Fasciola hepatica: ecologia e trajetória histórico-geográfica pelo Brasil

This work aimed to synthesize from a bibliographical review all historical and geographic trajectory of Fasciola hepatica by Brazil, correlating facts with its life cycle. The literature consulted reveals F. hepatica is a parasite that requires two hosts to complete its life cycle, the intermediate host being the Lymnaea snail and the definitive hosts, several species of vertebrates including man. With so many hosts the parasite has been continuously transported to environments favorable to its development, which includes moderate temperature and water availability. Its history in Brazil begins in 1918 in the South, over the years this trematódeo has expanded geographically until reaching the North region in the last decades. Therefore, it is concluded that there are prospects for F. hepatica to reach the entire Brazilian territory in the coming years.Este trabalho objetivou sintetizar a partir de uma revisão bibliográfica todo percurso histórico e geográfico da Fasciola hepatica pelo Brasil, correlacionando fatos com seu ciclo de vida. A literatura consultada revela que F. hepatica é um parasita que necessita obrigatoriamente de dois hospedeiros para completar seu ciclo de vida: o caramujo Lymnaea, hospedeiro intermediário, e o hospedeiro definitivo, que pode ser de diversas espécies de vertebrados, inclusive o homem. Com tantos hospedeiros, o parasita vem sendo continuamente transportado para ambientes com temperatura moderadas e disponibilidade de água, favoráveis ao seu desenvolvimento. Sua história no Brasil inicia-se em 1918, na região Sul. Nas décadas seguintes, esse trematódeo se expandiu geograficamente até alcançar a região Norte. Logo, conclui-se que há perspectivas da F. hepatica atingir todo o território brasileiro nos próximos anos

Modelos na filosofia da ciência e epistemologia: Implicações para a ciência escolar

Models are important components in scientific activity, but their functions are divergent among the various schools of philosophy of science and epistemology. Schools such as realism and anti-realism discuss the importance of models, placing them at different levels. At the same time, it is essential to understand the use of models as aids in science teaching. The realism/anti-realism debate is not a mere epistemological curiosity, but something that has consequences for school science, understood as a process of didactic transposition that, of necessity, relies on idealizations. Solutions to the problem are presented, including a focus on didactic transpositions and the historiography of science.Los modelos son componentes importantes en la actividad científica, pero sus funciones son divergentes entre las distintas corrientes de la filosofía de la ciencia y la epistemología. Corrientes como el realismo y el antirrealismo discuten la importancia de los modelos, situándolos en diferentes niveles. Al mismo tiempo, es esencial comprender el uso de modelos como subsidios en la enseñanza de las ciencias. El debate realismo/antirrealismo no representa una mera curiosidad epistemológica, sino algo que tiene consecuencias para la ciencia escolar, entendida como un proceso de transposición didáctica que, por necesidad, se apoya en idealizaciones. Se presentan soluciones al problema, incluyendo un enfoque en las transposiciones didácticas y la historiografía de la ciencia.Os modelos são importantes componentes na atividade científica, porém suas funções são divergentes diante das várias vertentes da filosofia da ciência e epistemologia. Correntes como o realismo e antirrealismo discutem a importância dos modelos, colocando-os em patamares distintos. Ao mesmo tempo, é imprescindível compreender a visão sobre o uso dos modelos enquanto subsídios no ensino de ciências. O debate realismo/anti-realismo não representa uma mera curiosidade epistemológica, mas algo que têm consequências para a ciência escolar, entendida como um processo de transposição didática que, por necessidade, apóia-se em idealizações. Saídas para o problema são apresentadas, incluindo um foco nas transposições didáticas e na historiografia das ciências

PERFIL PARASITOLÓGICO DO CHEIRO VERDE COMERCIALIZADO EM FEIRAS LIVRES DE IMPERATRIZ-MA

This paper aimed to investigate the existence of parasites in parsley, composed of chives (Allium sp.) and coriander (Coriandrum sativum), sold in street markets in Imperatriz-Ma. For this purpose, we used the HPJ method or Lutz method which consists in spontaneous sedimentation of dispersed particles in liquid and visualization of the pellet under an optical microscope. The results showed contamination of almost all the samples. Though there is presence of Entamoeba coli, Entamoeba histolytica, Iodamoeba bustchilli, Endolimax nana, Acanthamoeba sp., Blastocystis hominis, Balantidium coli, Hymenolepis sp., Ascaris lumbricoides, Trichostrongylus sp., Toxocara, Enterobius vermicularis, Strongyloides sp., hookworms and coccidia as well as parasitic organisms which do not, however, indicate contamination by organic matter. Thus it was concluded that the parsley sold in free markets in Imperatriz are in poor hygienic and sanitary conditions, making it unsuitable for fresh consumption.Keywords: Coriander; chives; parasites; contamination.                           O presente estudo objetivou investigar a existência de parasitas no cheiro verde, composto por cebolinha (Allium sp.) e coentro (Coriandrum sativum), comercializado nas feiras livres da cidade de Imperatriz/MA. Para tal fim, utilizou-se o método HPJ ou método de Lutz, que consiste na sedimentação espontânea de partículas dispersas em líquido e visualização do sedimento em microscópio óptico. Os resultados apontaram a contaminação de quase a totalidade das amostras, constatando-se presença de Entamoeba coli, Entamoeba histolytica, Iodamoeba bustchilli, Endolimax nana, Blastocystis hominis, Balantidium coli, Hymenolepis sp., Ascaris lumbricoides, Trichostrongylus sp., Toxocara sp., Enterobius vermiculares, Strongyloides sp., ancilostomídeos e coccídeos, além de organismos não parasitários que, no entanto, indicam contaminação. Concluiu-se que o cheiro verde comercializado nas feiras livres de Imperatriz encontra-se em precárias condições higiênicas e sanitárias, tornando-se impróprio para o consumo in natura.Palavras-chave: Coentro, cebolinha, parasitas, contaminação

Viabilidade do pólen de laranjas doces em diferentes condições de armazenamento Viability of citrus pollen in different storage conditions

O presente trabalho foi realizado visando avaliar a viabilidade de grãos de pólen armazenados das cultivares copas cítricas Natal, Pêra e Valência. O pólen foi submetido a 3 temperaturas de armazenamento: -10ºC (freezer), 4ºC ( refrigerador) e temperatura ambiente; 2 ambientes (com e sem dessecador) e na presença e ausência de sílica-gel. A avaliação do índice de germinação foi feita com o pólen fresco e a cada 7 dias, durante 9 semanas. Para avaliar a germinação foi utilizado meio constituído de 1% de ágar e 10% de sacarose, 800 mg L-1 de nitrato de cálcio (Ca(NO3)2 4H2O), 200 mg L-1 de Ácido Bórico (H3BO3) e pH corrigido para 6,5. Os grãos de pólen foram incubados à temperatura de 25 ± 2ºC por 12 horas. As avaliações foram realizadas através da porcentagem de grãos de pólen germinados. Constatou-se que os grãos de pólen possuem redução na viabilidade com o aumento do tempo de armazenamento; o armazenamento em freezer (-10ºC) foi mais eficiente do que em refrigerador (4ºC) e à temperatura ambiente. Melhores resultados foram alcançados com os tratamentos em freezer com sílica-gel dentro de dessecador e em freezer sem sílica-gel dentro de dessecador. A cultivar Valência apresentou-se superior às demais em todos os tratamentos.<br>The present work was accomplished to evaluate the effects of storage on the viability of pollen grains from Natal, Pêra and Valência cultivars of sweet oranges. The grains were stored at 3 temperatures: -10ºC (freezer), 4ºC (refrigerator), and room temperature; 2 environments (with or without desiccator) and in the presence or absence of silica-gel. The germination was evaluated every 7 days, during 9 weeks. To evaluate the germination, a medium consisting of 1% and sucrose 10%, 800 mg L-1 calcium nitrate (Ca(NO3)2 4H2O), 200 mg L-1 boric acid (H3BO3) and pH 6,5 was used. The pollen was incubated at 25 ± 2ºC temperature for 12 hours. The evaluation was performed using the percentage of pollen grains germinated. It was observed that pollen grains viability diminished as the storage time increased; the storage in freezer temperature (-10ºC) was much more efficient than in refrigerator (4ºC) and in room temperature. The best results were reached when freezer and desiccator were used. Valência cultivar was superior when compared whit the others, in all treatments

Insect vectors of Chagas disease (Trypanosoma cruzi) in Northeastern Brazil

Abstract INTRODUCTION: Chagas disease remains a public health problem in the rural and urban areas of 19 countries in the Americas. METHODS: The aim of the present study was to investigate the Trypanosoma cruzi infection rate of triatomines collected from both intra- and peridomiciliary areas in eleven municipalities of Southeastern Ceará, Brazil, from 2009 to 2015. RESULTS: A total of 32,364 triatomine specimens, including nymphs and adults, were collected, and 31,736 (98.06%) of these were examined. More nymphs were collected than adults, and the greatest number of triatomines (n = 8,548) was collected in 2010, for which the infection rate was 1.3%, with the highest rate of infections observed for specimens from Quixere. The species collected during the study were identified as Triatoma pseudomaculata, Triatoma brasiliensis, Panstrongylus megistus, Panstrongylus lutzi, and Rhodnius nasutus, with T. pseudomaculata being the most abundant (n = 19,962). CONCLUSIONS: These results verify the presence of triatomines in both intra- and peridomiciliary areas, thereby ensuring persistence of the pathogen and consequently, the disease, as the presence of infected vectors in households is an important risk factor. According to these findings, the Chagas Disease Control Program should intensify its efforts in order to prevent the spread of the disease

Fatal outcome of chikungunya virus infection in Brazil

Federal University of Ceará. Fortaleza, CE, Brazil / Central Public Health Laboratory of Ceará State. Fortaleza, CE, Brazil.University of São Paulo. Virology Research Center. Ribeirão Preto, SP, Brazil.Federal University of Ceará. Fortaleza, CE, Brazil.University of Oxford. Department of Zoology. oxford, United Kingdom.University of São Paulo. Virology Research Center. Ribeirão Preto, SP, Brazil.University of Oxford. Department of Zoology. oxford, United Kingdom / Gorgas Memorial Institute of Health Studies. Department of Research in Virology and Biotechnology. Panama City, Panama.Central Public Health Laboratory of Ceará State. Fortaleza, CE, Brazil.Central Public Health Laboratory of Ceará State. Fortaleza, CE, Brazil / Centro Universitário Christus. Faculdade de Medicina. Fortaleza, CE, Brazil.Central Public Health Laboratory of Ceará State. Fortaleza, CE, Brazil.Federal University of Ceará. Fortaleza, CE, Brazil.State Health Secretariat of Ceará. Death Verification Service Dr Rocha Furtado. Fortaleza, CE, Brazil.Federal University of Ceará. Fortaleza, CE, Brazil.Ministério da Saúde. Secretaria de Vigilância em Saúde. Instituto Evandro Chagas. Ananindeua, PA, Brasil.Federal University of Ceará. Fortaleza, CE, Brazil.Ministério da Saúde. Secretaria de Vigilância em Saúde. Instituto Evandro Chagas. Ananindeua, PA, Brasil.Centro Universitário Christus. Faculdade de Medicina. Fortaleza, CE, Brazil.Ministério da Saúde. Secretaria de Vigilância em Saúde. Instituto Evandro Chagas. Ananindeua, PA, Brasil.Centro Universitário Christus. Faculdade de Medicina. Fortaleza, CE, Brazil.Ministério da Saúde. Secretaria de Vigilância em Saúde. Instituto Evandro Chagas. Ananindeua, PA, Brasil.Centro Universitário Christus. Faculdade de Medicina. Fortaleza, CE, Brazil.Centro Universitário Christus. Faculdade de Medicina. Fortaleza, CE, Brazil.Centro Universitário Christus. Faculdade de Medicina. Fortaleza, CE, Brazil.Federal University of Ceará. Fortaleza, CE, Brazil.Universidade Federal de Minas Gerais. Belo Horizonte, MG, Brazil.Universidade Federal de Minas Gerais. Belo Horizonte, MG, Brazil / Ministry of Health. Brasilia, DF, Brazil.Ministry of Health. Brasilia, DF, Brazil.Ministry of Health. Brasilia, DF, Brazil.Ministry of Health. Brasilia, DF, Brazil.Faculdade de Medicina São Leopoldo Mandic. Campinas, SP, Brazil.Ministério da Saúde. Secretaria de Vigilância em Saúde. Instituto Evandro Chagas. Ananindeua, PA, Brasil.University of Oxford. Department of Zoology. Oxford, United Kingdom.University of São Paulo. Virology Research Center. Ribeirão Preto, SP, Brazil.University of Oxford. Department of Zoology. Oxford, United Kingdom / Imperial College London. Department of Infectious Disease Epidemiology. London, United Kingdom.Ministério da Saúde. Secretaria de Vigilância em Saúde. Instituto Evandro Chagas. Ananindeua, PA, Brasil.Federal University of Ceará. Fortaleza, CE, Brazil.Federal University of Ceará. Fortaleza, CE, Brazil / Oswaldo Cruz Foundation - Branch Ceará. Fortaleza, CE, Brazil.BACKGROUND: Chikungunya virus (CHIKV) emerged in the Americas in 2013 and has caused approximately 2.1 million cases and >600 deaths. A retrospective investigation was undertaken to describe clinical, epidemiological, and viral genomic features associated with deaths caused by CHIKV in Ceará state, northeast Brazil. METHODS: Sera, cerebrospinal fluid (CSF), and tissue samples from 100 fatal cases with suspected arbovirus infection were tested for CHIKV, dengue virus (DENV), and Zika virus (ZIKV). Clinical, epidemiological, and death reports were obtained for patients with confirmed CHIKV infection. Logistic regression analysis was undertaken to identify independent factors associated with risk of death during CHIKV infection. Phylogenetic analysis was conducted using whole genomes from a subset of cases. RESULTS: Sixty-eight fatal cases had CHIKV infection confirmed by reverse-transcription quantitative polymerase chain reaction (52.9%), viral antigen (41.1%), and/or specific immunoglobulin M (63.2%). Co-detection of CHIKV with DENV was found in 22% of fatal cases, ZIKV in 2.9%, and DENV and ZIKV in 1.5%. A total of 39 CHIKV deaths presented with neurological signs and symptoms, and CHIKV-RNA was found in the CSF of 92.3% of these patients. Fatal outcomes were associated with irreversible multiple organ dysfunction syndrome. Patients with diabetes appear to die at a higher frequency during the subacute phase. Genetic analysis showed circulation of 2 CHIKV East-Central-South African (ECSA) lineages in Ceará and revealed no unique virus genomic mutation associated with fatal outcome. CONCLUSIONS: The investigation of the largest cross-sectional cohort of CHIKV deaths to date reveals that CHIKV-ECSA strains can cause death in individuals from both risk and nonrisk groups, including young adults. © The Author(s) 2020. Published by Oxford University Press for the Infectious Diseases Society of America

Field and classroom initiatives for portable sequence-based monitoring of dengue virus in Brazil

This work was supported by Decit, SCTIE, Brazilian Ministry of Health, Conselho Nacional de Desenvolvimento Científico - CNPq (440685/ 2016-8, 440856/2016-7 and 421598/2018-2), Coordenação de Aperfeiçoamento de Pessoal de Nível Superior - CAPES - (88887.130716/2016-00), European Union’s Horizon 2020 Research and Innovation Programme under ZIKAlliance Grant Agreement (734548), STARBIOS (709517), Fundação de Amparo à Pesquisa do Estado do Rio de Janeiro – FAPERJ (E-26/2002.930/2016), International Development Research Centre (IDRC) Canada (108411-001), European Union’s Horizon 2020 under grant agreements ZIKACTION (734857) and ZIKAPLAN (734548).Fundação Ezequiel Dias. Laboratório Central de Saúde Pública do Estado de Minas Gerais. Belo Horizonte, MG, Brazil / Latin American Genomic Surveillance Arboviral Network.Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Laboratório de Flavivírus. Rio de Janeiro, RJ, Brazil / Latin American Genomic Surveillance Arboviral Network.Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Laboratório de Flavivírus. Rio de Janeiro, RJ, Brazil Latin American Genomic Surveillance Arboviral Network.Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Laboratório de Flavivírus. Rio de Janeiro, RJ, Brazil.Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Laboratório de Flavivírus. Rio de Janeiro, RJ, Brazil.Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Leônidas e Maria Deane. Laboratório de Ecologia de Doenças Transmissíveis na Amazônia. Manaus, AM, Brazil.Secretaria de Saúde do Estado de Mato Grosso do Sul. Laboratório Central de Saúde Pública. Campo Grande, MS, Brazil.Fundação Ezequiel Dias. Laboratório Central de Saúde Pública do Estado de Minas Gerais. Belo Horizonte, MG, Brazil.Laboratório Central de Saúde Pública Dr. Giovanni Cysneiros. Goiânia, GO, Brazil.Laboratório Central de Saúde Pública Professor Gonçalo Moniz. Salvador, BA, Brazil.Secretaria de Saúde do Estado da Bahia. Salvador, BA, Brazil.Laboratório Central de Saúde Pública Dr. Milton Bezerra Sobral. Recife, PE, Brazil.Laboratório Central de Saúde Pública do Estado de Mato Grosso. Cuiabá, MT, Brazil.Laboratório Central de Saúde Pública do Distrito Federal. Brasília, DF, Brazil.Fundação Ezequiel Dias. Laboratório Central de Saúde Pública do Estado de Minas Gerais. Belo Horizonte, MG, Brazil.Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Laboratório de Flavivírus. Rio de Janeiro, RJ, Brazil.Ministério da Saúde. Secretaria de Vigilância em Saúde. Coordenação Geral dos Laboratórios de Saúde Pública. Brasília, DF, Brazil.Ministério da Saúde. Secretaria de Vigilância em Saúde. Coordenação Geral dos Laboratórios de Saúde Pública. Brasília, DF, Brazil.Organização Pan-Americana da Saúde / Organização Mundial da Saúde. Brasília, DF, Brazil.Organização Pan-Americana da Saúde / Organização Mundial da Saúde. Brasília, DF, Brazil.Organização Pan-Americana da Saúde / Organização Mundial da Saúde. Brasília, DF, Brazil.Ministério da Saúde. Secretaria de Vigilância em Saúde Coordenação Geral das Arboviroses. Brasília, DF, Brazil.Ministério da Saúde. Secretaria de Vigilância em Saúde Coordenação Geral das Arboviroses. Brasília, DF, Brazil.Ministério da Saúde. Secretaria de Vigilância em Saúde Coordenação Geral das Arboviroses. Brasília, DF, Brazil.Ministério da Saúde. Secretaria de Vigilância em Saúde Coordenação Geral das Arboviroses. Brasília, DF, Brazil.Fundação Hemocentro de Ribeirão Preto. Ribeirão Preto, SP, Brazil.Gorgas Memorial Institute for Health Studies. Panama, Panama.Universidade Federal da Bahia. Vitória da Conquista, BA, Brazil.Laboratorio Central de Salud Pública. Asunción, Paraguay.Fundação Oswaldo Cruz. Bio-Manguinhos. Rio de Janeiro, RJ, Brazil.Ministério da Saúde. Secretaria de Vigilância em Saúde. Coordenação Geral dos Laboratórios de Saúde Pública. Brasília, DF, Brazil.Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Laboratório de Flavivírus. Rio de Janeiro, RJ, Brazil.Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Laboratório de Flavivírus. Rio de Janeiro, RJ, BrazilFundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Laboratório de Flavivírus. Rio de Janeiro, RJ, BrazilMinistério da Saúde. Secretaria de Vigilância em Saúde. Instituto Evandro Chagas. Ananindeua, PA, Brasil.Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Laboratório de Flavivírus. Rio de Janeiro, RJ, Brazil.Laboratório Central de Saúde Pública do Estado de Mato Grosso do Sul. Campo Grande, MS, Brazil.Laboratório Central de Saúde Pública do Estado de Mato Grosso do Sul. Campo Grande, MS, Brazil.Instituto de Investigaciones en Ciencias de la Salud. San Lorenzo, Paraguay.Secretaria de Estado de Saúde de Mato Grosso do Sul. Campo Grande, MS, Brazil.Fundação Oswaldo Cruz. Campo Grande, MS, Brazil.Fundação Hemocentro de Ribeirão Preto. Ribeirão Preto, SP, Brazil.Laboratório Central de Saúde Pública Dr. Giovanni Cysneiros. Goiânia, GO, Brazil.Laboratório Central de Saúde Pública Dr. Giovanni Cysneiros. Goiânia, GO, Brazil.Laboratório Central de Saúde Pública Professor Gonçalo Moniz. Salvador, BA, Brazil.Laboratório Central de Saúde Pública Dr. Milton Bezerra Sobral. Recife, PE, Brazil.Laboratório Central de Saúde Pública do Distrito Federal. Brasília, DF, Brazil.Secretaria de Saúde de Feira de Santana. Feira de Santana, Ba, Brazil.Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Laboratório de Flavivírus. Rio de Janeiro, RJ, Brazil.Universidade Federal de Minas Gerais. Instituto de Ciências Biológicas. Belo Horizonte, MG, Brazil.Universidade Federal de Minas Gerais. Instituto de Ciências Biológicas. Belo Horizonte, MG, Brazil.Secretaria de Saúde do Estado de Minas Gerais. Belo Horizonte, MG, Brazil.Hospital das Forças Armadas. Brasília, DF, Brazil.Ministério da Saúde. Secretaria de Vigilância em Saúde. Brasília, DF, Brazil.Ministério da Saúde. Secretaria de Vigilância em Saúde. Brasília, DF, Brazil.Universidade Nova de Lisboa. Instituto de Higiene e Medicina Tropical. Lisboa, Portugal.University of Sydney. School of Life and Environmental Sciences and School of Medical Sciences. Marie Bashir Institute for Infectious Diseases and Biosecurity. Sydney, NSW, Australia.University of KwaZulu-Natal. College of Health Sciences. KwaZulu-Natal Research Innovation and Sequencing Platform. Durban, South Africa.University of Oxford. Peter Medawar Building. Department of Zoology. Oxford, UK.Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Laboratório de Flavivírus. Rio de Janeiro, RJ, Brazil.Universidade Estadual de Feira de Santana. Salvador, BA, Brazil.Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Gonçalo Moniz. Salvador, BA, Brazil.Universidade de Brasília. Brasília, DF, Brazil.Universidade Salvador. Salvador, BA, Brazil.Fundação Ezequiel Dias. Belo Horizonte, MG, Brazil.Fundação Ezequiel Dias. Belo Horizonte, MG, Brazil.Fundação Ezequiel Dias. Belo Horizonte, MG, Brazil.Fundação Ezequiel Dias. Belo Horizonte, MG, Brazil.Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Laboratório de Flavivírus. Rio de Janeiro, RJ, Brazil.Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Laboratório de Flavivírus. Rio de Janeiro, RJ, Brazil.Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Laboratório de Flavivírus. Rio de Janeiro, RJ, Brazil.Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Laboratório de Flavivírus. Rio de Janeiro, RJ, Brazil.Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Laboratório de Flavivírus. Rio de Janeiro, RJ, Brazil.Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Laboratório de Flavivírus. Rio de Janeiro, RJ, Brazil.Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Laboratório de Flavivírus. Rio de Janeiro, RJ, Brazil.Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Laboratório de Flavivírus. Rio de Janeiro, RJ, Brazil.Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Laboratório de Hantaviroses e Rickettsioses. Rio de Janeiro, RJ, Brazil.Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Leônidas e Maria Deane. Laboratório de Ecologia de Doenças Transmissíveis na Amazônia. Manaus, AM, Brazil.Universidade Federal de Minas Gerais. Instituto de Ciências Biológicas. Belo Horizonte, MG, Brazil.Universidade Federal de Minas Gerais. Instituto de Ciências Biológicas. Belo Horizonte, MG, Brazil.Universidade Federal de Minas Gerais. Instituto de Ciências Biológicas. Belo Horizonte, MG, Brazil.Universidade Federal de Minas Gerais. Instituto de Ciências Biológicas. Belo Horizonte, MG, Brazil.Universidade Federal de Minas Gerais. Instituto de Ciências Biológicas. Belo Horizonte, MG, Brazil.Universidade Federal de Minas Gerais. Instituto de Ciências Biológicas. Belo Horizonte, MG, Brazil.Universidade Federal de Minas Gerais. Instituto de Ciências Biológicas. Belo Horizonte, MG, Brazil.Universidade Federal de Minas Gerais. Instituto de Ciências Biológicas. Belo Horizonte, MG, Brazil.Universidade Federal de Minas Gerais. Instituto de Ciências Biológicas. Belo Horizonte, MG, Brazil.Universidade Federal de Minas Gerais. Instituto de Ciências Biológicas. Belo Horizonte, MG, Brazil.Universidade Federal de Minas Gerais. Instituto de Ciências Biológicas. Belo Horizonte, MG, Brazil.Universidade Federal de Minas Gerais. Instituto de Ciências Biológicas. Belo Horizonte, MG, Brazil.Universidade Federal de Minas Gerais. Instituto de Ciências Biológicas. Belo Horizonte, MG, Brazil.Universidade Federal de Minas Gerais. Faculdade de Medicina Veterinária. Belo Horizonte, MG, Brazil.Universidade Federal de Minas Gerais. Faculdade de Medicina Veterinária. Belo Horizonte, MG, Brazil.Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Gonçalo Moniz. Salvador, BA, Brazil.Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Gonçalo Moniz. Salvador, BA, Brazil.Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Gonçalo Moniz. Salvador, BA, Brazil.Laboratório Central de Saúde Pública do Estado do Paraná. Curitiba, PR, Brazil.Laboratório Central de Saúde Pública do Estado de Rondônia. Porto Velho, RO, Brazil.Laboratório Central de Saúde Pública do Estado do Amazonas. Manaus, AM, Brazil.Laboratório Central de Saúde Pública do Estado do Rio Grande do Norte. Natal, RN, Brazil.Laboratório Central de Saúde Pública do Estado de Mato Grosso. Cuiabá, MT, Brazil.Laboratório Central de Saúde Pública Professor Gonçalo Moniz. Salvador, BA, Brazil.Laboratório Central de Saúde Pública Professor Gonçalo Moniz. Salvador, BA, Brazil.Laboratório Central de Saúde Pública Noel Nutels. Rio de Janeiro, RJ, Brazil.Instituto Adolfo Lutz. São Paulo, SP, Brazil.Ministério da Saúde. Secretaria de Vigilância em Saúde. Instituto Evandro Chagas. Ananindeua, PA, Brasil.Ministério da Saúde. Secretaria de Vigilância em Saúde. Instituto Evandro Chagas. Ananindeua, PA, Brasil.Ministério da Saúde. Secretaria de Vigilância em Saúde. Instituto Evandro Chagas. Ananindeua, PA, Brasil.Ministério da Saúde. Secretaria de Vigilância em Saúde. Instituto Evandro Chagas. Ananindeua, PA, Brasil.Universidade de São Paulo. Instituto de Medicina Tropical. São Paulo, SP, Brazil.Universidade de São Paulo. Instituto de Medicina Tropical. São Paulo, SP, Brazil.Universidade de São Paulo. Instituto de Medicina Tropical. São Paulo, SP, Brazil.University of Oxford. Peter Medawar Building. Department of Zoology. Oxford, UK.Instituto Nacional de Enfermedades Virales Humanas Dr. Julio Maiztegui. Pergamino, Argentina.Gorgas Memorial Institute for Health Studies. Panama, Panama.Gorgas Memorial Institute for Health Studies. Panama, Panama.Gorgas Memorial Institute for Health Studies. Panama, Panama.Instituto de Salud Pública de Chile. Santiago, Chile.Instituto de Diagnóstico y Referencia Epidemiológicos Dr. Manuel Martínez Báez. Ciudad de México, México.Instituto Nacional de Enfermedades Infecciosas Dr Carlos G Malbrán. Buenos Aires, Argentina.Ministerio de Salud Pública de Uruguay. Montevideo, Uruguay.Instituto Costarricense de Investigación y Enseñanza em Nutrición y Salud. Tres Ríos, Costa Rica.Instituto Nacional de Investigacion en Salud Publica Dr Leopoldo Izquieta Pérez. Guayaquil, Ecuador.Instituto Nacional de Investigacion en Salud Publica Dr Leopoldo Izquieta Pérez. Guayaquil, Ecuador.Universidade Federal de Pernambuco. Recife, PE, Brazil.Secretaria de Saúde do Estado de Minas Gerais. Belo Horizonte. MG, Brazil.Ministério da Saúde. Secretaria de Vigilância em Saúde. Brasília, DF, Brazil.Ministério da Saúde. Secretaria de Vigilância em Saúde. Brasília, DF, Brazil.Universidade Federal do Rio de Janeiro. Rio de Janeiro, RJ, Brazil.Universidade Federal do Rio de Janeiro. Rio de Janeiro, RJ, Brazil.Universidade Federal do Rio de Janeiro. Rio de Janeiro, RJ, Brazil.Universidade Federal do Rio de Janeiro. Rio de Janeiro, RJ, Brazil.Universidade Federal de Ouro Preto. Ouro Preto, MG, Brazil.Universidade Federal de Ouro Preto. Ouro Preto, MG, Brazil.Universidade Federal de Ouro Preto. Ouro Preto, MG, Brazil.Universidade Federal de Ouro Preto. Ouro Preto, MG, Brazil.Fundação Hemocentro de Ribeirão Preto. Ribeirão Preto, SP, Brazil.Secretaria de Saúde de Feira de Santana. Feira de Santana, BA, Brazil.Universidade Federal de Minas Gerais. Instituto de Ciências Biológicas. Belo Horizonte, MG, Brazil.Brazil experienced a large dengue virus (DENV) epidemic in 2019, highlighting a continuous struggle with effective control and public health preparedness. Using Oxford Nanopore sequencing, we led field and classroom initiatives for the monitoring of DENV in Brazil, generating 227 novel genome sequences of DENV1-2 from 85 municipalities (2015–2019). This equated to an over 50% increase in the number of DENV genomes from Brazil available in public databases. Using both phylogenetic and epidemiological models we retrospectively reconstructed the recent transmission history of DENV1-2. Phylogenetic analysis revealed complex patterns of transmission, with both lineage co-circulation and replacement. We identified two lineages within the DENV2 BR-4 clade, for which we estimated the effective reproduction number and pattern of seasonality. Overall, the surveillance outputs and training initiative described here serve as a proof-of-concept for the utility of real-time portable sequencing for research and local capacity building in the genomic surveillance of emerging viruses