesium magnetometers) in which the archaeological sample of arbitrary shape, in our case a piece of daub, is mounted inside a gimbal to be rotated in all directions. The magnetic field of the sample is measured at a large number of rotational positions with the magnetometer kept at fixed position. In these measurements, the unknown direction of the NRM vector of the sample is rotated, whereas the average magnetic susceptibility of the sample and the ambient magnetic field are constant and known. Hence, the vector of NRM can be determined through least-squares inversion. For the inversion computation, the sample volume is discretized either as voxel model or approximated as an equivalent sphere. Under certain conditions depending on sample–sensor distance, dipole moment and radius of the sample, the approximation by a sphere is valid without effect on the accuracy of results.This is accurate enough, for example, to determine from daub pieces of burnt house remains whether the building was burnt and cooled before or after it collapsed

    Optimizing Convolutional Neural Networks for Chronic Obstructive Pulmonary Disease Detection in Clinical Computed Tomography Imaging

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    Purpose: To optimize the binary detection of Chronic Obstructive Pulmonary Disease (COPD) based on emphysema presence in the lung with convolutional neural networks (CNN) by exploring manually adjusted versus automated window-setting optimization (WSO) on computed tomography (CT) images. Methods: 7,194 CT images (3,597 with COPD; 3,597 healthy controls) from 78 subjects (43 with COPD; 35 healthy controls) were selected retrospectively (10.2018-12.2019) and preprocessed. For each image, intensity values were manually clipped to the emphysema window setting and a baseline 'full-range' window setting. Class-balanced train, validation, and test sets contained 3,392, 1,114, and 2,688 images. The network backbone was optimized by comparing various CNN architectures. Furthermore, automated WSO was implemented by adding a customized layer to the model. The image-level area under the Receiver Operating Characteristics curve (AUC) [lower, upper limit 95% confidence] and P-values calculated from one-sided Mann-Whitney U-test were utilized to compare model variations. Results: Repeated inference (n=7) on the test set showed that the DenseNet was the most efficient backbone and achieved a mean AUC of 0.80 [0.76, 0.85] without WSO. Comparably, with input images manually adjusted to the emphysema window, the DenseNet model predicted COPD with a mean AUC of 0.86 [0.82, 0.89] (P=0.03). By adding a customized WSO layer to the DenseNet, an optimal window in the proximity of the emphysema window setting was learned automatically, and a mean AUC of 0.82 [0.78, 0.86] was achieved. Conclusion: Detection of COPD with DenseNet models was improved by WSO of CT data to the emphysema window setting range
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