Parâmetros De Qualidade Físico-químicos E Avaliação Da Atividade Antioxidante De Folhas De Plectranthus Barbatus Andr. (lamiaceae) Submetidas A Diferentes Processos De Secagem

This paper describes the physicochemical composition, the evaluation of the antioxidant activity by free DPPH radicals using the scavenging method, the determination of flavonoids and total phenolic compounds of ethanol, acetone and aqueous extracts of the medicinal plant Plectranthus barbatus Andr. (Lamiaceae), dehydrated in solar dryer and circulation oven at 60 °C. Water activity rates for two drying methods were below the minimum necessary for growth and toxin production of important food pathogens. Physicochemical results showed that both processes were effective in the dehydration of P. barbatus. The results demonstrated that the acetone (over) and ethanol (over and solar dryer) extracts showed the highest content of total phenols. The ethanol extract (over) showed the highest amount of flavonoids and better antioxidant activity (75.71 ± 10.57 µg L-1). © 2016, Instituto de Biociencias. All rights reserved.181485

Parâmetros de qualidade físico-químicos e avaliação da atividade antioxidante de folhas de Plectranthus barbatus Andr. (Lamiaceae) submetidas a diferentes processos de secagem

RESUMO O presente trabalho descreve a composição físico-química, a avaliação da atividade antioxidante pelo método de sequestro de radicais livres DPPH, determinação de flavonoides e de fenóis totais dos extratos etanol, acetona e aquoso de Plectranthus barbatus Andr. (Lamiaceae), desidratadas em secador solar e em estufa de circulação de ar a 60 oC. Os valores de atividade de água encontrados para as duas secagens foram inferiores ao mínimo necessário para o crescimento e produção de toxina de patógenos de importância alimentar. Os resultados das análises físico-químicas demonstraram que ambos os processos mostraram-se eficientes na desidratação de P. barbatus. Os resultados demonstraram que os extratos acetona (estufa) e etanol (estufa e secador solar) foram os que apresentaram maior conteúdo de fenóis totais. O extrato etanólico (estufa) apresentou maior quantidade de flavonoides e melhor potencial antioxidante (IC50 = 75,71 ± 10,57 µg mL-1)

Composição centesimal, compostos bioativos e atividade antioxidante de frutos de Morinda citrifolia Linn (noni) cultivados no Paraná

O fruto de noni (Morinda citrifolia L.) é consumido há milênios na medicina popular polinésia devido aos benefícios nutricionais e terapêuticos. O consumo de noni em outros países, incluindo o Brasil, cresceu vertiginosamente nos últimos anos em decorrência das atividades biológicas atribuídas a ingestão do suco da fruta, principalmente pela propriedade anticâncer. Contudo, a composição química da planta, que está relacionada com suas propriedades biológicas, é determinada pelo seu local de origem, e por influência do clima e do solo onde é cultivada. Neste sentido, este trabalho teve como objetivo analisar a polpa extraída de frutos maduros de noni cultivados em Maringá-PR. A análise da polpa in natura apresentou 89,16% de umidade, 0,75% de cinzas, 2,10% de proteínas, 2,19% de lipídios e 5,81% de carboidratos. Dos compostos bioativos, foram analisados antocianinas (1,39 mg.100 g-1 polpa), flavonoides amarelos (13,01 mg.100 g-1 polpa), carotenóides (0,45 mg.100 g-1 polpa) e vitamina C (12,16 mg.100 g-1 polpa). Para fenólicos totais e atividade antioxidante foram preparados diferentes extratos, sendo que os maiores teores de fenólicos totais foram encontrados no extrato aquoso (1143,56 mg equivalente de ácido gálico (EAG).100 g-1), seguido do extrato etanólico (966,96 mg EAG.100 g-1), metanol/acetona (820,88 mg EAG.100 g-1) e metanólico (306,33 mg EAG.100 g-1). Os melhores resultados para antioxidantes, determinado pelo EC50 - concentração do extrato necessária para reduzir 50% do radical DPPH, foram encontrados nos extratos metanol/acetona (EC50 de 25,18 mg.mL-1) e metanólico (EC50 de 25,96 mg.mL-1). A atividade antioxidante dos frutos pode estar relacionada com o conteúdo de vitamina C, uma vez que os extratos com um menor conteúdo de fenóis totais foram aqueles que apresentaram menores valores de EC50

Synthesis And Antitumoral Activity Of Novel 3-(2-substituted-1,3,4-oxadiazol-5-yl) And 3-(5-substituted-1,2,4-triazol-3-yl) β-carboline Derivatives

Several novel 1-substituted-phenyl β-carbolines bearing the 2-substituted-1,3,4-oxadiazol-5-yl and 5-substituted-1,2,4-triazol-3-yl groups at C-3 were synthesized and evaluated for their in vitro anticancer activity. The assay results pointed thirteen compounds with growth inhibition effect (GI 50 < 100 μM) for all eight different types of human cancer cell lines tested. The β-carbolines 7a and 7h, bearing the 3-(2-metylthio-1,3,4-oxadiazol-5-yl) group, displayed high selectivity and potent anticancer activity against ovarian cell line with GI 50 values lying in the nanomolar concentration range (GI 50 = 10 nM for both compounds). The 1-(N,N-dimethylaminophenyl)-3-(5-thioxo-1,2,4-triazol-3-yl) β-carboline (8g) was the most active compound, showing particular effectiveness on lung (GI 50 = 0.06 μM), ovarian and renal cell lines. The potent anticancer activity presented for synthesized compounds 7a, 7h, and 8g, together with their easiness of synthesis, makes these compounds promising anticancer agents. © 2008 Elsevier Ltd. All rights reserved.162296609667Tonin, L.T.D., Barbosa, V.A., Bocca, C.C., Ramos, E.R.F., Nakamura, C.V., Costa, W.F., daBasso, E.A., Sarragiotto, M.H., (2008) Eur. J. Med. Chem, , 10.1016/j.ejmech.2008.03.044Wang, Y.-H., Tang, J.-G., Wang, R.-R., Yang, L.-M., Dong, Z.-J., Du, L., Shen, X., Zheng, Y.-T., (2007) Biochem. Biophys. Res. Commun., 355, p. 1091Gupta, L., Srivastava, K., Singh, S., Puri, S.K., Chauhan, P.M.S., (2008) Bioorg. Med. Chem. Lett., 18, p. 3306Kumar, A., Katiyar, S.B., Gupta, S., Chauhan, P.M.S., (2006) Eur. J. Med. Chem., 41, p. 106Rivas, P., Cassels, B.K., Morello, A., Repetto, Y., (1999) Comp. Biochem. Physiol. C, 122, p. 27Zheng, L., Chen, H., Han, X., Lin, W., Yan, X., (2005) World J. Microbiol. Biotechnol., 21, p. 201Guan, H., Chen, H., Peng, W., Ma, Y., Cao, R., Liu, X., Xu, A., (2006) Eur. J. Med. Chem., 41, p. 1167Wu, Q., Cao, R., Feng, M., Guan, X., Ma, C., Liu, J., Song, H., Peng, W., (2008) Eur. J. Med. Chem., , 10.1016/j.ejmech.2008.03.030Shen, Y.-C., Chen, C.-Y., Hsieh, P.-W., Duh, C.-y., Lin, Y.-M., Ko, C.-L., (2005) Chem. Pharm. Bull., 53, p. 32Cao, R., Peng, W., Chen, H., Hou, X., Guan, H., Chen, Q., Ma, Y., Xu, A., (2005) Eur. J. Med. Chem., 40, p. 249Ishida, J., Wang, H.-K., Bastow, K.F., Hu, C.-Q., Lee, K.-H., (1999) Bioorg. Med. Chem. Lett., 9, p. 3319Cao, R., Chen, H., Ma, Y., Hou, X., Guan, H., Liu, X., Xu, A., (2005) Eur. J. Med. Chem., 40, p. 991Cao, R., Chen, Q., Hou, X., Chen, H., Guan, H., Ma, Y., Peng, W., Xu, A., (2004) Bioorg. Med. Chem., 12, p. 4613Zhao, M., Bi, L., Wang, W., Wang, C., Baudy-Floc'h, M., Ju, J., Peng, S., (2006) Bioorg. Med. Chem., 14, p. 6998Cao, R., Peng, W., Chen, H., Ma, Y., Liu, X., Hou, X., Guan, H., Xu, A., (2005) Biochem. Biophys. Res. Commun., 338, p. 1557Boursereau, Y., Coldham, I., (2004) Bioorg. Med. Chem. Lett., 14, p. 5841Xiao, S., Lin, W., Wang, C., Yang, M., (2001) Bioorg. Med. Chem. Lett., 11, p. 437Deveau, A.M., Labroli, M.A., Dieckhaus, C.M., Barthen, M.T., Smith, K.S., Macdonald, T.L., (2001) Bioorg. Med. Chem. Lett., 11, p. 1251Song, Y., Kesuma, D., Wang, J., Deng, Y., Duan, J., Wang, J.H., Qi, R.Z., (2004) Biochem. Biophys. Res. Commun., 317, p. 128Song, Y., Wang, J., Teng, S.F., Kesuma, D., Deng, Y., Duan, J., Wang, J.H., Sim, M.M., (2002) Bioorg. Med. Chem. Lett., 12, p. 1129Castro, A.C., Dang, L.C., Soucy, F., Grenier, L., Mazdiyasni, H., Hottelet, M., Parent, L., Adams, J., (2003) Bioorg. Med. Chem. Lett., 13, p. 2419Holla, B.S., Poojary, K.N., Rao, B.S., Shivananda, M.K., (2002) Eur. J. Med. Chem., 37, p. 511Al-Soud, Y.A., Al-Masoudi, N.A., Ferwanah, A.E.-R.S., (2003) Bioorg. Med. Chem., 11, p. 1701Demirbas, N., Karaoglu, S.A., Demirbas, A., Sancak, K., (2004) Eur. J. Med. Chem., 39, p. 793Aboraia, A.S., Abdel-Rahman, H.M., Mahfouz, N.M., EL-Gendy, M.A., (2006) Bioorg. Med. Chem., 14, p. 1236Tan, T.M.C., Chen, H., Kong, K.H., Bai, J., Li, Y., Lim, S.G., Ang, T.H., Lam, Y., (2006) Antiviral Res., 71, p. 7Amir, M., Shikha, K., (2004) Eur. J. Med. Chem., 39, p. 535Khalil, N.S.A.M., (2006) Carbohydr. Res., 341, p. 2187Wu, J., Liu, X., Cheng, X., Cao, Y., Wang, D., Li, Z., Xu, W., Clercq, E.D., (2007) Molecules, 12, p. 2003Monks, A.D., Skehan, P., Shoemaker, R., Paull, K., Vistica, D., Hose, C., Langley, J., Boyd, M., (1991) J. Natl. Cancer Inst., 83, p. 75