15 research outputs found
Distribution of the members of Anopheles gambiae and pyrethroid knock-down resistance gene (kdr) in Guinea-Bissau, West Africa
Une étude entomologique a été réalisée en 2002 dans quatre localités couvrant différents faciès écologiques de la Guinée Bissau : Buba Tombao (forêt), Gabu (savane), Cacheu (mangrove) et Bissau (urbain) afin i) d'étudier la distribution des membres du complexe Anopheles gambiae (Diptera: Culicidae) ii) d'évaluer le statut de résistance de ces vecteurs du paludisme aux insecticides (perméthrine 0.75%, DDT 4%) et enfin iii) de rechercher la présence et la distribution de la mutation kdr au sein de ces populations. Les femelles de moustiques adultes issues de captures matinales à l'intérieur des maisons ont été testées suivant les procédures OMS (kit de bio essai et papier imprégné) afin d'évaluer leur statut de résistance aux insecticides. Les spécimens testés ont été identifiés et caractérisés pour la présence de la mutation kdr par PCR. En Guinée Bissau, dans les localités étudiées, le complexe An. gambiae est dominé par An. gambiae s.s. (avec les deux formes moléculaires S et M représentées) vivant en sympatrie sur le littoral avec une faible proportion d'An. melas. Les populations d'An. gambiae s.s. exposées aux deux insecticides se sont révélées sensibles quelle que soit leur provenance. La mutation kdr Leu-Phe a été détectée en de très faibles fréquences seulement dans deux localités situées respectivement en zone urbaine (Bissau) et en savane (Gabu). Cette mutation est présente uniquement dans la forme moléculaire S à Gabu (avec une fréquence allélique de 0.14) et dans les deux formes moléculaires M et S à Bissau avec des fréquences alléliques respectives de 0.06 et de 0.02. Ces résultats suggèrent que les populations d'An. gambiae s.s., vecteur le plus fréquent du paludisme en Guinée Bissau, demeurent encore sensibles aux pyréthrinoides et au DDT 4%. Ce statut de sensibilité ainsi que la fréquence des gènes de résistance tel que le kdr doivent être surveillés dans le futur particulièrement dans les zones urbaine et de savane soumises à une utilisation intensive d'insecticides. (Résumé d'auteur
Indirect effects of the bacterial soil aggregation on the distribution of Pasteuria penetrans, an obligate bacterial parasite of plant-parasitic nematodes
Host-parasite soil communities and environmental constraints : modelling of soil functions involved in interactions between plant-parasitic nematodes and Pasteuria penetrans
Influence of irrigation on the distribution and control of the nematode Meloidogyne javanica by the biocontrol bacterium Pasteuria penetrans in the field
Congrès Mondial de la Science du Sol : Actes = World Congress of Soil Science : Proceedings
Combining two-dimensional gel electrophoresis and metabolomic data in support of dry-season survival in the two main species of the malarial mosquito Anopheles gambiae
In dry savannahs of West-Africa, the malarial mosquitoes of the Anopheles gambiae sensu stricto complex annually survive the harsh desiccating conditions of the dry season. However, the physiological and biochemical mechanisms underlying how these mosquitoes survive such desiccating conditions are still undefined, and controversial. In this context, we provide the first work examining both proteomic and metabolomic changes in the two molecular forms of A. gambiae s.s (M and S forms) experimentally exposed to the rainy and dry season conditions as they experience in the field. Protein abundances of the mosquitoes were measured using a two-dimensional fluorescence difference gel electrophoresis (2D DIGE) coupled with a matrix-assisted laser desorption/ionisation-time of flight (MALDI-TOF) and tandem mass spectrometry (MS) for protein identification. These assays were conducted by Applied Biomics (http://www.appliedbiomics.com, Applied Biomics, Inc. Hayward, CA, USA), and the mass spectrometry proteomics data have been deposited to the ProteomeXchange Consortium (http://proteomecentral.proteomexchange.org) via the PRIDE partner repository with the dataset identifier PXD000294. The metabolomic analysis was conducted using both Acquity UPLC() system (for amino acid identification), and a gas-chromatography-mass spectrometry platform (for sugars identification). Metabolomic fingerprintings were assessed in the University of Rennes 1, UMR CNRS 6553 EcoBio (France). A detailed interpretation of the obtained data can be found in Hidalgo et al. (2014) [1] (Journal of Insect Physiology (2014))
Combining two-dimensional gel electrophoresis and metabolomic data in support of dry-season survival in the two main species of the malarial mosquito Anopheles gambiae
In dry savannahs of West-Africa, the malarial mosquitoes of the Anopheles gambiae sensu stricto complex annually survive the harsh desiccating conditions of the dry season. However, the physiological and biochemical mechanisms underlying how these mosquitoes survive such desiccating conditions are still undefined, and controversial. In this context, we provide the first work examining both proteomic and metabolomic changes in the two molecular forms of A. gambiae s.s (M and S forms) experimentally exposed to the rainy and dry season conditions as they experience in the field. Protein abundances of the mosquitoes were measured using a two-dimensional fluorescence difference gel electrophoresis (2D DIGE) coupled with a matrix-assisted laser desorption/ionisation-time of flight (MALDI-TOF) and tandem mass spectrometry (MS) for protein identification. These assays were conducted by Applied Biomics (http://www.appliedbiomics.com, Applied Biomics, Inc. Hayward, CA, USA), and the mass spectrometry proteomics data have been deposited to the ProteomeXchange Consortium (http://proteomecentral.proteomexchange.org) via the PRIDE partner repository with the dataset identifier PXD000294. The metabolomic analysis was conducted using both Acquity UPLC® system (for amino acid identification), and a gas-chromatography-mass spectrometry platform (for sugars identification). Metabolomic fingerprintings were assessed in the University of Rennes 1, UMR CNRS 6553 EcoBio (France). A detailed interpretation of the obtained data can be found in Hidalgo et al. (2014) [1] (Journal of Insect Physiology (2014))