Estudio de la Prevalencia y Análisis de Resistencia Antimicrobiana de Microorganismos Aislados e identificados en el Laboratorio Clínico del Centro Oncológico Estatal del ISSEMYM durante el periodo de enero del 2010 a diciembre del 2012

Las infecciones constituyen hoy en día, una de las principales causas de morbilidad y mortalidad a nivel mundial, aunado esto a la poca susceptibilidad de los microorganismos a los antimicrobianos, se incrementa considerablemente el riesgo de mortalidad en los pacientes que presentan enfermedades como el cáncer y/o enfermedades debilitantes que cursan con inmunodeficiencia. Uno de los grandes retos que enfrenta el clínico en el diagnostico y tratamiento oportuno de enfermedades infecciosas, es la aparición y diseminación de bacterias capaces de resistir el efecto de los antimicrobiano a los cuales, estos agentes eran previamente susceptibles, dificultando con ello su erradicación y disminuyendo las opciones de antimicrobianos en la prescripción del tratamiento correspondiente. Por este motivo se realizo un estudio retrospectivo en los archivos del Área de Bacteriología en el Laboratorio Clínico del Centro Oncológico Estatal del ISSEMYM, del periodo Enero de 2010 a Diciembre de 2012. Teniendo como objetivo principal determinar la prevalencia y su susceptibilidad a los antimicrobianos en los microorganismos aislados e identificados en los cultivos de las muestras obtenidas de los pacientes en las diferentes áreas de servicio de esta institución. En este periodo se realizaron un total de 4 652 cultivos, provenientes de pacientes de las áreas de Atención Medica Continua, Consulta Externa, Hospitalización y Unidad de Cuidados Intensivos, de los cuales se documentaron 1313 cultivos positivos (28.22%). A través de estos resultados, se reconocieron los microorganismos más frecuentemente aislados, los cuales son: Escherichia coli 43.4% (n=571), Staphylococcus epidermidis 11.2% (n=147), Staphylococcus aureus 8.3% (n=109), Candida albicans 4.9% (n=65), Enterococcus faecalis 4.8% (n=64) y Pseudomonas aeruginosa 3%(n=40). Igualmente se analizaron los resultados de las pruebas de susceptibilidad antimicrobiana realizados a los aislamientos bacterianos con la finalidad de determinar su nivel de resistencia antimicrobiana, para lo cual, Escherichia coli mostro una elevada resistencia a Ampicilina (86.7%), Ciprofloxacino (86.1%) y Levofloxacino (85.3%), Staphylococcus epidermidis se mostro resistente a Bencilpenicilina (100%), Oxacilina (91.4%), Ciprofloxacino (92.9%), Staphylococcus aureus también mostro resistencia a Bencilpenicilina (92.4%) y Oxacilina (58.8%), Candida albicans no mostro resistencia ante Fluconazol, Anfotericina B, Flucitocina y Variconazol (los cuatro antimicóticos estudiados), Enterococcus faecalis mostro una resistencia elevada a Eritromicina (71.4%), Quinupristina/Dalfopristina (92.5%), Tetraciclina (81.3%), cabe resaltar que solo se encontraron 2 cepas resistentes a Vancomicina, en el caso de Pseudomonas aeruginosa no se identificaron porcentajes altos de resistencia para los antibióticos de elección para su tratamiento, no así para los antibióticos que en la literatura ya se ha comprobado su resistencia como Ampicilina, Ampicilina/A. Clavulanico, Cefalotina, Cefuroxima, Ceftriaxona, Nitrofurantoina, Tigeciclina, Tetraciclina y Trimetoprim/Sulfametoxazol

Producción de ácido giberélico a partir de Gibberella fujikuroi utilizando lodo residual municipal como sustrato

Production of gibberellic acid from Gibberella fujikuroi using municipal sewage sludge as a substrate. Objective. To use municipalsewage sludge (LRM) from a wastewater treatment plant located in Toluca, State of Mexico, to grow the fungus Gibberella fujikuroi insubmerged fermentation and to produce gibberellic acid (AG3). Materials and methods. We used Gibberella fujikuroi (CDBB: 268). Toobtain AG3, production was verified using as a substrate the standard culture medium (MCE). Gibberellic acid determination was done withhigh performance liquid chromatography (HPLC) with a Varian 9050.9012 equipment. We obtained 6 samples of sludge from a wastewatertreatment plant in Toluca, State of Mexico, that were then characterized. Finally, both substrates (LRM and MCE) were used in submergedfermentation, and GA3 was obtained by extraction and quantified using HPLC. Results. The LRM characterization showed that the organicmatter content (MO) is of 5.20% (w/v) and the total nitrogen content (NT) is of 0.25% (w/v). Such composition is within the range as asubstrate for the production of AG3 by Gibberella fujikuroi. The fungus was cultivated for 3, 8, 13 and 30 days in sterile sewage sludge witha moisture content of 95.6% (w/v) and in standard culture medium (MCE). Samples were processed and analyzed by high performanceliquid chromatography (HPLC). Production of AG3 in the LRM was of 460.06 mg/L after 30 days in submerged fermentation at pH 4.0,and of 1,014.46 mg/L in the control. Conclusion. The nutrient content of LRM is suitable for the growth of the fungus Gibberella fujikuroiand for the production of GA3 when used as a substrate

Synthesis and in vitro biological evaluation of 1,3-bis-(1,2,3-triazol-1-yl)-propan-2-ol derivatives as antifungal compounds fluconazole analogues

A novel series of 1,3-bis-(1,2,3-triazol-1-yl)-propan-2-ol derivatives was synthesized from 1-aryl-1,3-diazidopropan-2-ol derivatives and diverse alkynes using copper catalyzed azide-alkyne cycloaddition in the key step. Most of synthesized compounds showed high activity against Candida spp. strains at a 0.04–0.5 μg/mL concentration range compared to Itraconazole and Fluconazole (MIC 2.56 and 1.28 μg/mL, respectively), which were used as reference compounds. A 1,3- bis-(1,2,3-triazol-1-yl)-propan-2-ol derivative (R1 = F and R2 = cyclopropyl) displayed an outstanding selectivity against Candida albicans and Candida krusei (MIC = 0.0075 μg/mL). Moreover, Artemia salina bioassay on 1,3-bis-(1,2,3-triazol- 1-yl)-propan-2-ol derivatives revealed low toxicity in this kind of compounds. In addition, molecular docking studies suggest good binding affinity of halogen atoms in some 1-aryl-1,3-diazidopropan-2-ol derivatives to HEME group present in 14-alpha demethylase (CYP51), which might explain the high antifungal activity found in these compounds.This work was supported by COMECYT (fellowship for AZH) and ASCILA (fellowship for DDCC). Financial support from CONACYT is also gratefully acknowledged. The authors would like to thank Signa S.A. de C. V. for some kindly donated solvents and reagents and to N. Zavala, A. Nuñez, and L. Triana for the technical support