Delta aminolevulinic acid dehydratase (ALAD) of tilapia (Oreochromis niloticus) in the monitoring of lead in the aquatic environment

Made available in DSpace on 2012-09-06T01:12:28Z (GMT). No. of bitstreams: 2 license.txt: 1748 bytes, checksum: 8a4605be74aa9ea9d79846c1fba20a33 (MD5) 1124.pdf: 868325 bytes, checksum: 004f29bcc1817017cc6a821b0a0377d4 (MD5) Previous issue date: 2008Fundação Oswaldo Cruz. Escola Nacional de Saúde Pública Sergio Arouca. Rio de Janeiro, RJ, Brasil.O chumbo é um metal com características físico-químicas largamente empregadas na indústria levando à sua grande dispersão no ambiente. O chumbo causa alguns efeitos hematológicos na biogênese do radical Heme da hemoglobina inibindo a enzima delta aminolevulínico desidratase (ALAD; EC 2.4.1.24). O objetivo desse estudo é avaliar o potencial da tilápia (Oreochromis niloticus), que resiste a muitas condições adversas e está sendo extensamente cultivada para monitorar o chumbo em ambiente aquático usando ALAD como biomarcador. Machos de tilápia pesando ao redor de 200g foram obtidos de um criador comercial e até três peixes foram aclimatados em tanques de plástico contendo 40L de água filtrada por celulose e carvão ativado sob aeração constante. Os peixes foram anestesiados com eugenol e injetados através do peritônio com doses de 1, 10 e 100mg de acetato de chumbo por kg de peixe. Depois de 24 horas, os peixes foram anestesiados com eugenol e o sangue foi coletado por punção da veia caudal e o fígado foi coletado depois do sacrifício por secção da espinha dorsal. A atividade de ALAD foi determinada no sangue e em homogeneizados de fígado pelo de método de SAKAI (Int. Arch. Occup. Environ. Health 68(2):126-32, 1996) sem usar DTT, que não reativa a ALAD de tilápia (...

History, epidemiology and diagnostics of dengue in the American and Brazilian contexts: a review

Abstract Dengue virus (DENV), an arbovirus transmitted by mosquitoes, has become a major threat to American human life, reaching approximately 23 million cases from 1980 to 2017. Brazil is among the countries most affected by this terrible viral disease, with 13.6 million cases. DENV has four different serotypes, DENV1-4, which show a broad clinical spectrum. Dengue creates a staggering epidemiological and economic burden for endemic countries. Without a specific therapy and with a commercial vaccine that presents some problems relative to its full effectiveness, initiatives to improve vector control strategies, early disease diagnostics and the development of vaccines and antiviral drugs are priorities. In this study, we present the probable origins of dengue in America and the trajectories of its spread. Overall, dengue diagnostics are costly, making the monitoring of dengue epidemiology more difficult and affecting physicians’ therapeutic decisions regarding dengue patients, especially in developing countries. This review also highlights some recent and important findings regarding dengue in Brazil and the Americas. We also summarize the existing DENV polymerase chain reaction (PCR) diagnostic tests to provide an improved reference since these tests are useful and accurate at discriminating DENV from other flaviviruses that co-circulate in the Americas. Additionally, these DENV PCR assays ensure virus serotyping, enabling epidemiologic monitoring

Polyphenol-Rich Diets Exacerbate AMPK-Mediated Autophagy, Decreasing Proliferation of Mosquito Midgut Microbiota, and Extending Vector Lifespan

Submitted by Sandra Infurna ([email protected]) on 2017-03-16T12:33:29Z No. of bitstreams: 1 rubem2_mennabarreto_etal_IOC_2016.pdf: 2327344 bytes, checksum: 6800e46b47583d5b57ed1a97317d8d30 (MD5)Approved for entry into archive by Sandra Infurna ([email protected]) on 2017-03-16T12:57:48Z (GMT) No. of bitstreams: 1 rubem2_mennabarreto_etal_IOC_2016.pdf: 2327344 bytes, checksum: 6800e46b47583d5b57ed1a97317d8d30 (MD5)Made available in DSpace on 2017-03-16T12:57:48Z (GMT). No. of bitstreams: 1 rubem2_mennabarreto_etal_IOC_2016.pdf: 2327344 bytes, checksum: 6800e46b47583d5b57ed1a97317d8d30 (MD5) Previous issue date: 2016Universidade Federal do Rio de Janeiro. Instituto de Bioquímica Médica Leopoldo De Meis. Programa de Biologia Molecular e Biotecnologia. Laboratório de Sinalização Celular. Rio de Janeiro, RJ, Brasil / Instituto Nacional de Ciência e Tecnologia em Entomologia Molecular. Rio de Janeiro, RJ, Brasil.Universidade Federal do Rio de Janeiro. Instituto de Bioquímica Médica Leopoldo De Meis. Programa de Biologia Molecular e Biotecnologia. Laboratório de Sinalização Celular. Rio de Janeiro, RJ, Brasil / Instituto Nacional de Ciência e Tecnologia em Entomologia Molecular. Rio de Janeiro, RJ, Brasil.Universidade Federal do Rio de Janeiro. Instituto de Bioquímica Médica Leopoldo De Meis. Programa de Biologia Molecular e Biotecnologia. Laboratório de Sinalização Celular. Rio de Janeiro, RJ, Brasil / Instituto Nacional de Ciência e Tecnologia em Entomologia Molecular. Rio de Janeiro, RJ, Brasil.Universidade Federal do Rio de Janeiro. Instituto de Bioquímica Médica Leopoldo De Meis. Programa de Biologia Molecular e Biotecnologia. Laboratório de Sinalização Celular. Rio de Janeiro, RJ, Brasil / Instituto Nacional de Ciência e Tecnologia em Entomologia Molecular. Rio de Janeiro, RJ, Brasil.Universidade Federal do Rio de Janeiro. Instituto de Bioquímica Médica Leopoldo De Meis. Programa de Biologia Molecular e Biotecnologia. Laboratório de Sinalização Celular. Rio de Janeiro, RJ, Brasil / Instituto Nacional de Ciência e Tecnologia em Entomologia Molecular. Rio de Janeiro, RJ, Brasil.Universidade Federal do Rio de Janeiro. Instituto de Bioquímica Médica Leopoldo De Meis. Programa de Biologia Molecular e Biotecnologia. Laboratório de Sinalização Celular. Rio de Janeiro, RJ, Brasil / Instituto Nacional de Ciência e Tecnologia em Entomologia Molecular. Rio de Janeiro, RJ, Brasil.Instituto Nacional de Ciência e Tecnologia em Entomologia Molecular. Rio de Janeiro, RJ, Brasil / Universidade Federal do Rio de Janeiro. Instituto de Bioquímica Médica Leopoldo De Meis. Programa de Biologia Molecular e Biotecnologia. Laboratório de Bioquímica de Lipídios e Lipoproteínas. Rio de Janeiro, RJ, Brasil.Universidade Federal do Rio de Janeiro. Instituto de Bioquímica Médica Leopoldo De Meis. Programa de Biologia Molecular e Biotecnologia. Laboratório de Sinalização Celular. Rio de Janeiro, RJ, Brasil / Instituto Nacional de Ciência e Tecnologia em Entomologia Molecular. Rio de Janeiro, RJ, Brasil.Universidade Federal do Rio de Janeiro. Instituto de Bioquímica Médica Leopoldo De Meis. Programa de Biologia Molecular e Biotecnologia. Laboratório de Sinalização Celular. Rio de Janeiro, RJ, Brasil / Instituto Nacional de Ciência e Tecnologia em Entomologia Molecular. Rio de Janeiro, RJ, Brasil.Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Laboratório de Biologia Celular. Rio de Janeiro, RJ. Brasil.Universidade Federal do Rio de Janeiro. Instituto de Bioquímica Médica Leopoldo De Meis. Programa de Biologia Molecular e Biotecnologia. Laboratório de Bioquímica de Artrópodes Hematófagos. Rio de Janeiro, RJ, Brasil / Instituto Nacional de Ciência e Tecnologia em Entomologia Molecular. Rio de Janeiro, RJ, Brasil.Instituto Federal de Educacão, Ciência e Tecnologia Fluminense. Laboratório de Biologia. Campos dos Goytacazes, RJ, Brasil.Universidade Estadual do Norte Fluminense. Laboratório de Biotecnologia. Campos dos Goytacazes, RJ, Brasil.Universidade Federal do Rio de Janeiro. Centro de Ciências da Saúde. Instituto de Bioquímica Médica Leopoldo De Meis. Rio de Janeiro, RJ, Brasil.Instituto Nacional de Ciência e Tecnologia em Entomologia Molecular. Rio de Janeiro, RJ, Brasil / Universidade Federal do Rio de Janeiro. Instituto de Bioquímica Médica Leopoldo De Meis. Programa de Biologia Molecular e Biotecnologia. Laboratório de Bioquímica de Artrópodes Hematófagos. Rio de Janeiro, RJ, Brasil.Simon Fraser University. Department of Biological Sciences. Burnaby, British Columbia, Canada.Instituto Nacional de Ciência e Tecnologia em Entomologia Molecular. Rio de Janeiro, RJ, Brasil / Universidade Federal do Rio de Janeiro. Faculdade de Farmácia. Departamento de Biotecnologia Farmacêutica. Rio de Janeiro, RJ, Brasil.Universidade Federal do Rio de Janeiro. Instituto de Bioquímica Médica Leopoldo De Meis. Programa de Biologia Molecular e Biotecnologia. Laboratório de Sinalização Celular. Rio de Janeiro, RJ, Brasil / Instituto Nacional de Ciência e Tecnologia em Entomologia Molecular. Rio de Janeiro, RJ, Brasil.Instituto Nacional de Ciência e Tecnologia em Entomologia Molecular. Rio de Janeiro, RJ, Brasil / Universidade Federal do Rio de Janeiro. Instituto de Química. Departamento de Bioqúímica. Laboratório de Bioinformática. Rio de Janeiro, RJ, Brasil.Instituto Nacional de Ciência e Tecnologia em Entomologia Molecular. Rio de Janeiro, RJ, Brasil / Universidade Federal do Rio de Janeiro. Instituto de Bioquímica Médica Leopoldo De Meis. Programa de Biologia Molecular e Biotecnologia. Laboratório de Bioquímica de Lipídios e Lipoproteínas. Rio de Janeiro, RJ, Brasil.Universidade Federal do Rio de Janeiro. Instituto de Bioquímica Médica Leopoldo De Meis. Programa de Biologia Molecular e Biotecnologia. Laboratório de Sinalização Celular. Rio de Janeiro, RJ, Brasil / Universidade Federal do Rio de Janeiro. Instituto de Bioquímica Médica Leopoldo De Meis. Programa de Biologia Molecular e Biotecnologia. Laboratório de Bioquímica de Lipídios e Lipoproteínas. Rio de Janeiro, RJ, Brasil.Mosquitoes feed on plant-derived fluids such as nectar and sap and are exposed to bioactive molecules found in this dietary source. However, the role of such molecules on mosquito vectorial capacity is unknown. Weather has been recognized as a major determinant of the spread of dengue, and plants under abiotic stress increase their production of polyphenols

Polyphenols increase mosquito lifespan while still allowing dengue virus infection.

<p>(<b>A-D</b>) Effect of polyphenols on male (<b>A, C</b>) and female (<b>B, D</b>) lifespan. The 50% mean lifespan is indicated by the horizontal dotted line. (<b>E</b>) Dengue virus RNA from mosquitoes fed or not before infection with Rv. (<b>F</b>) Percentage of dengue-infected mosquitoes. Ctrl—Control, Epi—100 μM epi-gallo-catechin-gallate; Gen—100 μM genistein; Que—100 μM quercetin. (Error bars,s.e.m., n = 3 experiments with 200 mosquitoes in each cage, p<0.05 in each survivor curve compared with control as calculated by Mantel-Cox and Gehan-Breslow-Wilcoxon test).</p

Rv triggers autophagy in mosquito midgut.

<p><b>(A, B</b>) Typical ultrastructural appearance of mosquito midgut fed on a control diet. (<b>C-F</b>) Midguts from insects fed on Rv. White stars indicate the formation of concentric membrane structures. Black arrows indicate preserved mitochondrial morphology and normal cristae aspects. N: nucleus; M: mitochondria; Mi: microvilli. Bars in panels A and C: 2 μm. Bars in panels B, D-F: 0.5 μm. (<b>G</b>) Midgut images obtained under a fluorescence microscope after incubation with LysoTracker Red (upper panels, DIC) (lower panels, fluorescence). (<b>H</b>) Densitometry of LysoTracker fluorescence images shown in panel G. (<b>I)</b> Images obtained as in panel G following the silencing of mosquito AMPK (DsAMPK) or an unrelated protein (DsMal). Insects were kept on the indicated Control (Ctrl), Rv or AICAR diets. <b>(J</b>) Densitometry of LysoTracker fluorescence images shown in the lower part of panels I. Rv—100 μM Rv; AICAR—1 mM AICAR. **—p<0.01; ****—p<0.0001 as calculated by one-way ANOVA with Tukey post test (I) and by Student’s t-test (J). Data in panels I, J represent means and s. e. m. (n = 3).</p

Dietary polyphenols decrease lipid accumulation in mosquitoes through AMPK activation.

<p>(<b>A</b>) Densitometric analysis of triacylglycerol content measured by TLC. (<b>B</b>) Densitometric analysis of western blots for midgut p-AMPK. (<b>C</b>) Densitometric analysis of western blots for fat body p-AMPK. (<b>D</b>) Densitometric analysis of triacylglycerol levels as measured by TLC in mosquitoes fed as indicated. Actin was used as loading control in panels B and C. (HepG2) HepG2 cells are a positive control for pAMPK antibody. Insets show representative images of either TLCs or blots. Ctrl—control; Rv—100 μM Rv; Epi—100 μM epi-gallo-catechin-gallate; Gen—100 μM genistein; Que—100 μM quercetin; CC—100 μM Compound C; CC+Rv—100 μM Compound C and 100 μM Rv; AICAR—1 mM AICAR. *—p<0.05; **—p<0.01, as calculated by one-way ANOVA with Tukey post test. (Error bars, s.e.m., n = 3 experiments).</p

Summary data of the effects of polyphenols on mosquito lifespan.

<p>Summary data of the effects of polyphenols on mosquito lifespan.</p

Rv treatment downregulates apoptotic pathway.

<p>Adult mosquitoes were reared until six days old under each dietary condition. The midguts of female mosquitoes were dissected and homogenized in TRIzol, and total RNA was extracted. These samples were used to perform qPCR for the genes: (<b>A</b>) 16S, (<b>B</b>) ARGONAUTE 2, (<b>C</b>) CASPASE 16, (<b>D</b>) AeDRONC, (<b>E</b>) AeIAP1 and (<b>F</b>) ATG8. Data show means and standard error of at least three independent experiments. Ctrl—0.05% ethanol plus 10% sucrose; Rv—100 μM Rv in 0.05% ethanol plus 10% sucrose; AbMix– 10% sucrose, 10 U/mL penicillin, 10 U/mL streptomycin and 15 U/mL gentamicin. *—p<0.05; **—p<0.01; ***—p<0.001; ****—p<0.0001, as calculated by Student’s t-test (F as calculated by one-way ANOVA with Tukey post test). (Error bars, s.e.m., n = 3 experiments).</p