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VIP contribution to the decidualization program: regulatory T cell recruitment
During early pregnancy, the human uterus undergoes profound tissue remodeling characterized by leukocyte invasion and production of proinflammatory cytokines, followed by tissue repair and tolerance maintenance induction. Vasoactive intestinal peptide (VIP) is produced by trophoblast cells and modulates the maternal immune response toward a tolerogenic profile. Here, we evaluated the contribution of the VIP/VPAC to endometrial renewal, inducing decidualization and the recruitment of induced regulatory T cells (iTregs) that accompany the implantation period. For that purpose, we used an in vitro model of decidualization with a human endometrial stromal cell line (HESC) stimulated with progesterone (P4) and lipopolysaccharide (LPS) simulating the inflammatory response during implantation and human iTregs (CD4+CD25+FOXP3+) differentiated from naïve T cells obtained from peripheral blood mononuclear cells of fertile women. We observed that VIP and its receptor VPAC1 are constitutively expressed in HESCs and that P4 increased VIP expression. Moreover, in HESC VIP induced expression of RANTES (CCL5), one of the main chemokines involved in T cell recruitment, and this effect is enhanced by the presence of P4 and LPS. Finally, assays of the migration of iTregs toward conditioned media from HESCs revealed that endogenous VIP production induced by P4 and LPS and RANTES production were involved, as anti-RANTES neutralizing Ab or VIP antagonist prevented their migration. We conclude that VIP may have an active role in the decidualization process, thus contributing to recruitment of iTregs toward endometrial stromal cells by increasing RANTES expression in a P4-dependent manner.Fil: Grasso, Esteban Nicolas. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Ciudad Universitaria. Instituto de Química Biológica de la Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Instituto de Química Biológica de la Facultad de Ciencias Exactas y Naturales; ArgentinaFil: Paparini, Daniel Esteban. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Ciudad Universitaria. Instituto de Química Biológica de la Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Instituto de Química Biológica de la Facultad de Ciencias Exactas y Naturales; ArgentinaFil: Agüero, Mariana. Universidad de Buenos Aires; ArgentinaFil: Mor, Gil. University of Yale; Estados UnidosFil: Perez Leiros, Claudia. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Ciudad Universitaria. Instituto de Química Biológica de la Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Instituto de Química Biológica de la Facultad de Ciencias Exactas y Naturales; ArgentinaFil: Ramhorst, Rosanna Elizabeth. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Ciudad Universitaria. Instituto de Química Biológica de la Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Instituto de Química Biológica de la Facultad de Ciencias Exactas y Naturales; Argentin
VIP treatment prevents embryo resorption by modulating efferocytosis and activation profile of maternal macrophages in the CBAxDBA resorption prone model
Successful embryo implantation occurs followed by a local pro-inflammatory response subsequently shifted toward a tolerogenic one. VIP (vasoactive intestinal peptide) has embryotrofic, anti-inflammatory and tolerogenic effects. In this sense, we investigated whether the in vivo treatment with VIP contributes to an immunosuppressant local microenvironment associated with an improved pregnancy outcome in the CBA/J × DBA/2 resorption prone model. Pregnancy induced the expression of VIP, VPAC1 and VPAC2 in the uterus from CBA/J × DBA/2 mating females on day 8.5 of gestation compared with non-pregnant mice. VIP treatment (2 nmol/mouse i.p.) on day 6.5 significantly increased the number of viable implantation sites and improved the asymmetric distribution of implanted embryos. This effect was accompanied by a decrease in RORγt and an increase in TGF-β and PPARγ expression at the implantation sites. Moreover, VIP modulated the maternal peritoneal macrophages efferocytosis ability, tested using latex beads-FITC or apoptotic thymocytes, displaying an increased frequency of IL-10-producer F4/80 cells while did not modulate TNF-α and IL-12 secretion. The present data suggest that VIP treatment increases the number of viable embryos associated with an increase in the efferocytic ability of maternal macrophages which is related to an immunosuppressant microenvironment.Fil: Gallino, Lucila. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Ciudad Universitaria. Instituto de Química Biológica de la Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Instituto de Química Biológica de la Facultad de Ciencias Exactas y Naturales; ArgentinaFil: Calo, Guillermina. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Ciudad Universitaria. Instituto de Química Biológica de la Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Instituto de Química Biológica de la Facultad de Ciencias Exactas y Naturales; ArgentinaFil: Hauk, Vanesa Cintia. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Ciudad Universitaria. Instituto de Química Biológica de la Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Instituto de Química Biológica de la Facultad de Ciencias Exactas y Naturales; ArgentinaFil: Fraccaroli, Laura Virginia. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Ciudad Universitaria. Instituto de Química Biológica de la Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Instituto de Química Biológica de la Facultad de Ciencias Exactas y Naturales; ArgentinaFil: Grasso, Esteban Nicolas. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Ciudad Universitaria. Instituto de Química Biológica de la Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Instituto de Química Biológica de la Facultad de Ciencias Exactas y Naturales; ArgentinaFil: Vermeulen, Elba Monica. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Instituto de Medicina Experimental. Academia Nacional de Medicina de Buenos Aires. Instituto de Medicina Experimental; ArgentinaFil: Perez Leiros, Claudia. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Ciudad Universitaria. Instituto de Química Biológica de la Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Instituto de Química Biológica de la Facultad de Ciencias Exactas y Naturales; ArgentinaFil: Ramhorst, Rosanna Elizabeth. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Ciudad Universitaria. Instituto de Química Biológica de la Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Instituto de Química Biológica de la Facultad de Ciencias Exactas y Naturales; Argentin
Differential migration and activation profile of monocytes after trophoblast interaction
Macrophages at the maternal-placental interface coordinate opposite demands under the control of trophoblast cells such as the response against pathogens on one hand, and apoptotic cell clearance and wound healing with the production of suppressor cytokines. Here, we investigated whether trophoblast cells induce maternal monocyte activation towards an alternative activated macrophage profile and whether bacterial or viral stimuli modulate their migratory properties. We used an in vitro model of the maternal-placental interface represented by co-cultures of CD14+ cells isolated from fertile women with first trimester trophoblast cell line (Swan-71 cells) in the presence or absence of pathogen associated molecular pattern (PAMP) stimuli lipopolysaccharide (LPS), peptidoglycan (PGN) or poly [I:C]). Maternal CD14+ cells showed increased CD16 and CD39 expression, both markers associated to an alternative activation profile, with no changes in CD80 expression after trophoblast cell interaction. These changes were accompanied by increased IL-10 and decreased IL-12 production by CD14+ cells. After stimulation with LPS, PGN or poly [I:C], monocytes co-cultured with trophoblast cells had lower production of TNF-α and IL-1β compared with non co-cultured monocytes. Interestingly, monocyte migration towards trophoblast cells was prevented in the presence of LPS or PGN but not after 24h of stimulation with poly [I:C]. LPS or PGN also decreased CCR5, CXCL-8 and CCL5 expression. Finally, trophoblast cells co-cultured with monocytes in the presence of pathological stimuli failed to increase chemokine expression, indicating a bidirectional effect. In conclusion, trophoblast might 'instruct' maternal monocytes to express an alternative activation profile and restrain their early recruitment under pathological threats as one of the first strategies to avoid potential tissue damage at the maternal-placental interface.Fil: Grasso, Esteban Nicolas. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Ciudad Universitaria. Instituto de Química Biológica de la Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Instituto de Química Biológica de la Facultad de Ciencias Exactas y Naturales; ArgentinaFil: Paparini, Daniel Esteban. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Ciudad Universitaria. Instituto de Química Biológica de la Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Instituto de Química Biológica de la Facultad de Ciencias Exactas y Naturales; ArgentinaFil: Hauk, Vanesa Cintia. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Ciudad Universitaria. Instituto de Química Biológica de la Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Instituto de Química Biológica de la Facultad de Ciencias Exactas y Naturales; ArgentinaFil: Salamone, Gabriela Veronica. Academia Nacional de Medicina de Buenos Aires. Instituto de Invest. Hematológicas "mariano R. Castex". Departamento de Inmunología y Medicina Experimental. Div.de Inmunología; Argentina. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Instituto de Medicina Experimental. Academia Nacional de Medicina de Buenos Aires. Instituto de Medicina Experimental; ArgentinaFil: Perez Leiros, Claudia. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Ciudad Universitaria. Instituto de Química Biológica de la Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Instituto de Química Biológica de la Facultad de Ciencias Exactas y Naturales; ArgentinaFil: Ramhorst, Rosanna Elizabeth. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Ciudad Universitaria. Instituto de Química Biológica de la Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Instituto de Química Biológica de la Facultad de Ciencias Exactas y Naturales; Argentin
Neuroimmune aspects of Sjögren's syndrome: Role of VIP/VPAC system in immune and salivary gland epithelial cell function
Sjögren's syndrome (SS) is a chronic inflammatory disease characterized by salivary and lacrimal gland dysfunction although extraglandular manifestations are also found. Suitable study models and in vitro cell culture designs are used to approach SS pathogenic mechanisms. Cellular and molecular pathways involved in gland homeostasis loss and the autoimmune response are focused in the search of novel drug targets and biomarkers. Vasoactive intestinal peptide (VIP) has trophic, pro-secretory and immunomodulatory effects in several chronic and autoimmune disease models. Here we review evidence pointing to its role as an endogenous modulator of gland homeostasis at early stages of the disease. Particularly, mechanisms involving VIP/VPAC system in the course of salivary function impairment in the non obese diabetic (NOD) mouse model of Sjögren's syndrome are described.Fil: Hauk, Vanesa Cintia. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Ciudad Universitaria. Instituto de Química Biológica de la Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Instituto de Química Biológica de la Facultad de Ciencias Exactas y Naturales; ArgentinaFil: Calafat, Mario Jose. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Ciudad Universitaria. Instituto de Química Biológica de la Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Instituto de Química Biológica de la Facultad de Ciencias Exactas y Naturales; ArgentinaFil: Grasso, Esteban Nicolas. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Ciudad Universitaria. Instituto de Química Biológica de la Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Instituto de Química Biológica de la Facultad de Ciencias Exactas y Naturales; ArgentinaFil: Fraccaroli, Laura Virginia. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Ciudad Universitaria. Instituto de Química Biológica de la Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Instituto de Química Biológica de la Facultad de Ciencias Exactas y Naturales; ArgentinaFil: Paparini, Daniel Esteban. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Ciudad Universitaria. Instituto de Química Biológica de la Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Instituto de Química Biológica de la Facultad de Ciencias Exactas y Naturales; ArgentinaFil: Ramhorst, Rosanna Elizabeth. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Ciudad Universitaria. Instituto de Química Biológica de la Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Instituto de Química Biológica de la Facultad de Ciencias Exactas y Naturales; ArgentinaFil: Perez Leiros, Claudia. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Ciudad Universitaria. Instituto de Química Biológica de la Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Instituto de Química Biológica de la Facultad de Ciencias Exactas y Naturales; Argentin
Acetylcholine contributes to control the physiological inflammatory response during the peri-implantation period
Maternal antigen-presenting cells attracted to the pregnant uterus interact with trophoblast cells and modulate their functional profile to favour immunosuppressant responses. Non-neuronal cholinergic system is expressed in human cytotrophoblast cells and in immune cells with homeostatic regulatory functions. The aim of this work was to evaluate whether non-neuronal acetylcholine conditions maternal monocyte and DC migration and activation profiles.Fil: Paparini, Daniel Esteban. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Ciudad Universitaria. Instituto de Química Biológica de la Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Instituto de Química Biológica de la Facultad de Ciencias Exactas y Naturales; ArgentinaFil: Gori, María Soledad. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Instituto de Medicina Experimental. Academia Nacional de Medicina de Buenos Aires. Instituto de Medicina Experimental; ArgentinaFil: Grasso, Esteban Nicolas. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Ciudad Universitaria. Instituto de Química Biológica de la Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Instituto de Química Biológica de la Facultad de Ciencias Exactas y Naturales; ArgentinaFil: Scordo, W.. Hospital Italiano; ArgentinaFil: Calo, G.. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Ciudad Universitaria. Instituto de Química Biológica de la Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Instituto de Química Biológica de la Facultad de Ciencias Exactas y Naturales; ArgentinaFil: Perez Leiros, Claudia. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Ciudad Universitaria. Instituto de Química Biológica de la Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Instituto de Química Biológica de la Facultad de Ciencias Exactas y Naturales; ArgentinaFil: Ramhorst, Rosanna Elizabeth. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Ciudad Universitaria. Instituto de Química Biológica de la Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Instituto de Química Biológica de la Facultad de Ciencias Exactas y Naturales; ArgentinaFil: Salamone, Gabriela Veronica. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Instituto de Medicina Experimental. Academia Nacional de Medicina de Buenos Aires. Instituto de Medicina Experimental; Argentin
VIP induces the decidualization program and conditions the immunoregulation of the implantation process
The decidualization process involves phenotype and functional changes on endometrial cells and the modulation of mediators with immunoregulatory properties as the vasoactive intestinal peptide (VIP). We investigate VIP contribution to the decidualization program and to immunoregulation throughout the human embryo implantation process. The decidualization of Human endometrial stromal cell line (HESC) with Medroxyprogesterone-dibutyryl-cAMP increased VIP/VPAC-receptors system. In fact, VIP could induce decidualization increasing differentiation markers (IGFBP1, PRL, KLF13/KLF9 ratio, CXCL12, CXCL8 and CCL2) and allowing Blastocyst-like spheroids (BLS) invasion in an in vitro model of embryo implantation. Focus on the tolerogenic effects, decidualized cells induced a semi-mature profile on maternal dendritic cells; restrained CD4+ cells recruitment while increased regulatory T-cells recruitment. Interestingly, the human blastocyst conditioned media from developmentally impaired embryos diminished the invasion and T-regulatory cells recruitment in these settings. These evidences suggest that VIP contributes to the implantation process inducing decidualization, allowing BLS invasion and favoring a tolerogenic micro-environment.Fil: Grasso, Esteban Nicolas. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Ciudad Universitaria. Instituto de Química Biológica de la Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Instituto de Química Biológica de la Facultad de Ciencias Exactas y Naturales; ArgentinaFil: Gori, María Soledad. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Instituto de Medicina Experimental. Academia Nacional de Medicina de Buenos Aires. Instituto de Medicina Experimental; ArgentinaFil: Paparini, Daniel Esteban. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Ciudad Universitaria. Instituto de Química Biológica de la Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Instituto de Química Biológica de la Facultad de Ciencias Exactas y Naturales; ArgentinaFil: Soczewski, Elizabeth Victoria. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Ciudad Universitaria. Instituto de Química Biológica de la Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Instituto de Química Biológica de la Facultad de Ciencias Exactas y Naturales; ArgentinaFil: Fernández, Laura del Carmen. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Ciudad Universitaria. Instituto de Química Biológica de la Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Instituto de Química Biológica de la Facultad de Ciencias Exactas y Naturales; ArgentinaFil: Gallino, Lucila. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Ciudad Universitaria. Instituto de Química Biológica de la Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Instituto de Química Biológica de la Facultad de Ciencias Exactas y Naturales; ArgentinaFil: Salamone, Gabriela Veronica. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Instituto de Medicina Experimental. Academia Nacional de Medicina de Buenos Aires. Instituto de Medicina Experimental; ArgentinaFil: Martinez, Gustavo. Instituto de Fertilidad; ArgentinaFil: Irigoyen, Marcela. Instituto de Fertilidad; ArgentinaFil: Ruhlmann, Claudio. Instituto de Fertilidad; ArgentinaFil: Perez Leiros, Claudia. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Ciudad Universitaria. Instituto de Química Biológica de la Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Instituto de Química Biológica de la Facultad de Ciencias Exactas y Naturales; ArgentinaFil: Ramhorst, Rosanna Elizabeth. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Ciudad Universitaria. Instituto de Química Biológica de la Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Instituto de Química Biológica de la Facultad de Ciencias Exactas y Naturales; Argentin
Impacto de la infección por SARS-CoV-2 en el embarazo
La nueva enfermedad llamada COVID-19 (por coronavirus disease 2019) fue detectada por primera vez en diciembre de 2019 en Wuhan, China, y se esparció con rapidez hacia prácticamente todo el mundo. El virus causante, SARS-CoV-2, da lugar a diversas manifestaciones clínicas que pueden ir desde muy leves, e incluso con presentación asintomática, hasta formas muy graves que pueden conducir a la muerte, en especial en los grupos con comorbilidades. Algunos de los síntomas más frecuentes son fiebre, mialgias, tos seca y cansancio. Las formas graves se caracterizan por insuficiencia respiratoria severa, neumonía, shock séptico o disfunción multiorgánica. Históricamente, las embarazadas han sido afectadas de forma más severa frente a las infecciones respiratorias en comparación con las mujeres de grupos etarios similares no embarazadas. Hasta la fecha, se ha observado que las embarazadas son más propensas a padecer las formas más graves de la enfermedad y se describieron diversas complicaciones en el embarazo de pacientes con COVID-19. Aún existe escasa información acerca del impacto de la enfermedad durante la gestación. En este trabajo, se examinan diversos aspectos del embarazo afectado por el nuevo coronavirus y se resume la información acerca de las infecciones por SARS-CoV-2 en la placenta y la transmisión vertical. También se aborda la generación de anticuerpos maternos y la posible protección del bebé por transferencia maternofetal e inmunización pasiva mediante la lactancia. Es crucial continuar investigando cómo la COVID-19 durante el embarazo altera los riesgos de resultados adversos maternos y neonatales para poder tomar las medidas más adecuadas.The 2019 novel coronavirus disease (COVID-19) was first detected in December 2019 and became epidemic in Wuhan, China. COVID-19 has rapidly spread out in China and all over the world. COVID-19, caused by the new virus SARS-CoV-2, presents a broad spectrum of clinical manifestations, from an asymptomatic disease to life threatening forms, especially in people that have different risk factors. Some of the most common symptoms are fever, muscle pain, dry cough and fatigue, whereas the severe presentation of COVID-19 can present acute respiratory failure, pneumonia, septic shock and/or multiorganic failure. Historically, pregnant women have been more severely affected by respiratory diseases in comparison with non-pregnant women of the same age. Up to this date, pregnant individuals are more likely to develop severe COVID-19 and a number of pregnancy complications have been observed in COVID-19 patients. To date, little is known about the impact of COVID-19 on pregnancy. In this review, we examine key aspects of pregnancy that are affected by COVID-19 and summarize the current literature on SARS-CoV-2 infection of the placenta and vertical transmission. Furthermore, we highlight recent studies exploring antibodies generation by natural infections or vaccination and the possible protection of the baby by materno-fetal transference and passive transfer through lactation. It’s essential to keep researching the possible effects of COVID-19 on maternal and fetal outcomes in order to take appropriate measures to ensure maternal and fetal health.Fil: Calo, Guillermina. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Departamento de Química Biológica. Laboratorio de Inmunofarmacología; Argentina. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Ciudad Universitaria. Instituto de Química Biológica de la Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Instituto de Química Biológica de la Facultad de Ciencias Exactas y Naturales; ArgentinaFil: Gori, María Soledad. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Departamento de Química Biológica. Laboratorio de Inmunofarmacología; Argentina. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Ciudad Universitaria. Instituto de Química Biológica de la Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Instituto de Química Biológica de la Facultad de Ciencias Exactas y Naturales; ArgentinaFil: Schafir, Ana Laura. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Departamento de Química Biológica. Laboratorio de Inmunofarmacología; ArgentinaFil: Castagnola, Lara. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Departamento de Química Biológica. Laboratorio de Inmunofarmacología; Argentina. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Ciudad Universitaria. Instituto de Química Biológica de la Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Instituto de Química Biológica de la Facultad de Ciencias Exactas y Naturales; ArgentinaFil: Grasso, Esteban Nicolas. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Departamento de Química Biológica. Laboratorio de Inmunofarmacología; Argentina. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Ciudad Universitaria. Instituto de Química Biológica de la Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Instituto de Química Biológica de la Facultad de Ciencias Exactas y Naturales; Argentin
Decidual factors and vasoactive intestinal peptide guide monocytes to higher migration, efferocytosis and wound healing in term human pregnancy
Aim: To explore the functional profile of circulating monocytes and decidual macrophages at term human pregnancy and their contribution to tissue repair upon stimulation ex vivo with decidual factors and the vasoactive intestinal peptide (VIP). Methods: Peripheral blood monocytes were isolated from pregnant and non-pregnant volunteers and tested in vitro with decidual explants from term placenta and VIP. The effect of VIP on decidual explants and the effect of its conditioned media on monocytes or decidual macrophages isolated by magnetic beads was carried out by RT-qPCR and ELISA for cytokines expression and release. Migration assays were performed in transwell systems. Efferocytosis was assessed in monocytes or decidual macrophages with CFSE-labelled autologous apoptotic neutrophils and quantified by flow cytometry. Monocyte and decidual macrophages wound healing capacity was evaluated using human endometrial stromal cell monolayers. Immunohistochemistry was performed in serial tissue sections of different placentas. Results: VIP is expressed in the villi as well as in trophoblast giant cells distributed within the decidua of term placenta. VIP induced the expression of antiinflmammatory markers and monocyte chemoattractant CCL2 and CCL3 in decidual tissues. Monocytes presented higher migration towards decidual explants than CD4 and CD8 cells. VIP-conditioned monocytes displayed an enhanced efferocytosis and wound healing capacity comparable to that of decidual macrophages. Moreover limited efferocytosis of pregnant women monocytes was restored by VIP-induced decidual factors. Conclusion: Results show the conditioning of monocytes by decidual factors and VIP to sustain processes required for tissue repair and homeostasis maintenance in term placenta.Fil: Paparini, Daniel Esteban. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Ciudad Universitaria. Instituto de Química Biológica de la Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Instituto de Química Biológica de la Facultad de Ciencias Exactas y Naturales; ArgentinaFil: Grasso, Esteban Nicolas. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Ciudad Universitaria. Instituto de Química Biológica de la Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Instituto de Química Biológica de la Facultad de Ciencias Exactas y Naturales; ArgentinaFil: Fernández, Laura del Carmen. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Ciudad Universitaria. Instituto de Química Biológica de la Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Instituto de Química Biológica de la Facultad de Ciencias Exactas y Naturales; ArgentinaFil: Merech, Fátima Isabel. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Ciudad Universitaria. Instituto de Química Biológica de la Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Instituto de Química Biológica de la Facultad de Ciencias Exactas y Naturales; ArgentinaFil: Weingrill Barbano, Rodrigo. Universidade do Sao Paulo. Instituto de Ciencias Biomedicas; BrasilFil: Correa Silva, Simone. Universidade do Sao Paulo. Instituto de Ciencias Biomedicas; BrasilFil: Izbizky, Gustavo Hernán. Hospital Italiano; ArgentinaFil: Abasolo, José I.. Hospital Italiano; ArgentinaFil: Hauk, Vanesa Cintia. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Ciudad Universitaria. Instituto de Química Biológica de la Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Instituto de Química Biológica de la Facultad de Ciencias Exactas y Naturales; ArgentinaFil: Ramhorst, Rosanna Elizabeth. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Ciudad Universitaria. Instituto de Química Biológica de la Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Instituto de Química Biológica de la Facultad de Ciencias Exactas y Naturales; ArgentinaFil: Bevilaqcua, Estela. Universidade do Sao Paulo. Instituto de Ciencias Biomedicas; BrasilFil: Perez Leiros, Claudia. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Ciudad Universitaria. Instituto de Química Biológica de la Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Instituto de Química Biológica de la Facultad de Ciencias Exactas y Naturales; Argentin
Human Chorionic Gonadotropin modulates CXCL10 Expression through Histone Methylation in human decidua
The process of implantation, trophoblast invasion and placentation demand continuous adaptation and modifications between the trophoblast (embryonic) and the decidua (maternal). Within the decidua, the maternal immune system undergoes continued changes, as the pregnancy progress, in terms of the cell population, phenotype and production of immune factors, cytokines and chemokines. Human chorionic gonadotropin (hCG) is one of the earliest hormones produced by the blastocyst and has potent immune modulatory effects, especially in relation to T cells. We hypothesized that trophoblast-derived hCG modulates the immune population present at the maternal fetal interface by modifying the cytokine profile produced by the stromal/decidual cells. Using in vitro models from decidual samples we demonstrate that hCG inhibits CXCL10 expression by inducing H3K27me3 histone methylation, which binds to Region 4 of the CXCL10 promoter, thereby suppressing its expression. hCG-induced histone methylation is mediated through EZH2, a functional member of the PRC2 complex. Regulation of CXCL10 expression has a major impact on the capacity of endometrial stromal cells to recruit CD8 cells. We demonstrate the existence of a cross talk between the placenta (hCG) and the decidua (CXCL10) in the control of immune cell recruitment. Alterations in this immune regulatory function, such as during infection, will have detrimental effects on the success of the pregnancy.Peer reviewe
RUNX1 and FOXP3 interplay regulates expression of breast cancer related genes
Runx1 participation in epithelial mammary cells is still under review. Emerging data indicates that Runx1 could be relevant for breast tumor promotion. However, to date no studies have specifically evaluated the functional contribution of Runx1 to control gene expression in mammary epithelial tumor cells. It has been described that Runx1 activity is defined by protein context interaction. Interestingly, Foxp3 is a breast tumor suppressor gene. Here we show that endogenous Runx1 and Foxp3 physically interact in normal mammary cells and this interaction blocks Runx1 transcriptional activity. Furthermore we demonstrate that Runx1 is able to bind to R-spondin 3 (RSPO3) and Gap Junction protein Alpha 1 (GJA1) promoters. This binding upregulates Rspo3 oncogene expression and downregulates GJA1 tumor suppressor gene expression in a Foxp3-dependent manner. Moreover, reduced Runx1 transcriptional activity decreases tumor cell migration properties. Collectively, these data provide evidence of a new mechanism for breast tumor gene expression regulation, in which Runx1 and Foxp3 physically interact to control mammary epithelial cell gene expression fate. Our work suggests for the first time that Runx1 could be involved in breast tumor progression depending on Foxp3 availability
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