Actividad repelente del aceite esencial de Laurelia sempervirens (Ruiz & Pav.) Tul. (Monimiaceae) en Triatoma infestans (Klug) (Reduviidae)

Triatoma infestans (Klug) is the principal vector of Chagas disease in Bolivia and neighboring countries. The objective of this study was to determine the chemical composition of the EO of the Chilean laurel, Laurelia sempervirens (Ruiz & Pav.) Tul. (Monimiaceae) and to evaluate its repellent effect on fifth-instar nymphs of T. infestans. The EO from L. sempervirens was obtained by hydrodistillation and analyzed by gas chromatography coupled to mass spectrometry (GC-MS). Their main components were cis-isosafrole (89.8%), β-terpinene (3.9%), trans-ocimene (2.7%) and methyleugenol (2.2%). Repellency was evaluated on a circle of filter paper divided into two equal zones which were impregnated with test substances [EO or N,N-diethyl-3-methylbenzamide (DEET) as positive control] and acetone as blank control, respectively. Several concentrations of test substances between 4.125 and 132 μg/cm2 were tested. The EO from L. sempervirens produced significant repellency at concentrations equal or above 66.0 μg/cm2, while DEET repelled starting at 16.5 μg/cm2. Future works will be oriented to the study of repellent properties of cis-isosafrole alone and mixed with β-terpinene, trans-ocimene and methyleugenol on T. infestans.Triatoma infestans (Klug) es el vector principal de la enfermedad de Chagas en Bolivia y los países vecinos. El objetivo de este estudio fue determinar la composición química del AE del laurel chileno, Laurelia sempervirens (Ruiz & Pav.) Tul. (Monimiaceae) y evaluar su efecto repelente en ninfas del quinto estadio de T. infestans. La AE de L. sempervirens se obtuvo por hidrodestilación y se analizó por cromatografía de gases acoplada a espectrometría de masas (CG-EM). Sus componentes principales fueron cis-isosafrol (89.8%), βterpineno (3.9%), trans-ocimeno (2.7%) y metileugenol (2.2%). La repelencia se evaluó en un círculo de papel de filtro dividido en dos zonas iguales que se impregnaron con sustancias de prueba [AE o N,N-dietil-3-metilbenzamida (DEET) como control positivo] y acetona como control en blanco, respectivamente. Se analizaron varias concentraciones de sustancias de prueba entre 4.125 y 132 μg/cm2. El AE de L. sempervirens produjo una repelencia significativa a concentraciones iguales o superiores a 66.0 μg/cm2, mientras que DEET repelió a partir de 16.5 μg/cm2. Futuros trabajos serán orientados al estudio de las propiedades repelentes de cis-isosafrol solo y mezclado con βterpineno, trans-ocimeno y metileugenol en T. infestans.Fil: Mojica, Marycruz. Universidad Mayor Real y Pontificia de San Francisco Xavier de Chuquisaca; BoliviaFil: Alzogaray, Raúl Adolfo. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Unidad de Investigación y Desarrollo Estratégico para la Defensa. Ministerio de Defensa. Unidad de Investigación y Desarrollo Estratégico para la Defensa; Argentina. Ministerio de Defensa. Instituto de Investigaciones Científicas y Técnicas para la Defensa; Argentina. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Instituto de Investigaciones Científicas y Técnicas para la Defensa. Centro de Investigación de Plagas e Insecticidas; ArgentinaFil: Mengoni, Sofia Laura. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Unidad de Investigación y Desarrollo Estratégico para la Defensa. Ministerio de Defensa. Unidad de Investigación y Desarrollo Estratégico para la Defensa; Argentina. Ministerio de Defensa. Instituto de Investigaciones Científicas y Técnicas para la Defensa; Argentina. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Instituto de Investigaciones Científicas y Técnicas para la Defensa. Centro de Investigación de Plagas e Insecticidas; ArgentinaFil: Reynoso, Mercedes María Noel. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Unidad de Investigación y Desarrollo Estratégico para la Defensa. Ministerio de Defensa. Unidad de Investigación y Desarrollo Estratégico para la Defensa; Argentina. Ministerio de Defensa. Instituto de Investigaciones Científicas y Técnicas para la Defensa; Argentina. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Instituto de Investigaciones Científicas y Técnicas para la Defensa. Centro de Investigación de Plagas e Insecticidas; ArgentinaFil: Pinto, Carlos Fernando. Universidad Mayor Real y Pontificia de San Francisco Xavier de Chuquisaca; BoliviaFil: Niemeyer, Hermann M.. Universidad de Chile; ChileFil: Echeverría, Javier. Universidad de Santiago de Chile; Chil

Development of high-affinity nanobodies specific for NaV1.4 and NaV1.5 voltage-gated sodium channel isoforms

Voltage-gated sodium channels, NaVs, are responsible for the rapid rise of action potentials in excitable tissues. NaV channel mutations have been implicated in several human genetic diseases, such as hypokalemic periodic paralysis, myotonia, and long-QT and Brugada syndromes. Here, we generated high-affinity anti-NaV nanobodies (Nbs), Nb17 and Nb82, that recognize the NaV1.4 (skeletal muscle) and NaV1.5 (cardiac muscle) channel isoforms. These Nbs were raised in llama (Lama glama) and selected from a phage display library for high affinity to the C-terminal (CT) region of NaV1.4. The Nbs were expressed in Escherichia coli, purified, and bio-physically characterized. Development of high-affinity Nbs specifically targeting a given human NaV isoform has been challenging because they usually show undesired cross-reactivity for different NaV isoforms. Our results show, however, that Nb17 and Nb82 recognize the CTNaV1.4 or CTNaV1.5 over other CTNav isoforms. Kinetic experiments by biolayer interferometry determined that Nb17 and Nb82 bind to the CTNaV1.4 and CTNaV1.5 with high affinity (KD ~ 40-60 nM). In addition, as proof of concept, we show that Nb82 could detect NaV1.4 and NaV1.5 channels in mammalian cells and tissues by Western blot. Furthermore, human embryonic kidney cells expressing holo NaV1.5 channels demonstrated a robust FRET-binding efficiency for Nb17 and Nb82. Our work lays the foundation for developing Nbs as anti-NaV reagents to capture NaVs from cell lysates and as molecular visualization agents for NaVs.Fil: Srinivasan, Lakshmi. University Johns Hopkins; Estados UnidosFil: Alzogaray, Vanina Andrea. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Parque Centenario. Instituto de Investigaciones Bioquímicas de Buenos Aires. Fundación Instituto Leloir. Instituto de Investigaciones Bioquímicas de Buenos Aires; ArgentinaFil: Selvakumar, Dakshnamurthy. Fortébio; Estados UnidosFil: Nathan, Sara. University Johns Hopkins; Estados UnidosFil: Yoder, Jesse B.. University Johns Hopkins; Estados UnidosFil: Wright, Katharine M.. University Johns Hopkins; Estados UnidosFil: Klinke, Sebastian. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Parque Centenario. Instituto de Investigaciones Bioquímicas de Buenos Aires. Fundación Instituto Leloir. Instituto de Investigaciones Bioquímicas de Buenos Aires; ArgentinaFil: Nwafor, Justin N.. University Johns Hopkins; Estados UnidosFil: Labanda, María Soledad. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Parque Centenario. Instituto de Investigaciones Bioquímicas de Buenos Aires. Fundación Instituto Leloir. Instituto de Investigaciones Bioquímicas de Buenos Aires; ArgentinaFil: Goldbaum, Fernando Alberto. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Parque Centenario. Instituto de Investigaciones Bioquímicas de Buenos Aires. Fundación Instituto Leloir. Instituto de Investigaciones Bioquímicas de Buenos Aires; ArgentinaFil: Schön, Arne. University Johns Hopkins; Estados UnidosFil: Freire, Ernesto. University Johns Hopkins; Estados UnidosFil: Tomaselli, Gordon F.. University Johns Hopkins; Estados UnidosFil: Amzel, León Mario. University Johns Hopkins; Estados UnidosFil: Ben-Johny, Manu. Columbia University; Estados UnidosFil: Gabelli, Sandra. University Johns Hopkins; Estados Unido

Potes de fumo, ovitraps e outras ferramentas com baixo impacto ambiental para controlo de barbeiros e mosquitos

The Triatoma infestans bedbug (known in Argentina as “vinchuca”) and four species of mosquitoes (Aedes aegypti, Culex pipiens quinquefasciatus, Anopheles pseudopunctipennis and An. darlingi) are the main insect vectors of disease in Argentina. Since 1977, the Argentine Pest and Insecticide Research Center (CIPEIN) has been doing research on these insects and developing products for their control that have a low impact on human health and the environment. Recognized as a Reference Center by the Pan American Health Organization and the World Health Organization, CIPEIN was a pioneer in the development of insecticide products in Latin America. The aim of this article is to review the status of the health issues involving kissing bugs and mosquitoes in Argentina and to describe the main contributions of CIPEIN to their study and control.La chinche Triatoma infestans (conocida en Argentina como “vinchuca”) y cuatro especies de mosquitos (Aedes aegypti, Culex pipiens quinquefasciatus, Anopheles pseudopunctipennis y An. darlingi) son los principales insectos vectores de enfermedades en el territorio argentino. Desde 1977, el Centro de Investigaciones de Plagas e Insecticidas de Argentina (CIPEIN) investiga a estos insectos y desarrolla productos para controlarlos con un bajo impacto para la salud humana y el ambiente. Reconocido como Centro de Referencia por la Organización Panamericana de la Salud y la Organización Mundial de la Salud, el CIPEIN fue pionero en el desarrollo de productos insecticidas en América Latina. El objetivo de este artículo es reseñar la situación de la problemática sanitaria que involucra a vinchucas y mosquitos en Argentina, y describir los principales aportes del CIPEIN en su estudio y control.O hematófago Triatoma infestans (conhecido na Argentina como “vinchuca”) e quatro espécies de mosquitos (Aedes aegypti, Culex pipiens quinquefasciatus, Anopheles pseudopunctipennis e An. darlingi) são os principais insetos vetores de doenças no território argentino. Desde 1977, o Centro Argentino de Investigação de Pragas e Inseticidas (CIPEIN) investiga esses insetos e desenvolve produtos para controlá-los com baixo impacto na saúde humana e no meio ambiente. Reconhecido como Centro de Referência pela Organização Pan-Americana da Saúde e pela Organização Mundial da Saúde, o CIPEIN foi pioneiro no desenvolvimento de produtos inseticidas na América Latina. O objetivo deste artigo é fazer uma revisão da situação do problema de saúde envolvendo barbeiros e mosquitos na Argentina e descrever as principais contribuições da CIPEIN no seu estudo e controlo

Generation of recombinant single-chain antibodies neutralizing the cytolytic activity of vaginolysin, the main virulence factor of Gardnerella vaginalis

Generated scFvs is the first example of recombinant single-chain antibodies with VLY-neutralizing activity produced in prokaryote expression system. G. vaginalis caused infections continue to be a world-wide problem, therefore neutralizing recombinant antibodies may provide novel therapeutic agents useful in the treatment of bacterial vaginosis and other diseases caused by G. vaginalis

Desarrollo de un suero equino hiperinmune para el tratamiento de COVID-19 en Argentina

La enfermedad denominada COVID-19 es causada por el coronavirus SARS-CoV-2 y es actualmente considerada una pandemia a nivel global. El desarrollo de vacunas es sin duda la mejor estrategia a largo plazo, pero debido a la emergencia sanitaria, existe una necesidad urgente de encontrar soluciones rápidas y efectivas para el tratamiento de la enfermedad. Hasta la fecha, el uso de plasma de convalecientes es la única inmunoterapia disponible para pacientes hospitalizados con COVID-19. El uso de anticuerpos policlonales equinos (EpAbs) es otra alternativa terapéutica interesante. La nueva generación de EpAbs incluyen el procesamiento y purificación de los mismos y la obtención de fragmentos F(ab’)2 con alta pureza y un excelente perfil de seguridad en humanos. Los EpAbs son fáciles de producir, lo cual permite el desarrollo rápido y la elaboración a gran escala de un producto terapéutico. En este trabajo mostramos el desarrollo de un suero terapéutico obtenido luego de la inmunización de caballos utilizando el receptor-binding domain de la glicoproteína Spike del virus. Nuestro producto mostró ser alrededor de 50 veces más potente en ensayos de seroneutralización in vitro que el promedio de los plasmas de convalecientes. Estos resultados nos permitirían testear la seguridad y eficacia de nuestro producto en ensayos clínicos de fase 2/3 a realizarse a partir de julio de 2020 en la zona metropolitana de Buenos Aires, Argentina.The disease named COVID-19, caused by the SARS-CoV-2 coronavirus, is currently generating a global pandemic. Vaccine development is no doubt the best long-term immunological approach, but in the current epidemiologic and health emergency there is a need for rapid and effective solutions. Convalescent plasma is the only antibody-based therapy available for COVID-19 patients to date. Equine polyclonal antibodies (EpAbs) put forward a sound alternative. The new generation of processed and purified EpAbs containing highly purified F(ab’)2 fragments demonstrated to be safe and well tolerated. EpAbs are easy to manufacture allowing a fast development and scaling up for a treatment. Based on these ideas, we present a new therapeutic product obtained after immunization of horses with the receptor-binding domain of the viral Spike glycoprotein. Our product shows around 50 times more potency in in vitro seroneutralization assays than the average of convalescent plasma. This result may allow us to test the safety and efficacy of this product in a phase 2/3 clinical trial to be conducted in July 2020 in the metropolitan area of Buenos Aires, Argentina.Fil: Zylberman, Vanesa. Inmunova; Argentina. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas; ArgentinaFil: Sanguineti, Santiago. Inmunova; Argentina. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas; ArgentinaFil: Pontoriero, Andrea. Dirección Nacional de Instituto de Investigación. Administración Nacional de Laboratorio e Instituto de Salud "Dr. C. G. Malbrán"; ArgentinaFil: Higa, Sandra V.. Instituto Biológico Argentino S.A.I.C.; ArgentinaFil: Cerutti, Maria Laura. Universidad Nacional de San Martín. Centro de Rediseño e Ingeniería de Proteínas; Argentina. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas; ArgentinaFil: Morrone Seijo, Susana María. Inmunova; Argentina. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas; ArgentinaFil: Pardo, Romina Paola. Inmunova; Argentina. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas; ArgentinaFil: Muñoz, Luciana. Inmunova; ArgentinaFil: Acuña Intieri, María Eugenia. Universidad Nacional de San Martín. Centro de Rediseño e Ingeniería de Proteínas; ArgentinaFil: Alzogaray, Vanina Andrea. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Parque Centenario. Instituto de Investigaciones Bioquímicas de Buenos Aires. Fundación Instituto Leloir. Instituto de Investigaciones Bioquímicas de Buenos Aires; ArgentinaFil: Avaro, Martín M.. Dirección Nacional de Instituto de Investigación. Administración Nacional de Laboratorio e Instituto de Salud "Dr. C. G. Malbrán"; ArgentinaFil: Benedetti, Estefanía. Dirección Nacional de Instituto de Investigación. Administración Nacional de Laboratorio e Instituto de Salud "Dr. C. G. Malbrán"; ArgentinaFil: Berguer, Paula Mercedes. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Parque Centenario. Instituto de Investigaciones Bioquímicas de Buenos Aires. Fundación Instituto Leloir. Instituto de Investigaciones Bioquímicas de Buenos Aires; ArgentinaFil: Bocanera, Laura. mAbxience; ArgentinaFil: Bukata, Lucas. Inmunova; Argentina. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas; ArgentinaFil: Bustelo, Marina S.. Inmunova; ArgentinaFil: Campos, Ana M.. Dirección Nacional de Instituto de Investigación. Administración Nacional de Laboratorio e Instituto de Salud "Dr. C. G. Malbrán"; ArgentinaFil: Colonna, Mariana. Inmunova; ArgentinaFil: Correa, Elisa. mAbxience; ArgentinaFil: Cragnaz, Lucí­a. mAbxience; ArgentinaFil: Dattero, María E.. Dirección Nacional de Instituto de Investigación. Administración Nacional de Laboratorio e Instituto de Salud "Dr. C. G. Malbrán"; ArgentinaFil: Dellafiore, María Andrea. mAbxience; Argentina. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas; ArgentinaFil: Foscaldi, Sabrina Andrea. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Parque Centenario. Instituto de Investigaciones Bioquímicas de Buenos Aires. Fundación Instituto Leloir. Instituto de Investigaciones Bioquímicas de Buenos Aires; ArgentinaFil: González, Joaquí­n V.. Inmunova; ArgentinaFil: Guerra, Luciano Lucas. mAbxience; Argentina. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas; ArgentinaFil: Klinke, Sebastian. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Parque Centenario. Instituto de Investigaciones Bioquímicas de Buenos Aires. Fundación Instituto Leloir. Instituto de Investigaciones Bioquímicas de Buenos Aires; ArgentinaFil: Labanda, María Soledad. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Parque Centenario. Instituto de Investigaciones Bioquímicas de Buenos Aires. Fundación Instituto Leloir. Instituto de Investigaciones Bioquímicas de Buenos Aires; ArgentinaFil: Lauché, Constanza Elena. Inmunova; ArgentinaFil: López, Juan C.. Instituto Biológico Argentino S.A.I.C.; ArgentinaFil: Martínez, Anabela M.. Instituto Biológico Argentino S.A.I.C.; ArgentinaFil: Otero, Lisandro Horacio. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Parque Centenario. Instituto de Investigaciones Bioquímicas de Buenos Aires. Fundación Instituto Leloir. Instituto de Investigaciones Bioquímicas de Buenos Aires; ArgentinaFil: Peyric, Elías H.. Instituto Biológico Argentino S.A.I.C.; ArgentinaFil: Ponziani, Pablo F.. Instituto Biológico Argentino S.A.I.C.; ArgentinaFil: Ramondino, Romina. Inmunova; ArgentinaFil: Rinaldi, Jimena Julieta. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Parque Centenario. Instituto de Investigaciones Bioquímicas de Buenos Aires. Fundación Instituto Leloir. Instituto de Investigaciones Bioquímicas de Buenos Aires; ArgentinaFil: Rodrí­guez, Santiago. mAbxience; ArgentinaFil: Russo, Javier E.. Instituto Biológico Argentino S.A.I.C.; ArgentinaFil: Russo, Mara Laura. Dirección Nacional de Instituto de Investigación. Administración Nacional de Laboratorio e Instituto de Salud "Dr. C. G. Malbrán"; Argentina. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas; ArgentinaFil: Saavedra, Soledad Lorena. Instituto Biológico Argentino S.A.I.C.; Argentina. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas; ArgentinaFil: Seigelchifer, Mauricio. mAbxience; ArgentinaFil: Sosa, Santiago. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Parque Centenario. Instituto de Investigaciones Bioquímicas de Buenos Aires. Fundación Instituto Leloir. Instituto de Investigaciones Bioquímicas de Buenos Aires; ArgentinaFil: Vilariño, Claudio. Universidad Nacional de San Martín. Centro de Rediseño e Ingeniería de Proteínas; ArgentinaFil: López Biscayart, Patricia. Instituto Biológico Argentino S.A.I.C.; ArgentinaFil: Corley, Esteban. mAbxience; ArgentinaFil: Spatz, Linus. Inmunova; ArgentinaFil: Baumeister, Elsa. Dirección Nacional de Instituto de Investigación. Administración Nacional de Laboratorio e Instituto de Salud "Dr. C. G. Malbrán"; ArgentinaFil: Goldbaum, Fernando Alberto. Universidad Nacional de San Martín. Centro de Rediseño e Ingeniería de Proteínas; Argentina. Inmunova; Argentina. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Parque Centenario. Instituto de Investigaciones Bioquímicas de Buenos Aires. Fundación Instituto Leloir. Instituto de Investigaciones Bioquímicas de Buenos Aires; Argentin

Single domain antibodies: promising experimental and therapeutic tools in infection and immunity

Antibodies are important tools for experimental research and medical applications. Most antibodies are composed of two heavy and two light chains. Both chains contribute to the antigen-binding site which is usually flat or concave. In addition to these conventional antibodies, llamas, other camelids, and sharks also produce antibodies composed only of heavy chains. The antigen-binding site of these unusual heavy chain antibodies (hcAbs) is formed only by a single domain, designated VHH in camelid hcAbs and VNAR in shark hcAbs. VHH and VNAR are easily produced as recombinant proteins, designated single domain antibodies (sdAbs) or nanobodies. The CDR3 region of these sdAbs possesses the extraordinary capacity to form long fingerlike extensions that can extend into cavities on antigens, e.g., the active site crevice of enzymes. Other advantageous features of nanobodies include their small size, high solubility, thermal stability, refolding capacity, and good tissue penetration in vivo. Here we review the results of several recent proof-of-principle studies that open the exciting perspective of using sdAbs for modulating immune functions and for targeting toxins and microbes

Toxicological interactions in insects exposed to simple mixtures containing botanical monoterpenes and conventional insecticides

Due to its low toxicity in mammals and very low environmental impact, some botanical monoterpenes with insecticidal activity are an attractive alternative to conventional insecticides. There is extensive literature on the insecticidal activity of individual monoterpenes, but very few studies about toxicity of simple mixtures containing monoterpenes (2-4 components) or monoterpenes and conventional insecticides (organophosphorus, carbamates, pyrethroids, neonicotinoids). Additive, antagonistic and synergistic interactions have been reported for such a mixtures when applied on several insect pest species. The identification of monoterpenes that increase the toxicity of conventional insecticides has a potential practical application. It could be the first step towards the development of products to control pests by applying lower doses of such insecticides.Fil: Reynoso, Mercedes M. N.. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Unidad de Investigación y Desarrollo Estratégico para la Defensa. Ministerio de Defensa. Unidad de Investigación y Desarrollo Estratégico para la Defensa; Argentina. Ministerio de Defensa. Instituto de Investigaciones Científicas y Técnicas para la Defensa; Argentina. Universidad Nacional de San Martín; ArgentinaFil: Zerba, Eduardo Nicolás. Universidad Nacional de San Martín; Argentina. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas; ArgentinaFil: Alzogaray, Raúl Adolfo. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Unidad de Investigación y Desarrollo Estratégico para la Defensa. Ministerio de Defensa. Unidad de Investigación y Desarrollo Estratégico para la Defensa; Argentina. Ministerio de Defensa. Instituto de Investigaciones Científicas y Técnicas para la Defensa; Argentina. Universidad Nacional de San Martín; Argentin

Insecticidal activity of essential oils from eleven Eucalyptus spp. and two hybrids: lethal and sublethal effects of their major components on Blattella germanica

The aim of the current study was to evaluate the fumigant activity of the essential oils from 11 species of the genus Eucalyptus and two of their hybrids on first instar of Blattella germanica L. The fumigant activity and repellence of the four major monoterpene components of these essential oils also were tested. Fumigant activity was evaluated by exposing nymphs to the vapors emitted by 50 microl of essential oil or monoterpene in a closed container. The lowest knockdown time 50% (KT50) values, expressed in minutes, were elicited by the essential oils of the Eucalyptus grandis X Eucalyptus tereticornis (57.9) hybrid, Eucalyptus sideroxylon A. Cunn (62.0), E. grandis X Eucalyptus camaldulensis (63.8) hybrid, Eucalyptus viminalis Labill (64.1), Eucalyptus dunnii Maiden (64.5), and Eucalyptus grandis (Hill) ex Maiden (68.7). The KT50 values for the remaining essential oils ranged between 74.5 (E. saligna Smith) and 161.4 min (E. tereticornis Smith). The essential oil from the hybrid E. grandis X E. tereticornis was 3.7 times less toxic than dichlorvos (positive control). The KT50 values of monoterpenes were 38.8 for alpha-pinene, 55.3 for 1,8-cineole, 175.6 for p-cymene, and 178.3 for gamma-terpinene. Alpha-pinene was 2.5 times less toxic than dichlorvos. There was a strong positive correlation between the fumigant activity of essential oils and their corresponding 1,8-cineole and alpha-pinene concentration. Repellency was quantified using a video tracking system. Two concentrations of monoterpenes were studied (7 and 70 microg/cm2). All compounds produced a light repellent effect but only when applied at 70 microg/cm2. In all cases, the repellent effect was less than that produced by the broad-spectrum insect repellent N,N-diethyl-3-methylbenzamide (positive control).1.699 JCR (2011) Q1, 20/86 EntomologyUE