4 research outputs found

    Développement d'un systÚme double hybride de mammifÚre pour trouver de nouvelles protéines interagissant avec CIITA

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    Les molĂ©cules du CMH de classe II sont cruciales pour le bon fonctionnement du systĂšme immunitaire. Leur rĂŽle est de prĂ©senter les antigĂšnes provenant de pathogĂšnes aux lymphocytes T auxiliaires CD4+ et de permettre ainsi la rĂ©ponse immunitaire. Leur expression est principalement rĂ©gulĂ©e au niveau transcriptionnel par le transactivateur CIITA (CMHII transactivator). CIITA est un rĂ©gulateur particulier car il possĂšde un domaine d’activation de la transcription, mais ne dispose pas de domaine de liaison Ă  l’ADN. Ainsi, pour activer la transcription, CIITA doit interagir avec plusieurs autres protĂ©ines qui sont fixĂ©es au niveau du promoteur des CMHII. Il possĂšde Ă©galement une rĂ©gion de liaison Ă  la GTP et des domaines rĂ©pĂ©tĂ©s riches en leucines (LRR pour « leucine rich repeats ») en c-terminal connues comme Ă©tant importants pour les interactions protĂ©iques. Pour mieux Ă©tudier l’importance de ces diffĂ©rents domaines pour les fonctions transactivatrices, plusieurs diffĂ©rents mutants de CIITA ont Ă©tĂ© gĂ©nĂ©rĂ©s. De nombreuses Ă©tudes ont aussi tentĂ© d’expliquer la localisation nuclĂ©ocytoplasmique de CIITA et de l’inter relier aux fonctions transactivatrices. MalgrĂ© tout, le mĂ©canisme d’importation au noyau de CIITA ainsi que son mode de transactivation ne sont pas totalement dĂ©mystifiĂ©s. Il est connu que les interactions protĂ©ine-protĂ©ine jouent un rĂŽle important dans les mĂ©canismes cellulaires. CIITA est dĂ©pendant de ce type d’interaction pour activer la transcription des CMHII. Aussi, plusieurs indices suggĂšrent la prĂ©sence de partenaires encore inconnus et par systĂšme double hybride de levure, quelques laboratoires ont tentĂ© de les trouver, mais sans succĂšs. Il est connu que certaines interactions protĂ©iques peuvent passer inaperçues dans ce systĂšme et il est probable que cet Ă©chec est plutĂŽt dĂ» Ă  la technique de criblage plutĂŽt qu’à l’absence de protĂ©ine d’interaction. Dans ce projet, un systĂšme double hybride de mammifĂšre se basant sur celui chez la levure a donc Ă©tĂ© dĂ©veloppĂ© et utilisĂ© pour tenter de trouver les partenaires inconnus de CIITA. Le systĂšme dĂ©veloppĂ© utilise un appĂąt couplĂ© Ă  un domaine de liaison Ă  l’ADN (GAL4DBD pour ‘DNA binding domain’) et une proie couplĂ©e Ă  un domaine d’activation de la transcription (VP16). CIITA sans son domaine d’activation et couplĂ© Ă  Gal4DBD constitue « l’appĂąt ». La « proie » est une banque d’ADN complĂ©mentaire de Raji liĂ©e au domaine VP16. De plus, pour repĂ©rer et tester de nouvelles interactions protĂ©iques avec CIITA, quelques constructions de CIITA manquant certains domaines et couplĂ© Ă  Gal4DBD ont Ă©tĂ© fabriquĂ©es. Ensuite, la cassette d’expression des gĂšnes rapporteurs a Ă©tĂ© intĂ©grĂ©e au gĂ©nome de la lignĂ©e cellulaire RJ 2.2.5 (Lymphome de Burkitt) en utilisant une adaptation du systĂšme Flp-Inℱ d’Invitrogen. Cette nouvelle lignĂ©e a Ă©tĂ© nommĂ©e RjFlp-casset. GrĂące au promoteur synthĂ©tique Gal4 de la cassette d’expression, lorsque l’appĂąt et la proie interagissent, VP16 active la transcription des gĂšnes rapporteurs CD8a’ et blasticidineR. Ensuite, les cellules ont Ă©tĂ© sĂ©lectionnĂ©es par tri cellulaire en utilisant des billes magnĂ©tiques et/ou traitement Ă  la blasticidine ou Ă  la puromycine (gĂšne de rĂ©sistance sur le vecteur proie). Toutes les combinaisons de traitements ont Ă©tĂ© utilisĂ©es. L’ADN Ă©pisomale des cellules oĂč les gĂšnes rapporteurs s’exprimaient a Ă©tĂ© extrait et amplifiĂ© dans E. coli pour ĂȘtre ensuite analysĂ© sur gel d’agarose. Plusieurs rondes de transfection/sĂ©lection/extraction/retransfection ont Ă©tĂ© faites. Malheureusement, aprĂšs plusieurs mois de criblage, aucune nouvelle interaction impliquant CIITA n’a Ă©tĂ© dĂ©couverte. Quelques modifications et perfectionnements de la stratĂ©gie semblent ĂȘtre nĂ©cessaires. Par exemple, dĂ©velopper une lignĂ© cellulaire RjFlp-casset avec en plus l’appĂąt intĂ©grĂ© au gĂ©nome augmenterait les chances de rĂ©ussite par la prĂ©sence constitutive de l’appĂąt.[Symboles non conformes

    Développement d'un systÚme double hybride de mammifÚre pour trouver de nouvelles protéines interagissant avec CIITA

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    Les molĂ©cules du CMH de classe II sont cruciales pour le bon fonctionnement du systĂšme immunitaire. Leur rĂŽle est de prĂ©senter les antigĂšnes provenant de pathogĂšnes aux lymphocytes T auxiliaires CD4+ et de permettre ainsi la rĂ©ponse immunitaire. Leur expression est principalement rĂ©gulĂ©e au niveau transcriptionnel par le transactivateur CIITA (CMHII transactivator). CIITA est un rĂ©gulateur particulier car il possĂšde un domaine d’activation de la transcription, mais ne dispose pas de domaine de liaison Ă  l’ADN. Ainsi, pour activer la transcription, CIITA doit interagir avec plusieurs autres protĂ©ines qui sont fixĂ©es au niveau du promoteur des CMHII. Il possĂšde Ă©galement une rĂ©gion de liaison Ă  la GTP et des domaines rĂ©pĂ©tĂ©s riches en leucines (LRR pour « leucine rich repeats ») en c-terminal connues comme Ă©tant importants pour les interactions protĂ©iques. Pour mieux Ă©tudier l’importance de ces diffĂ©rents domaines pour les fonctions transactivatrices, plusieurs diffĂ©rents mutants de CIITA ont Ă©tĂ© gĂ©nĂ©rĂ©s. De nombreuses Ă©tudes ont aussi tentĂ© d’expliquer la localisation nuclĂ©ocytoplasmique de CIITA et de l’inter relier aux fonctions transactivatrices. MalgrĂ© tout, le mĂ©canisme d’importation au noyau de CIITA ainsi que son mode de transactivation ne sont pas totalement dĂ©mystifiĂ©s. Il est connu que les interactions protĂ©ine-protĂ©ine jouent un rĂŽle important dans les mĂ©canismes cellulaires. CIITA est dĂ©pendant de ce type d’interaction pour activer la transcription des CMHII. Aussi, plusieurs indices suggĂšrent la prĂ©sence de partenaires encore inconnus et par systĂšme double hybride de levure, quelques laboratoires ont tentĂ© de les trouver, mais sans succĂšs. Il est connu que certaines interactions protĂ©iques peuvent passer inaperçues dans ce systĂšme et il est probable que cet Ă©chec est plutĂŽt dĂ» Ă  la technique de criblage plutĂŽt qu’à l’absence de protĂ©ine d’interaction. Dans ce projet, un systĂšme double hybride de mammifĂšre se basant sur celui chez la levure a donc Ă©tĂ© dĂ©veloppĂ© et utilisĂ© pour tenter de trouver les partenaires inconnus de CIITA. Le systĂšme dĂ©veloppĂ© utilise un appĂąt couplĂ© Ă  un domaine de liaison Ă  l’ADN (GAL4DBD pour ‘DNA binding domain’) et une proie couplĂ©e Ă  un domaine d’activation de la transcription (VP16). CIITA sans son domaine d’activation et couplĂ© Ă  Gal4DBD constitue « l’appĂąt ». La « proie » est une banque d’ADN complĂ©mentaire de Raji liĂ©e au domaine VP16. De plus, pour repĂ©rer et tester de nouvelles interactions protĂ©iques avec CIITA, quelques constructions de CIITA manquant certains domaines et couplĂ© Ă  Gal4DBD ont Ă©tĂ© fabriquĂ©es. Ensuite, la cassette d’expression des gĂšnes rapporteurs a Ă©tĂ© intĂ©grĂ©e au gĂ©nome de la lignĂ©e cellulaire RJ 2.2.5 (Lymphome de Burkitt) en utilisant une adaptation du systĂšme Flp-Inℱ d’Invitrogen. Cette nouvelle lignĂ©e a Ă©tĂ© nommĂ©e RjFlp-casset. GrĂące au promoteur synthĂ©tique Gal4 de la cassette d’expression, lorsque l’appĂąt et la proie interagissent, VP16 active la transcription des gĂšnes rapporteurs CD8a’ et blasticidineR. Ensuite, les cellules ont Ă©tĂ© sĂ©lectionnĂ©es par tri cellulaire en utilisant des billes magnĂ©tiques et/ou traitement Ă  la blasticidine ou Ă  la puromycine (gĂšne de rĂ©sistance sur le vecteur proie). Toutes les combinaisons de traitements ont Ă©tĂ© utilisĂ©es. L’ADN Ă©pisomale des cellules oĂč les gĂšnes rapporteurs s’exprimaient a Ă©tĂ© extrait et amplifiĂ© dans E. coli pour ĂȘtre ensuite analysĂ© sur gel d’agarose. Plusieurs rondes de transfection/sĂ©lection/extraction/retransfection ont Ă©tĂ© faites. Malheureusement, aprĂšs plusieurs mois de criblage, aucune nouvelle interaction impliquant CIITA n’a Ă©tĂ© dĂ©couverte. Quelques modifications et perfectionnements de la stratĂ©gie semblent ĂȘtre nĂ©cessaires. Par exemple, dĂ©velopper une lignĂ© cellulaire RjFlp-casset avec en plus l’appĂąt intĂ©grĂ© au gĂ©nome augmenterait les chances de rĂ©ussite par la prĂ©sence constitutive de l’appĂąt.[Symboles non conformes

    Permanent genetic resources added to molecular ecology resources database 1 june 2011–31 july 2011

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    3 pagesInternational audienceThis article documents the addition of 112 microsatellite marker loci and 24 pairs of single nucleotide polymorphism (SNP) sequencing primers to the Molecular Ecology Resources Database. Loci were developed for the following species: Agelaius phoeniceus, Austrolittorina cincta, Circus cyaneus, Circus macrourus, Circus pygargus, Cryptocoryne × purpurea Ridl. nothovar. purpurea, Mya arenaria, Patagioenas squamosa, Prochilodus mariae, Scylla serrata and Scytalopus speluncae. These loci were cross-tested on the following species: Cryptocoryne × purpurea nothovar. purpurea, Cryptocoryne affinis, Cryptocoryne ciliata, Cryptocoryne cordata var. cordata, Cryptocoryne elliptica, Cryptocoryne griffithii, Cryptocoryne minima, Cryptocoryne nurii and Cryptocoryne schulzei. This article also documents the addition of 24 sequencing primer pairs and 24 allele-specific primers or probes for Aphis glycines
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