The membrane-anchoring region of the acmnpv p74 protein is expendable or interchangeable with homologs from other species

Baculoviruses are insect pathogens that are characterized by assembling the viral dsDNA into two different enveloped virions during an infective cycle: occluded virions (ODVs; immersed in a protein matrix known as occlusion body) and budded virions (BVs). ODVs are responsible for the primary infection in midgut cells of susceptible larvae thanks to the per os infectivity factor (PIF) complex, composed of at least nine essential viral proteins. Among them, P74 is a crucial factor whose activity has been identified as virus-specific. In this work, the p74 gene from AcMNPV was pseudogenized using CRISPR/Cas9 technology and then complemented with wild-type alleles from SeMNPV and HearSNPV species, as well as chimeras combining the P74 amino and carboxyl domains. The results on Spodoptera exigua and Rachiplusia nu larvae showed that an amino terminal sector of P74 (lacking two potential transmembrane regions but possessing a putative nuclear export signal) is sufficient to restore the virus infectivity whether alone or fused to the P74 transmembrane regions of the other evaluated viral species. These results provide novel information about the functional role of P74 and delimit the region on which mutagenesis could be applied to enhance viral activity and, thus, produce better biopesticides.Fil: Nugnes, María Victoria. Universidad Nacional de Quilmes. Departamento de Ciencia y Tecnología. Laboratorio de Ingeniería Genética y Biología Molecular y Celular; Argentina. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas; ArgentinaFil: Targovnik, Alexandra Marisa. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Departamento de Microbiología, Inmunología y Biotecnología. Cátedra de Microbiología Industrial y Biotecnología; Argentina. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Houssay. Instituto de Nanobiotecnología. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Instituto de Nanobiotecnología; ArgentinaFil: Mengual Martí, Adrià. Universidad de Valencia; EspañaFil: Miranda, María Victoria. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Departamento de Microbiología, Inmunología y Biotecnología. Cátedra de Microbiología Industrial y Biotecnología; Argentina. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Houssay. Instituto de Nanobiotecnología. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Instituto de Nanobiotecnología; ArgentinaFil: Cerrudo, Carolina Susana. Universidad Nacional de Quilmes. Departamento de Ciencia y Tecnología. Laboratorio de Ingeniería Genética y Biología Molecular y Celular; Argentina. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas; ArgentinaFil: Herrero, Salvador. Universidad de Valencia; EspañaFil: Belaich, Mariano Nicolas. Universidad Nacional de Quilmes. Departamento de Ciencia y Tecnología. Laboratorio de Ingeniería Genética y Biología Molecular y Celular; Argentina. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas; Argentin

Development of an immunoassay for the simultaneous detection of GADA and ZnT8A in autoimmune diabetes using a ZnT8/GAD65 chimeric molecule

IntroductionThe combined presence of autoantibodies to the 65 kDa isoform of glutamic acid decarboxylase (GADA) and to the islet-specific cation efflux transporter ZnT8 (ZnT8A) in serum is the best predictive sign of the loss of immune tolerance and the clinical manifestation of autoimmune diabetes mellitus (DM). The screening of GADA and ZnT8A could help to reach to a correct diagnosis and to start an early and adequate treatment. The aim of the study was to develop an immunoassay for the simultaneous detection of these autoantibodies using a chimera molecule that includes the immunodominant regions of ZnT8 and GAD65, expressed by baculovirus-insect cells system.Materials and MethodsZnT8/GAD65 was expressed using the Bac to Bac™ baculovirus expression system. The recombinant chimera was purified by an His6-tag and identified by SDS-PAGE and western blot analysis, and by an indirect ELISA using specific antibodies against ZnT8 and GAD65. A fraction of ZnT8/GAD65 was biotinylated. A bridge ELISA (b-ELISA) was developed using ZnT8/GAD65 immobilized in polystyrene microplates, human sera samples from healthy individuals (n = 51) and diabetic patients (n = 49) were then incubated, and afterwards ZnT8/GAD65-biotin was added. Immune complexes were revealed with Streptavidin-Horseradish Peroxidase. Results were calculated as specific absorbance and expressed as standard deviation scores: SDs.ResultsZnT8/GAD65 was efficiently produced, yielding 30 mg/L culture medium, 80% pure. This recombinant chimera retains the immunoreactive conformation of the epitopes that are recognized by their specific antibodies, so it was used for the development of a high sensitivity (75.51%) and specificity (98.04%) b-ELISA for the detection of ZnT8A and/or GADA, in a one-step screening assay. The ROC curves demonstrated that this method had high accuracy to distinguish between samples from healthy individuals and diabetic patients (AUC = 0.9488); the cut-off value was stablished at 2 SDs.ConclusionsThis immunoassay is useful either to confirm autoimmune diabetes or for detection in routine screening of individuals at risk of autoimmune DM. As DM is a slow progress disease, remaining asymptomatic for a long preclinical period, serological testing is of importance to establish a preventive treatment

Improved Expression of SARS-CoV-2 Spike RBD Using the Insect Cell-Baculovirus System

Insect cell-baculovirus expression vector system is one of the most established platforms to produce biological products, and it plays a fundamental role in the context of COVID-19 emergency, providing recombinant proteins for treatment, diagnosis, and prevention. SARS-CoV-2 infection is mediated by the interaction of the spike glycoprotein trimer via its receptor-binding domain (RBD) with the host’s cellular receptor. As RBD is required for many applications, in the context of pandemic it is important to meet the challenge of producing a high amount of recombinant RBD (rRBD). For this reason, in the present study, we developed a process based on Sf9 insect cells to improve rRBD yield. rRBD was recovered from the supernatant of infected cells and easily purified by metal ion affinity chromatography, with a yield of 82% and purity higher than 95%. Expressed under a novel chimeric promoter (polh-pSeL), the yield of rRBD after purification was 21.1 ± 3.7 mg/L, which is the highest performance described in Sf9 cell lines. Finally, rRBD was successfully used in an assay to detect specific antibodies in COVID-19 serum samples. The efficient strategy herein described has the potential to produce high-quality rRBD in Sf9 cell line for diagnostic purpose.Fil: Poodts, Joaquín. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Houssay. Instituto de Nanobiotecnología. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Instituto de Nanobiotecnología; ArgentinaFil: Smith, Ignacio. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Houssay. Instituto de Nanobiotecnología. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Instituto de Nanobiotecnología; ArgentinaFil: Birenbaum, Joaquín Manuel. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Houssay. Instituto de Nanobiotecnología. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Instituto de Nanobiotecnología; ArgentinaFil: Rodriguez, María Sol. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Houssay. Instituto de Nanobiotecnología. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Instituto de Nanobiotecnología; ArgentinaFil: Montero, Luciano. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Houssay. Instituto de Nanobiotecnología. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Instituto de Nanobiotecnología; ArgentinaFil: Wolman, Federico Javier. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Houssay. Instituto de Nanobiotecnología. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Instituto de Nanobiotecnología; ArgentinaFil: Marfía, Juan Ignacio. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Houssay. Instituto de Estudios de la Inmunidad Humoral Prof. Ricardo A. Margni. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Instituto de Estudios de la Inmunidad Humoral Prof. Ricardo A. Margni; ArgentinaFil: Valdez, Silvina Noemi. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Houssay. Instituto de Estudios de la Inmunidad Humoral Prof. Ricardo A. Margni. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Instituto de Estudios de la Inmunidad Humoral Prof. Ricardo A. Margni; ArgentinaFil: Alonso, Leonardo Gabriel. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Houssay. Instituto de Nanobiotecnología. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Instituto de Nanobiotecnología; ArgentinaFil: Targovnik, Alexandra Marisa. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Houssay. Instituto de Nanobiotecnología. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Instituto de Nanobiotecnología; ArgentinaFil: Miranda, Maria Victoria. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Houssay. Instituto de Nanobiotecnología. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Instituto de Nanobiotecnología; Argentin

Highly efficient production of rabies virus glycoprotein G ectodomain in Sf9 insect cells

In the present study, we developed a complete process to produce in insect cells a high amount of the ectodomain of rabies virus glycoprotein G (GE) as suitable antigen for detecting anti-rabies antibodies. Using the baculovirus expression vector system in Sf9 insect cells combined with a novel chimeric promoter (polh-pSeL), the expression level reached a yield of 4.1± 0.3 mg/L culture, which was signifcantly higher than that achieved with the standard polh promoter alone. The protein was recovered from the cell lysates and easily purifed in only one step by metal ion afnity chromatography, with a yield of 95% and a purity of 87%. Finally, GE was successfully used in an assay to detect specifc antibodies in serum samplesderived from rabies-vaccinated animals. The efcient strategy developed in this work is an interesting method to produce high amounts of this glycoprotein.Fil: Targovnik, Alexandra Marisa. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Houssay. Instituto de Nanobiotecnología. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Instituto de Nanobiotecnología; ArgentinaFil: Ferrari, Alejandro. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Houssay. Instituto de Química y Físico-Química Biológicas "Prof. Alejandro C. Paladini". Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Instituto de Química y Físico-Química Biológicas; ArgentinaFil: Mc Callum, Gregorio Juan. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Houssay. Instituto de Nanobiotecnología. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Instituto de Nanobiotecnología; ArgentinaFil: Arregui, Mariana Bernadett. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Houssay. Instituto de Nanobiotecnología. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Instituto de Nanobiotecnología; ArgentinaFil: Smith, Ignacio. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Houssay. Instituto de Nanobiotecnología. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Instituto de Nanobiotecnología; ArgentinaFil: Bracco, Lautaro Fidel. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Houssay. Instituto de Nanobiotecnología. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Instituto de Nanobiotecnología; ArgentinaFil: Alfonso, Victoria. Instituto Nacional de Tecnología Agropecuaria. Centro de Investigación en Ciencias Veterinarias y Agronómicas. Instituto de Biotecnología; Argentina. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas; ArgentinaFil: López, María Gabriela. Instituto Nacional de Tecnología Agropecuaria. Centro de Investigación en Ciencias Veterinarias y Agronómicas. Instituto de Biotecnología; Argentina. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas; ArgentinaFil: Martínez Solís, María. Universidad de Valencia. Estructura de Investigación Interdisciplinar en Biotecnología y Biomedicina; EspañaFil: Herrero, Salvador. Universidad de Valencia. Estructura de Investigación Interdisciplinar en Biotecnología y Biomedicina; EspañaFil: Miranda, María Victoria. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Houssay. Instituto de Nanobiotecnología. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Instituto de Nanobiotecnología; Argentin

Larvas de insectos: una nueva plataforma para producir proteínas recombinantes de interés comercial

En Biotecnología, la expresión de proteínas recombinantes es un campo en constante crecimiento y para el cual se utilizan diferentes huéspedes. Como algunas proteínas valiosas no se pueden producir utilizando los sistemas tradicionales, los insectos del orden Lepidoptera infectados con baculovirus recombinantes han surgido como una interesante alternativa para expresar altos niveles de proteínas, especialmente aquellas con modificaciones postraduccionales. Los insectos lepidópteros, los cuales se encuentran ampliamente distribuidos en el mundo, pueden utilizarse como pequeñas fábricas de proteínas, llamadas las nuevas ?biofábricas?. En países asiáticos, algunas especies como Bombyx mori (gusano de seda) se han utilizado para la producción de un gran número de proteínas recombinantes para diferentes usos industriales, en ciencia básica y aplicada, varias de las cuales ya han sido comercializadas. Por otro lado, especies como Spodoptera frugiperda, Heliothis virescens, Rachiplusia nu, Helicoverpa zea, y Trichoplusia ni están ampliamente distribuidas en el mundo occidental y Europa y constituyen plagas que también pueden aprovecharse para la expresión de proteínas. La utilización de larvas de insectos para estos fines biotecnológicos tiene menor costo en comparación a los cultivos de líneas celulares de insectos, y una gran variedad de proteínas recombinantes, incluyendo enzimas, hormonas y vacunas, se han expresado eficientemente con actividad biológica intacta. Por lo tanto, la expresión de proteínas farmacéuticas usando larvas o capullos de insectos se ha convertido en una alternativa muy atractiva. Este documento describe el uso de larvas de insectos como alternativa para producir proteínas recombinantes comerciales.In Biotechnology, the expression of recombinant proteins is a constantly growing field and different hosts are used for this purpose. Some valuable proteins cannot be produced using traditionalsystems. Insects from the order Lepidoptera infected with recombinant baculovirus have appeared as a good choice to express high levels of proteins, especially those with post-translational modifications. Lepidopteran insects, which are extensively distributed in the world, can be used as small protein factories, the new biofactories. Species like Bombyx mori (silkworm) have been explored in Asian countries to produce a great number of recombinant proteins for academic and industrial purposes. Several recombinant proteins produced in silkworms have already been commercialized. On the other hand, species like Spodoptera frugiperda, Heliothis virescens, Rachiplusia nu, Helicoverpa zea and Trichoplusia ni are widely distributed in both the occidental world and Europe. The expression of recombinant proteins in larvae has the advantage of its low cost in comparison with insect cell cultures. A wide variety of recombinant proteins, including enzymes, hormones and vaccines, have been efficiently expressed with intact biological activity. The expression of pharmaceutically relevant proteins, including cell/viral surface proteins and membrane proteins, using insect larvae or cocoons, has become very attractive. This review provides an overview of the production of recombinant proteins using insect larvae.Fil: Targovnik, Alexandra Marisa. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Houssay. Instituto de Nanobiotecnología. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Instituto de Nanobiotecnología; ArgentinaFil: Arregui, Mariana Bernadett. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Houssay. Instituto de Nanobiotecnología. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Instituto de Nanobiotecnología; ArgentinaFil: Mc Callum, Gregorio Juan. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Houssay. Instituto de Nanobiotecnología. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Instituto de Nanobiotecnología; ArgentinaFil: Smith, Ignacio. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Houssay. Instituto de Nanobiotecnología. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Instituto de Nanobiotecnología; ArgentinaFil: Bracco, Lautaro Fidel. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Houssay. Instituto de Nanobiotecnología. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Instituto de Nanobiotecnología; ArgentinaFil: Navarro del Cañizo, Agustín A.. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Houssay. Instituto de Nanobiotecnología. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Instituto de Nanobiotecnología; ArgentinaFil: Wolman, Federico Javier. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Houssay. Instituto de Nanobiotecnología. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Instituto de Nanobiotecnología; ArgentinaFil: Cascone, Osvaldo. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Houssay. Instituto de Nanobiotecnología. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Instituto de Nanobiotecnología; ArgentinaFil: Miranda, Maria Victoria. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Houssay. Instituto de Nanobiotecnología. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Instituto de Nanobiotecnología; Argentin

Rapid and cost-effective process based on insect larvae for scale-up production of SARS-COV-2 spike protein for serological COVID-19 testing

Serology testing for COVID-19 is important in evaluating active immune response against SARS-CoV-2, studying the antibody kinetics, and monitoring reinfections with genetic variants and new virus strains, in particular, the duration of antibodies in virus-exposed individuals and vaccine-mediated immunity. In this work, recombinant S protein of SARS-CoV-2 was expressed in Rachiplusia nu, an important agronomic plague. One gram of insect larvae produces an amount of S protein sufficient for 150 determinations in the ELISA method herein developed. We established a rapid production process for SARS-CoV-2 S protein that showed immunoreactivity for anti-SARS-CoV-2 antibodies and was used as a single antigen for developing the ELISA method with high sensitivity (96.2%) and specificity (98.8%). Our findings provide an efficient and cost-effective platform for large-scale S protein production, and the scale-up is linear, thus avoiding the use of complex equipment like bioreactors.Fil: Smith, Ignacio. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Houssay. Instituto de Nanobiotecnología. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Instituto de Nanobiotecnología; ArgentinaFil: Mc Callum, Gregorio Juan. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Houssay. Instituto de Nanobiotecnología. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Instituto de Nanobiotecnología; ArgentinaFil: Sabljic, Adriana Victoria. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Houssay. Instituto de Estudios de la Inmunidad Humoral Prof. Ricardo A. Margni. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Instituto de Estudios de la Inmunidad Humoral Prof. Ricardo A. Margni; ArgentinaFil: Marfía, Juan Ignacio. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Houssay. Instituto de Estudios de la Inmunidad Humoral Prof. Ricardo A. Margni. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Instituto de Estudios de la Inmunidad Humoral Prof. Ricardo A. Margni; ArgentinaFil: Bombicino, Silvina Sonia. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Houssay. Instituto de Estudios de la Inmunidad Humoral Prof. Ricardo A. Margni. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Instituto de Estudios de la Inmunidad Humoral Prof. Ricardo A. Margni; ArgentinaFil: Trabucchi, Aldana. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Houssay. Instituto de Estudios de la Inmunidad Humoral Prof. Ricardo A. Margni. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Instituto de Estudios de la Inmunidad Humoral Prof. Ricardo A. Margni; ArgentinaFil: Iacono, Ruben Francisco. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Houssay. Instituto de Estudios de la Inmunidad Humoral Prof. Ricardo A. Margni. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Instituto de Estudios de la Inmunidad Humoral Prof. Ricardo A. Margni; ArgentinaFil: Birenbaum, Joaquín Manuel. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Houssay. Instituto de Nanobiotecnología. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Instituto de Nanobiotecnología; ArgentinaFil: Vázquez, Susana Claudia. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Houssay. Instituto de Nanobiotecnología. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Instituto de Nanobiotecnología; ArgentinaFil: Minoia, Juan Mauricio. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Houssay. Instituto de Nanobiotecnología. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Instituto de Nanobiotecnología; ArgentinaFil: Cascone, Osvaldo. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Houssay. Instituto de Nanobiotecnología. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Instituto de Nanobiotecnología; Argentina. Ministerio de Salud de la Nación. Dirección Nacional de Institutos de Investigación. Administración Nacional de Laboratorios e Institutos de Salud "Doctor Carlos G. Malbrán". Instituto Nacional de Producción de Biológicos; ArgentinaFil: López, María Gabriela. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas; Argentina. Instituto Nacional de Tecnología Agropecuaria. Centro de Investigación en Ciencias Veterinarias y Agronómicas. Instituto de Biotecnología; ArgentinaFil: Taboga, Oscar Alberto. Instituto Nacional de Tecnología Agropecuaria. Centro de Investigación en Ciencias Veterinarias y Agronómicas. Instituto de Biotecnología; Argentina. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas; ArgentinaFil: Targovnik, Alexandra Marisa. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Houssay. Instituto de Nanobiotecnología. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Instituto de Nanobiotecnología; ArgentinaFil: Wolman, Federico Javier. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Houssay. Instituto de Nanobiotecnología. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Instituto de Nanobiotecnología; ArgentinaFil: Fingermann, Matias. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas; Argentina. Ministerio de Salud de la Nación. Dirección Nacional de Institutos de Investigación. Administración Nacional de Laboratorios e Institutos de Salud "Doctor Carlos G. Malbrán". Instituto Nacional de Producción de Biológicos; ArgentinaFil: Alonso, Leonardo Gabriel. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Houssay. Instituto de Nanobiotecnología. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Instituto de Nanobiotecnología; ArgentinaFil: Valdez, Silvina Noemi. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Houssay. Instituto de Estudios de la Inmunidad Humoral Prof. Ricardo A. Margni. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Instituto de Estudios de la Inmunidad Humoral Prof. Ricardo A. Margni; ArgentinaFil: Miranda, Maria Victoria. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Houssay. Instituto de Nanobiotecnología. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Instituto de Nanobiotecnología; Argentin

Extractive purification of recombinant peroxidase isozyme c from insect larvae in aqueous two-phase systems

Aqueous two-phase systems (ATPS) have not yet been applied to purify proteins expressed in insect larvae infected by recombinant baculovirus. This work describes the behavior of typical contaminants in the baculovirus-insect larvae expression system such as larval proteins and baculovirus particles in PEG/phosphate ATPSs, in addition to the extraction and purification of the target protein (horseradish peroxidase isozyme C, HRPC). After assessing the influence of PEG molecular weight, system pH and added salt on the partition constants of HRPC and total protein of a clarified larvae extract, two ATPSs were selected for the first extraction step: PEG 1500/phosphate, pH 7.0 with 4.0 % NaCl (System 1) and PEG/phosphate, pH 5.0 in the absence of NaCl (System 2). Both systems were found to be appropriate since a clarified enzyme-enriched top phase was obtained with a yield of 99 and 90 % respectively. The direct partition of larvae homogenized with the components of systems 1 and 2, yielded a HRPC recovery in top phase of 71.4% and 81.1% respectively, whereas total protein recovery was 5.2% and 3.3% respectively. In both systems, the top phase was clear and particulate material remained in the interphase and the bottom phase. The bulk of immunogenic proteins of the larvae concentrated in the bottom phase of both systems. The PCR assay revealed the presence of viral DNA in both phases.             It was possible to extract the HRPC back from the PEG-rich phase by adding a fresh magnesium sulphate solution to form a new ATPS, achieving a recovery in the bottom phase of 50% and 98% in Systems 1 and 2 respectively, whereas the recovery of total protein was 69 % and 24 % respectively. The HRPC global recovery of the two-step processes was 35.4 % and 79.6 % for Systems 1 and 2, with purification factors of 14.5 and 114.2 respectively. The final product was free of viral particles.Fil: Targovnik, Alexandra Marisa. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas; Argentina. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Departamento de Microbiología, Inmunología y Biotecnología. Cátedra de Microbiología Industrial y Biotecnología; ArgentinaFil: Cascone, Osvaldo. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas; Argentina. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Departamento de Microbiología, Inmunología y Biotecnología. Cátedra de Microbiología Industrial y Biotecnología; ArgentinaFil: Miranda, María Victoria. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Departamento de Microbiología, Inmunología y Biotecnología. Cátedra de Microbiología Industrial y Biotecnología; Argentin

Engineering of the baculovirus expression system for optimized protein production

Baculoviruses are arthropod-specific large circular double-stranded DNA viruses successfully used for the control of multipleinsect pests. In addition to their application in pest control, baculoviruses have become a versatile and powerful eukaryotic vectorfor the production of large quantities of recombinant proteins for research and biomedical purposes. Since the first recombinantprotein was expressed in 1983 using the baculovirus expression system (BEVS), different strategies have been developed for thegeneration of recombinant viruses and to increase the stability, yield, and posttranslational modifications of recombinant proteins.In this review, we summarize the main methods and elements playing a role in the BEVS emphasizing recent progresses andfuture developments with respect to the main aspects involved in protein production using the BEVS.Fil: Martínez Solís, María. Universidad de Valencia. Estructura de Investigación Interdisciplinar en Biotecnología y Biomedicina; EspañaFil: Herrero, Salvador. Universidad de Valencia. Estructura de Investigación Interdisciplinar en Biotecnología y Biomedicina; EspañaFil: Targovnik, Alexandra Marisa. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Houssay. Instituto de Nanobiotecnología. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Instituto de Nanobiotecnología; Argentina. Universidad de Valencia. Estructura de Investigación Interdisciplinar en Biotecnología y Biomedicina; Españ

Improvement of baculovirus as protein expression vector and as biopesticide by CRISPR/Cas9 editing

The clustered regularly interspaced short palindromic repeats (CRISPR) system?associated Cas9 endonuclease is a molecular tool that enables specific sequence editing with high efficiency. In this study, we have explored the use of CRISPR/Cas9 system for the engineering of baculovirus. We have shown that the delivering of Cas9-single guide RNA ribonucleoprotein (RNP) complex with or without DNA repair template into Sf21 insect cells through lipofection might be efficient to produce knockouts as well as knock-ins into the baculovirus. To evaluate potential application of our CRISPR/Cas9 method to improve baculovirus as protein expression vector and as biopesticide, we attempted to knockout several genes from a recombinant AcMNPV form used in the baculovirus expression system as well as in a natural occurring viral isolate from the same virus. We have additionally confirmed the adaptation of this methodology for the generation of viral knock-ins in specific regions of the viral genome. Analysis of the generated mutants revealed that the editing efficiency and the type of changes was variable but relatively high. Depending on the targeted gene, the editing rate ranged from 10% to 40%. This study established the first report revealing the potential of CRISPR/Cas9 for genome editing in baculovirus, contributing to the engineering of baculovirus as a protein expression vector as well as a biological control agent.Fil: Pazmiño Ibarra, Verónica. Universidad de Valencia; EspañaFil: Mengual Martí, Adrià. Universidad de Valencia; EspañaFil: Targovnik, Alexandra Marisa. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Houssay. Instituto de Nanobiotecnología. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Instituto de Nanobiotecnología; ArgentinaFil: Herrero, Salvador. Universidad de Valencia; Españ

Horseradish peroxidase production from Spodoptera frugiperda larvae: A simple and inexpensive method

Horseradish peroxidase is used in many biotechnological fields including diagnostics, biocatalysts and biosensors. Horseradish peroxidase isozyme C (HRPC) was extracellularly expressed in Spodoptera frugiperda Sf9 cell culture and in intact larvae. At day 6 post-infection, the concentration of active HRPC in suspension cultures was 3.0 ± 0.1 μg per 1 × 106 cells or 3.0 ± 0.1 mg l-1 with a multiplicity of infection of 1 in the presence of 7.2 μM hemin. Similar yields were obtained in monolayer cultures. In larvae, the HRPC expression level was 137 ± 17 mg HRPC kg-1 larvae at day 6 post-infection with a single larvae thus producing approximately 41 μg HRPC. The whole larval extract was separated by ion exchange chromatography and HRPC was purified in a single step with a yield of 75% and a purification factor of 117. The molecular weight of recombinant HRPC was 44,016 Da, and its glycosylation pattern agreed with that expected for invertebrates. The Km and Vmax were 12.1 ± 1.7 mM and 2673 ± 113 U mg-1, respectively, similar to those of HRP purified from Armoracia rusticana roots. The method described in this study, based on overexpression of HRPC in S. frugiperda larvae, is a simple and inexpensive way to obtain high levels of active enzyme for research and other biotechnological applications. © 2010 Elsevier Ltd. All rights reserved.Fil: Targovnik, Alexandra Marisa. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas; Argentina. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Departamento de Microbiología, Inmunología y Biotecnología. Cátedra de Microbiología Industrial y Biotecnología; ArgentinaFil: Romero, Lucía Virginia. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas; Argentina. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Departamento de Microbiología, Inmunología y Biotecnología. Cátedra de Microbiología Industrial y Biotecnología; ArgentinaFil: Wolman, Federico Javier. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas; Argentina. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Departamento de Microbiología, Inmunología y Biotecnología. Cátedra de Microbiología Industrial y Biotecnología; ArgentinaFil: Cascone, Osvaldo. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas; Argentina. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Departamento de Microbiología, Inmunología y Biotecnología. Cátedra de Microbiología Industrial y Biotecnología; ArgentinaFil: Miranda, Maria Victoria. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas; Argentina. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Departamento de Microbiología, Inmunología y Biotecnología. Cátedra de Microbiología Industrial y Biotecnología; Argentin