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PRIMER REGISTRO DE PHYLLOPHAGA (PHYTALUS) RUFOTESTACEA (MOSER, 1918) (COLEOPTERA: SCARABAEOIDEA) PARA MÉXICO Y CHIAPAS
The presence of Phyllophaga (Phytalus) rufotestacea (Moser, 1918) including some data on biology, behavior and hosts, is documented for the first time in Mexico based on material collected from an agricultural plot in San Cristobal de Las Casas, Chiapas
Identification of human intestinal parasites affecting an asymptomatic peri-urban Argentinian population using multi-parallel quantitative real-time polymerase chain reaction
Background: In resource-limited countries, stool microscopy is the diagnostic test of choice for intestinal parasites (soil-transmitted helminths and/or intestinal protozoa). However, sensitivity and specificity is low. Improved diagnosis of intestinal parasites is especially important for accurate measurements of prevalence and intensity of infections in endemic areas. Methods: The study was carried out in Orán, Argentina. A total of 99 stool samples from a local surveillance campaign were analyzed by concentration microscopy and McMaster egg counting technique compared to the analysis by multi-parallel quantitative real-time polymerase chain reaction (qPCR). This study compared the performance of qPCR assay and stool microscopy for 8 common intestinal parasites that infect humans including the helminths Ascaris lumbricoides, Ancylostoma duodenale, Necator americanus, Strongyloides stercoralis, Trichuris trichiura, and the protozoa Giardia lamblia, Cryptosporidium parvum/hominis, and Entamoeba histolytica, and investigated the prevalence of polyparasitism in an endemic area. Results: qPCR showed higher detection rates for all parasites as compared to stool microscopy except T. trichiura. Species-specific primers and probes were able to distinguish between A. duodenale (19.1 %) and N. americanus (36.4 %) infections. There were 48.6 % of subjects co-infected with both hookworms, and a significant increase in hookworm DNA for A. duodenale versus N. americanus (119.6 fg/μL: 0.63 fg/μL, P∈<∈0.001) respectively. qPCR outperformed microscopy by the largest margin in G. lamblia infections (63.6 % versus 8.1 %, P∈<∈0.05). Polyparasitism was detected more often by qPCR compared to microscopy (64.7 % versus 24.2 %, P∈<∈0.05). Conclusions: Multi-parallel qPCR is a quantitative molecular diagnostic method for common intestinal parasites in an endemic area that has improved diagnostic accuracy compared to stool microscopy. This first time use of multi-parallel qPCR in Argentina has demonstrated the high prevalence of intestinal parasites in a peri-urban area. These results will contribute to more accurate epidemiological survey, refined treatment strategies on a public scale, and better health outcomes in endemic settings.Fil: Cimino, Rubén Oscar. Universidad Nacional de Salta; Argentina. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas; ArgentinaFil: Jeun, Rebecca. Baylor College Of Medicine; Estados UnidosFil: Juarez, Marisa. Universidad Nacional de Salta; ArgentinaFil: Cajal, Pamela S.. Universidad Nacional de Salta; ArgentinaFil: Vargas Flores, Paola Andrea. Universidad Nacional de Salta; Argentina. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas; ArgentinaFil: Echazú, Adriana. Universidad Nacional de Salta; Argentina. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas; ArgentinaFil: Bryan, Patricia E.. Baylor College Of Medicine; Estados UnidosFil: Nasser, Julio Rubén. Universidad Nacional de Salta; ArgentinaFil: Krolewiecki, Alejandro Javier. Universidad Nacional de Salta; Argentina. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas; ArgentinaFil: Mejia, Rojelio. Baylor College Of Medicine; Estados Unidos. Universidad Nacional de Salta; Argentin
Políticas públicas para el control de enfermedades transmitidas por vectores en México
Las enfermedades transmitidas por vectores (ETV) persisten como un problema nacional de salud pública. A fin de disminuir su impacto, existen políticas públicas dirigidas al manejo de estas infecciones. Las soluciones propuestas, así como su implementación, se estipulan dentro de documentos como la ley general de salud (LGS) y normas oficiales mexicanas (NOM). Pese a que la ejecución de las políticas públicas ha conducido a resultados favorables en contra de las ETV, existen nuevas pautas internacionales establecidas por la Organización Mundial de la Salud (OMS) que incrementarían la eficacia de las políticas actuales. Objetivo: Contrastar las acciones estipuladas en las políticas públicas mexicanas del 2000 a 2020 para el combate a las ETV contra las directrices internacionales actuales. Conclusiones: La mayoría de las actividades en contra de las ETV recaen dentro del control de vectores, mismo que al ser comparado con las directrices de la OMS exhibe áreas de oportunidad en la escala de aplicación, uso de insecticidas, participación comunitaria, investigación, entre otras. Bajo este escenario, las políticas públicas deben actualizarse para incluir nueva información propuesta por organismos internacionales
RESISTENCIA A INSECTICIDAS EN INSECTOS VECTORES DE ENFERMEDADES CON ÉNFASIS EN MOSQUITOS
Los insecticidas juegan un papel central en el control devectores de enfermedades tales como mosquitos,moscas, pulgas, piojos, chinches, etc. En 1955 la OMSpropuso la erradicación global de una de lasenfermedades más prevalecientes transmitidas porvectores, la malaria, con el uso de rociados residualesintradomiciliares de DDT. Sin embargo la euforia por losinsecticidas terminó pronto y en 1976 la OMS revirtió suconcepto de erradicación a control de la malaria. Loscambios en la política se debieron a la aparición de laresistencia al DDT en un gran número de mosquitos vectores. En 1975 la OMS reportó que unapoblación de 256 millones de personas vivían en áreas donde la resistencia a DDT y/o los BHC(Bifenil Poli Clorinados) mermaron los esfuerzos para el control de la malaria. (Esto no incluyó a laregión de Africa, en donde ocurren el 90% de los casos de Malaria y donde ya se había registradoresistencia de Anopheles gambiae al DDT, el principal vector de malaria
CRYPTOMEIGENIA SP. (DIPTERA: TACHINIDAE) COMO PARASITOIDE DE ADULTOS DE PHYLLOPHAGA (PHYTALUS) RUFOTESTACEA (MOSER, 1918) (COLEOPTERA: MELOLONTHIDAE) EN CHIAPAS, MÉXICO
A description is made of the biology and activity of Cryptomeigenia sp. (Diptera: Tachinidae), an endoparasitoid of Phyllophaga rufotestacea (Moser, 1918) (Coleoptera: Melolonthidae) adults. Phyllophaga rufotestacea specimens were collected from May to October in 2002 and from June to September in 2003 in agricultural and forested plots in southern San Cristobal de Las Casas, Chiapas, Mexico. The collections were performed three nights a week, between 1900 and 2130 h. Of the 1385 adult specimens collected in 2002, 564 were female and 821 male; 26.9% of the males were parasitized. Of the 1023 specimens collected in 2003, 25.17% of males and 15.58% of females were parasitized. In 2003, parasitism by Cryptomeigenia sp. was shown to occur throughout the flying period of P. rufotestacea (June 9 to September 8), although the percentage of infected individuals varied during this period (from cero to 38.7%). Laboratory study showed that Cryptomeigenia sp. has four development stages: egg, larva, pupa and adult. Under laboratory conditions the first stages occur in P. rufotestacea beetles over a period of 29-32 days. Cryptomeigenia sp. oviposits anywhere between one and 45 eggs in a male or female beetle’s abdominal cavity, where the eggs develop and eclose. A number of larvae hatch though only one survives. This larva becomes the sole survivor by eating the other, smaller larvae and the host’s organs, which causes host death. This parasite is specific to P. rufotestacea adults. Over 12 Melolonthidae species are found at the same site and do not parasitize this potential host.Se describe la biología de Cryptomeigenia sp. (Diptera: Tachinidae) y su actividad como endoparasitoide de adultos de Phyllophaga rufotestacea (Moser, 1918) (Coleoptera: Melolonthidae). Los escarabajos se recolectaron durante los meses de mayo a octubre de 2002, y de junio a septiembre de 2003, en parcelas agrícolas y arbolado en el sur de San Cristóbal de Las Casas, Chiapas, tres noches de cada semana, de 7 a 9:30 p.m. De 1385 escarabajos adultos recolectados en 2002, 564 fueron hembras y 821 machos, de estos últimos el 26.9% estuvo parasitado. En la recolecta de 2003 se encontró el 25.17% de machos parasitados y el 15.58% de las hembras. En 2003 se comprobó que el parasitismo está presente en todo el periodo de vuelo de P. rufotestacea (del 9-junio al 8-septiembre), variando en ese tiempo el porcentaje de organismos afectados (de cero a 38.7%). Las tres primeras fases del ciclo biológico de Cryptomeigenia sp. tienen una duración de entre 29-32 días, bajo condiciones de laboratorio. El díptero oviposita de 1-45 huevos en la cavidad abdominal de los escarabajos, machos y hembras. Sin embargo, solo una larva sobrevive, alimentándose de las demás, que generalmente son más pequeñas, y de las vísceras del escarabajo, provocándole la muerte. Es un endoparasitoide específico de P. rufotestacea en estado adulto, ya que en el mismo sitio se encuentran 15 especies de Melolonthidae sin que las parasite
PATRÓN DE DISTRIBUCIÓN ESPACIAL Y FLUCTUACIÓN POBLACIONAL DE EUTETRANYCHUS BANKSI (MCGREGOR) (ACARI: TETRANYCHIDAE) Y SU DEPREDADOR EUSEIUS MESEMBRINUS (DEAN) (ACARI: PHYTOSEIIDAE)
With the purpose of determining the type of spatial distribution; populational fluctuation and the possible association spatial and temporal between Texas citrus mite Eutetranychus banksi (McGregor) and his natural predator Euseius mesembrinus (Dean) in Güemez; Tamaulipas 24 samplings were taken during one year; since October 7 ;2000 to September 22; 2001; Eutetranychus banksi presented an aggregated distribution pattern during most of the sampling dates; while E; mesembrinus presented a random distribution pattern; Two population peaks were seen; the first on November 25; 2000 (3;53 and 0;131 ind;/ leaf to E; banksi and E; mesembrinus; respectively and the second on April 7; 2001 (12;22 ind;/leaf of E; banksi and 0;411 ind;/ leaf of E; mesembrinus; We found a significative and positive correlation between E; banksi and E; mesembrinus; (r= 0;982; d;f;= 20 and p= 0;05);Se determinó la distribución espacial; fluctuación poblacional y la posible sincronización espacio temporal entre la araña texana Eutetranychus banksi (McGregor) y su depredador natural Euseius mesembrinus (Dean) en Güemez; Tamaulipas; Se realizaron 24 muestreos; Del 7 de octubre del año 2000 al 22 de septiembre de 2001; Eutetranychus banksi presentó una distribución agregada en la mayoría de las fechas de muestreo; mientras que Euseius mesembrinus presentó una distribución aleatoria; Se presentaron dos picos poblacionales sincrónicos en ambas especies; uno el día 25 de noviembre con una densidad promedio de (3;53 y 0;131 ind;/hoja; para E; banksi y E; mesembrinus; respectivamente) y otro el día 7 de abril de 2001 (12;22 ind;/hoja para E; banksi y 0;411 ind;/hoja para E; mesembrinus); Así como un coeficiente de correlación entre la abundancia de E; banksi y la de E; mesembrinus de (r= 0;982; g;l;= 20 y P= 0;05)
Descripción de los estados inmaduros de Ligyrus nasutus (Burmeister, 1847) (Coleoptera: Melolonthidae: Dynastinae) con información sobre su biología.
The third instar larva of Ligyrus nasutus Burmeister is described based on five specimens collected from agricultural fields, where cattle fed with stubble from the previous cycle, and pastures with cattle in Villa Flores, Chiapas, Mexico. The pupa of L. nasutus is also described using specimens obtained from rearing in captivity. Drawings of the diagnostic structures, biological data and a key to the known larvae of the species of Ligyrus are included.Se describe la larva de tercer estadio de Ligyrus nasutus (Burmeister) con base en cinco ejemplares procedentes de parcelas agrícolas en Villa Flores, Chiapas, México. También se describe la pupa de L. nasutus con base en ejemplares obtenidos durante el desarrollo de las larvas en cautiverio. Se incluyen ilustraciones de los caracteres diagnósticos, datos sobre su biología y una clave para separar las larvas conocidas del género
Descripción de la larva de phyllophaga (phytalus) rufotestacea (moser) (coleoptera: melolonthidae) en Chiapas, México
The third-instar larva of Phyllophaga (Phytalus) rufotestacea (Moser, 1918) is described and illustrated, based on specimens reared from eggs laid by captive adults collected in San Cristobal de Las Casas, Chiapas, Mexico. Some data on the life cycle and habits are included.Se describe la larva de tercer estadio de Phyllophaga (Phytalus) rufotestacea (Moser, 1918) con base en ejemplares criados a partir de huevos obtenidos de adultos en cautiverio recolectados en San Cristóbal de Las Casas, Chiapas, México. Se incluyen datos sobre sus hábitos y ciclo de vida. Palabras Clave: Morfología, taxonomía, gallina ciega, edafícolas, saprófagas
Current Status of the Insecticide Resistance in Aedes aegypti (Diptera: Culicidae) from Mexico
The mosquito Aedes aegypti (Diptera: Culicidae) is the primary vector of dengue in Mexico and lately virus Chikungunya, although Aedes albopictus is widely distributed; its role in both diseases’ transmission has not been confirmed. The control of mosquitoes in Mexico includes source reduction consisting in the elimination of containers that are favorable sites for oviposition and development of the aquatic stage. The use of insecticides is to control larvae and adulticides as outdoor ultra-low volume applications and indoor residual spray and more recently impregnated materials. The health department regulates the use of insecticides, and such regulations are revised and adapted over time. Since 1999, the vector control regulations gave preference to the use of pyrethroids, a permethrin-based formulation to control adult forms. This insecticide was used as the only adulticide in Mexico for more than 10 years. The consequences of this actions have evolved in a widespread and strong resistance to other insecticides, mainly pyrethroids. We include in this revision evidence of resistance reported in Ae. aegypti in Mexico
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