State of the art of nuclear transfer technologies for assisting mammalian reproduction

The transfer of nuclear genomic DNA from a cell to a previously enucleated oocyte or zygote constitutes one of the main tools for studying epigenetic reprogramming, nucleus–cytoplasm compatibility, pluripotency state, and for genetic preservation or edition in animals. More than 50 years ago, the first experiences in nuclear transfer began to reveal that factors stored in the cytoplasm of oocytes could reprogram the nucleus of another cell and support the development of an embryo with new genetic information. Furthermore, when the nuclear donor cell is an oocyte, egg, or a zygote, the implementation of these technologies acquires clinical relevance for patients with repeated failures in ART associated with poor oocyte quality or mitochondrial dysfunctions. This review describes the current state, scope, and future perspectives of nuclear transfer techniques currently available for assisting mammal reproduction.Fil: Gambini, Andres. Universidad de Buenos Aires; Argentina. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas; Argentina. University of Queensland; AustraliaFil: Briski, Olinda. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas; Argentina. Universidad de Buenos Aires; ArgentinaFil: Canel, Natalia Gabriela. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Medicina. Hospital de Clínicas General San Martín; Argentina. Universidad de Buenos Aires; Argentina. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas; Argentin

Horse ooplasm supports in vitro preimplantation development of zebra ICSI and SCNT embryos without compromising YAP1 and SOX2 expression pattern

Several equids have gone extinct and many extant equids are currently considered vulnerable to critically endangered. This work aimed to evaluate whether domestic horse oocytes support preimplantation development of zebra embryos obtained by intracytoplasmic sperm injection (ICSI, zebroid) and cloning, and to study the Hippo signaling pathway during the lineage specification of trophectoderm cells and inner cell mass cells. We first showed that zebra and horse sperm cells induce porcine oocyte activation and recruit maternal SMARCA4 during pronuclear formation. SMARCA4 recruitment showed to be independent of the genetic background of the injected sperm. No differences were found in blastocyst rate of ICSI hybrid (zebra spermatozoon into horse egg) embryos relative to the homospecific horse control group. Interestingly, zebra cloned blastocyst rate was significantly higher at day 8. Moreover, most ICSI and cloned horse and zebra blastocysts showed a similar expression pattern of SOX2 and nuclear YAP1 with the majority of the nuclei positive for YAP1, and most SOX2+ nuclei negative for YAP1. Here we demonstrated that horse oocytes support zebra preimplantation development of both, ICSI and cloned embryos, without compromising development to blastocyst, blastocyst cell number neither the expression of SOX2 and YAP1. Our results support the use of domestic horse oocytes as a model to study in vitro zebra embryos on behalf of preservation of valuable genetic.Fil: Gambini, Andres. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas; Argentina. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Agronomía; ArgentinaFil: Duque Rodriguez, Matteo. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas; Argentina. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Agronomia. Departamento de Producción Animal. Cátedra de Fisiología Animal; ArgentinaFil: Rodriguez, Maria Belén. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas; Argentina. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Agronomia. Departamento de Producción Animal. Cátedra de Fisiología Animal; ArgentinaFil: Briski, Olinda. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas; Argentina. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Agronomia. Departamento de Producción Animal. Cátedra de Fisiología Animal; ArgentinaFil: Flores Bragulat, Ana Paula. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas; Argentina. Universidad Nacional de Río Cuarto. Facultad de Agronomía y Veterinaria; ArgentinaFil: Demergassi, Natalia. Fundación Temaikén; ArgentinaFil: Losinno, Luis. Universidad Nacional de Río Cuarto. Facultad de Agronomía y Veterinaria; ArgentinaFil: Salamone, Daniel Felipe. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas; Argentina. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Agronomia. Departamento de Producción Animal. Cátedra de Fisiología Animal; Argentin

Assessing Tn5 and sleeping beauty for transpositional transgenesis by cytoplasmic injection into bovine and ovine zygotes

Transgenic domestic animals represent an alternative to bioreactors for large-scale production of biopharmaceuticals and could also provide more accurate biomedical models than rodents. However, their generation remains inefficient. Recently, DNA transposons allowed improved transgenesis efficiencies in mice and pigs. In this work, Tn5 and Sleeping Beauty (SB) transposon systems were evaluated for transgenesis by simple cytoplasmic injection in livestock zygotes. In the case of Tn5, the transposome complex of transposon nucleic acid and Tn5 protein was injected. In the case of SB, the supercoiled plasmids encoding a transposon and the SB transposase were co-injected. In vitro produced bovine zygotes were used to establish the cytoplasmic injection conditions. The in vitro cultured blastocysts were evaluated for reporter gene expression and genotyped. Subsequently, both transposon systems were injected in seasonally available ovine zygotes, employing transposons carrying the recombinant human factor IX driven by the beta-lactoglobulin promoter. The Tn5 approach did not result in transgenic lambs. In contrast, the Sleeping Beauty injection resulted in 2 lambs (29%) carrying the transgene. Both animals exhibited cellular mosaicism of the transgene. The extraembryonic tissues (placenta or umbilical cord) of three additional animals were also transgenic. These results show that transpositional transgenesis by cytoplasmic injection of SB transposon components can be applied for the production of transgenic lambs of pharmaceutical interest.Instituto de BiotecnologíaFil: Bevacqua, Romina Jimena. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Agronomía. Pabellón de Zootecnica. Laboratorio de Biotecnología Animal; Argentina. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas; ArgentinaFil: Fernández y Martín, Rafael. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Agronomía. Pabellón de Zootecnica. Laboratorio de Biotecnología Animal; Argentina. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas; ArgentinaFil: Canel, Natalia Gabriela. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Agronomía. Pabellón de Zootecnica. Laboratorio de Biotecnología Animal; Argentina. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Parque Centenario; ArgentinaFil: Gibbons, Alejandro Eduardo. Instituto Nacional de Tecnología Agropecuaria (INTA). Estación Experimental Agropecuaria Bariloche; ArgentinaFil: Texeira, D.I.A. Universidade Estadual do Ceará. Faculdade de Veterinária; BrasilFil: Lange, F. Universidad Maimónides. Laboratorio de Clonación y Transgenesis; ArgentinaFil: Vans Landschoot, Geraldina. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Agronomía. Pabellón de Zootecnica. Laboratorio de Biotecnología Animal; Argentina. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas; Argentina. Fil: Lange, F. Universidad Maimónides. Laboratorio de Clonación y Transgenesis; ArgentinaFil: Savy, Virginia. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Agronomía. Pabellón de Zootecnica. Laboratorio de Biotecnología Animal; Argentina. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas; ArgentinaFil: Briski, Olinda. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Agronomía. Pabellón de Zootecnica. Laboratorio de Biotecnología Animal; Argentina. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas; ArgentinaFil: Hiriart, María Inés. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Agronomía. Pabellón de Zootecnica. Laboratorio de Biotecnología Animal; Argentina. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas; ArgentinaFil: Grueso, Esther. Paul-Ehrlich-Institute; AlemaniaFil: Ivics, Zoltán. Paul-Ehrlich-Institute; AlemaniaFil: Taboga, Oscar Alberto. Instituto Nacional de Tecnología Agropecuaria (INTA). Instituto de Biotecnología; Argentina.Fil: Kues, Wilfried A. Friedrich-Loeffler-Institut; AlemaniaFil: Ferraris, S.R. Universidad Maimónides. Laboratorio de Clonación y Transgenesis; ArgentinaFil: Salamone, Daniel Felipe. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Agronomía. Pabellón de Zootecnica. Laboratorio de Biotecnología Animal; Argentina. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas; Argentin

Preimplantation Developmental Competence of Bovine and Porcine Oocytes Activated by Zinc Chelation

After sperm-oocyte fusion, intracytoplasmic rises of calcium (Ca) induce the release of zinc (Zn) out of the oocyte (Zn sparks). Both phenomena are known to play an essential role in the oocyte activation process. Our work aimed to explore different protocols for activating bovine and porcine oocytes using the novel zinc chelator 1,10-phenanthroline (PHEN) and to compare developmental rates and quality to bovine IVF and parthenogenetic ionomycin-induced embryos in both species. Different incubation conditions for the zinc chelator were tested, including its combination with ionomycin. Embryo quality was assessed by immunofluorescence of SOX2, SOX17, OCT4, and CDX2 and total cell number at the blastocyst stage. Even though blastocyst development was achieved using a zinc chelator in bovine, bypassing calcium oscillations, developmental rates, and blastocyst quality were compromised compared to embryos generated with sperm-induced or ionomycin calcium rise. On the contrary, zinc chelation is sufficient to trigger oocyte activation in porcine. Additionally, we determined the optimal exposure to PHEN for this species. Zinc chelation and artificial induction of calcium rise combined did not improve developmental competence. Our results contribute to understanding the role of zinc during oocyte activation and preimplantation embryo development across different mammalian species

Practical Approaches for Knock-Out Gene Editing in Pigs

Pigs are an important resource for meat production and serve as a model for human diseases. Due to their physiological and anatomical similarities to humans, these animals can recapitulate symptoms of human diseases, becoming an effective model for biomedical research. Although, in the past pig have not been widely used partially because of the difficulty in genetic modification; nowadays, with the new revolutionary technology of programmable nucleases, and fundamentally of the CRISPR-Cas9 systems, it is possible for the first time to precisely modify the porcine genome as never before. To this purpose, it is necessary to introduce the system into early stage zygotes or to edit cells followed by somatic cell nuclear transfer. In this review, several strategies for pig knock-out gene editing, using the CRISPR-Cas9 system, will be summarized, as well as genotyping methods and different delivery techniques to introduce these tools into the embryos. Finally, the best approaches to produce homogeneous, biallelic edited animals will be discussed.Fil: Ratner, Laura Daniela. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Parque Centenario. Unidad Ejecutora de Investigaciones en Producción Animal. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Ciencias Veterinarias. Unidad Ejecutora de Investigaciones en Producción Animal; ArgentinaFil: la Motta, Gastón Emilio. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Parque Centenario. Unidad Ejecutora de Investigaciones en Producción Animal. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Ciencias Veterinarias. Unidad Ejecutora de Investigaciones en Producción Animal; ArgentinaFil: Briski, Olinda. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Parque Centenario. Unidad Ejecutora de Investigaciones en Producción Animal. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Ciencias Veterinarias. Unidad Ejecutora de Investigaciones en Producción Animal; ArgentinaFil: Salamone, Daniel Felipe. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Parque Centenario. Unidad Ejecutora de Investigaciones en Producción Animal. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Ciencias Veterinarias. Unidad Ejecutora de Investigaciones en Producción Animal; ArgentinaFil: Fernández y Martín, Rafael. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Parque Centenario. Unidad Ejecutora de Investigaciones en Producción Animal. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Ciencias Veterinarias. Unidad Ejecutora de Investigaciones en Producción Animal; Argentin

Time of first polar body extrusion affects the developmental competence of equine oocytes after intracytoplasmic sperm injection

Assisted reproduction techniques (ARTs) have become widespread in the equine breeding industry. In particular, the combination of oocyte recovery from live mares followed by IVM and intracytoplasmic sperm injection (ICSI) has increased markedly among the ARTs used with valuable or low-fertility animals. There is currently no consensus among research groups regarding the optimal oocyte maturation period to produce high-quality embryos. In this study, we report the maturation dynamics of equine oocytes at different time points, from 20 to 40 h (Experiment 1). In addition, in Experiment 2, equine ICSI blastocysts were produced from oocytes that exhibited early (up to 24 h) or late (28-30 h) extrusion of the first polar body (PB). Blastocyst rates and diameter were recorded and embryo quality was assessed by analysing the number of apoptotic cells and Yes-associated protein 1 (YAP1) expression. By 20 h of IVM, 42% of oocytes were mature, and the remaining oocytes matured within the next 17 h of IVM. Although no differences were found in cell apoptosis or the number of YAP1-positive cells between groups exhibiting early and late PB extrusion, embryos from the early group (Group I) exhibited an improved total cell number and blastocyst rate compared to embryos from the late group (Group II) (18.60% vs 10.17% respectively).Fil: Rodriguez, Maria Belén. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas; Argentina. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Agronomía. Pabellón de Zootecnica. Laboratorio de Biotecnología Animal; ArgentinaFil: Gambini, Andres. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas; Argentina. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Agronomía. Pabellón de Zootecnica. Laboratorio de Biotecnología Animal; ArgentinaFil: Clérico, Gabriel José. Pontificia Universidad Católica Argentina "Santa María de los Buenos Aires"; Argentina. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas; ArgentinaFil: Ynsaurralde Rivolta, Amada Eugenia. Instituto Nacional de Tecnología Agropecuaria; ArgentinaFil: Briski, Olinda. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Agronomía. Pabellón de Zootecnica. Laboratorio de Biotecnología Animal; Argentina. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas; ArgentinaFil: Largel, Hernan. No especifíca;Fil: Sansinena, Marina Julia. Pontificia Universidad Católica Argentina "Santa María de los Buenos Aires"; Argentina. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas; ArgentinaFil: Salamone, Daniel Felipe. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Agronomía. Pabellón de Zootecnica. Laboratorio de Biotecnología Animal; Argentina. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas; Argentin

DMSO supplementation during in vitro maturation of bovine oocytes improves blastocyst rate and quality

The molecule Dimethyl sulfoxide is widely used as drug solvent. However, its antioxidant property was poorly explored. In this study, we evaluated the effect of DMSO supplementation during oocyte in vitro maturation (IVM) on embryo development and quality. Bovine oocytes were matured with different DMSO concentrations (0, 0.1, 0.25, 0.5, 0.75, 1 and 10% v:v) followed by in vitro fertilization. Subsequently, quality indicators such as gene expression of SOX2, OCT4, CDX2, SOD1, oocyte and embryo redox status and DNA damage were evaluated. Polar body extrusion and blastocyst rates increased with 0.5% v:v DMSO. Moreover, first polar body extrusion and blastocyst rates did not increase with 1%, and 10% of DMSO reduced polar body extrusion and did not produce blastocyst. Optimal concentration of DMSO for the use on the maturation was estimated at around 0.45% v:v. Supplementation with 0.5% v:v DMSO has not affected mRNA abundance of genes key in blastocyst, however 0.75% increased gene expression of OCT4 and SOX2. Oocytes matured with 0.5% v:v DMSO and blastocyst from DMSO group showed reduced lipid peroxidation respect control. Total Glutathione concentrations increased in blastocyst stage in DMSO group. DMSO increased the total cell number of blastocysts but not TUNEL positive cells. In conclusion, our results suggest that low DMSO concentrations used during bovine oocytes in vitro maturation increases the maturation, as well as the blastocyst rate and its quality, without demonstrating deleterious effect on embryo cells.EEA MercedesFil: Ynsaurralde Rivolta, Amada Eugenia. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Agronomía; Argentina. Instituto Nacional de Tecnología Agropecuaria (INTA). Estación Experimental Agropecuaria Mercedes; Argentina. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas; ArgentinaFil: Suvá, Mariana. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Agronomía; Argentina. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas; ArgentinaFil: Luchetti, Carolina Griselda. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Ciencias Veterinarias. Instituto de Investigación y Tecnología en Reproducción Animal (INITRA). Cátedra de Histología y Embriología, Argentina. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas; ArgentinaFil: Bevacqua, Romina Jimena. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Agronomía. Pabellón de Zootecnica. Laboratorio de Biotecnología Animal; Argentina. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas; ArgentinaFil: Munilla, Sebastian. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas; Argentina. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Agronomía. Departamento de Producción Animal; ArgentinaFil: Rodriguez-Alvarez, Lleretny. Universidad de Concepción. Facultad de Ciencias Veterinarias; ChileFil: Velasquez, Alejandra. Universidad de Concepción. Facultad de Ciencias Veterinarias; ChileFil: Briski, Olinda. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Agronomía. Pabellón de Zootecnica. Laboratorio de Biotecnología Animal; Argentina. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas; ArgentinaFil: Lombardo, Daniel. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Ciencias Veterinarias. Instituto de Investigación y Tecnología en Reproducción Animal (INITRA). Cátedra de Histología y Embriología, Argentina.Fil: Salamone, Daniel Felipe. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Agronomía. Pabellón de Zootecnica. Laboratorio de Biotecnología Animal; Argentina. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas; Argentin

Aggregation of Leopardus geoffroyi hybrid embryos with domestic cat tetraploid blastomeres

Heterospecific embryo transfer of an endangered species has been carried out using recipients from related domestic females. Aggregation of an embryo from an endangered species with a tetraploid embryo from the species to be transferred could improve the development of pregnancy to term. The main objective of the present study was to analyze embryo aggregation in domestic cat model using hybrid embryos. For this purpose, we compared in vitro development of synchronic (Sync) or asynchronic (Async) and asynchronic with a tetraploid (Async4n) aggregation of domestic cat IVF embryos. Furthermore, aggregated blastocyst quality was analyzed by evaluation of the total cell number, cell allocation by mitotrackers staining of embryonic cells, expression of Oct4, Nanog, Sox2, Cdx2 genes, number of OCT4+ nuclei, and presence of DNA fragmentation. Additionally, the developmental rates of Async4n aggregation of domestic cat with Leopardus geoffroyi hybrid (hLg) embryos were evaluated. Async aggregation increased blastocyst cell number and the number of OCT4+ nuclei as compared to non-aggregated diploid (2n) and tetraploid (4n) embryos. Moreover, blastocysts produced by Async4n aggregation showed reduced rates of fragmented DNA. No differences were found in the expression of the pluripotent genes, with exception of the Cdx2 expression, which was higher in 4n and aggregated embryos as compared to the control group. Interestingly, hybrids embryos derived by Async4n aggregation with domestic cat embryos had similar rates of blastocysts development as the control. Altogether, the findings support the use of two-cell-fused embryos to generate tetraploid blastomeres and demonstrate that Async4n aggregation generates good quality embryos.Fil: Duque Rodriguez, Matteo. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Parque Centenario. Unidad Ejecutora de Investigaciones en Producción Animal. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Ciencias Veterinarias. Unidad Ejecutora de Investigaciones en Producción Animal; Argentina. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Agronomía. Pabellón de Zootecnica. Laboratorio de Biotecnología Animal; Argentina. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Agronomía. Departamento de Producción Animal; ArgentinaFil: Gambini, Andres. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Parque Centenario. Unidad Ejecutora de Investigaciones en Producción Animal. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Ciencias Veterinarias. Unidad Ejecutora de Investigaciones en Producción Animal; Argentina. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Agronomía. Pabellón de Zootecnica. Laboratorio de Biotecnología Animal; Argentina. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Agronomía. Departamento de Producción Animal; ArgentinaFil: Ratner, Laura Daniela. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Parque Centenario. Unidad Ejecutora de Investigaciones en Producción Animal. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Ciencias Veterinarias. Unidad Ejecutora de Investigaciones en Producción Animal; Argentina. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Agronomía. Departamento de Producción Animal; Argentina. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Agronomía. Pabellón de Zootecnica. Laboratorio de Biotecnología Animal; ArgentinaFil: Sestelo, Adrian J.. Gobierno de la Ciudad de Buenos Aires. Secretaría de Ambiente. Ecoparque Interactivo; ArgentinaFil: Briski, Olinda. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Parque Centenario. Unidad Ejecutora de Investigaciones en Producción Animal. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Ciencias Veterinarias. Unidad Ejecutora de Investigaciones en Producción Animal; Argentina. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Agronomía. Departamento de Producción Animal; Argentina. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Agronomía. Pabellón de Zootecnica. Laboratorio de Biotecnología Animal; ArgentinaFil: Gutnisky, Cynthia. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Parque Centenario. Unidad Ejecutora de Investigaciones en Producción Animal. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Ciencias Veterinarias. Unidad Ejecutora de Investigaciones en Producción Animal; Argentina. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Ciencias Veterinarias. Instituto de Investigación y Tecnología en Reproducción Animal; ArgentinaFil: Rulli, Susana Beatriz. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Instituto de Biología y Medicina Experimental. Fundación de Instituto de Biología y Medicina Experimental. Instituto de Biología y Medicina Experimental; ArgentinaFil: Martin Fernández, Rafael. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Parque Centenario. Unidad Ejecutora de Investigaciones en Producción Animal. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Ciencias Veterinarias. Unidad Ejecutora de Investigaciones en Producción Animal; Argentina. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Agronomía. Departamento de Producción Animal; Argentina. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Agronomía. Pabellón de Zootecnica. Laboratorio de Biotecnología Animal; ArgentinaFil: Cetica, Pablo Daniel. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Parque Centenario. Unidad Ejecutora de Investigaciones en Producción Animal. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Ciencias Veterinarias. Unidad Ejecutora de Investigaciones en Producción Animal; Argentina. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Ciencias Veterinarias. Instituto de Investigación y Tecnología en Reproducción Animal; ArgentinaFil: Salamone, Daniel Felipe. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Parque Centenario. Unidad Ejecutora de Investigaciones en Producción Animal. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Ciencias Veterinarias. Unidad Ejecutora de Investigaciones en Producción Animal; Argentina. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Agronomía. Departamento de Producción Animal; Argentina. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Agronomía. Pabellón de Zootecnica. Laboratorio de Biotecnología Animal; Argentin