Small GTPases in plant biotic interactions

The superfamily of small monomeric GTPases originated in a common ancestor of eukaryotic multicellular organisms and, since then, it has evolved independently in each lineage to cope with the environmental challenges imposed by their different life styles. Members of the small GTPase family function in the control of vesicle trafficking, cytoskeleton rearrangements and signaling during crucial biological processes, such as cell growth and responses to environmental cues. In this review, we discuss the emerging roles of these small GTPases in the pathogenic and symbiotic interactions established by plants with microorganisms present in their nearest environment, in which membrane trafficking is crucial along the different steps of the interaction, from recognition and signal transduction to nutrient exchange.Instituto de Biotecnologia y Biologia Molecula

The monomeric GTPase RabA2 is required for progression and maintenance of membrane integrity of infection threads during root nodule symbiosis

Common bean (Phaseolus vulgaris) symbiotically associates with its partner Rhizobium etli, resulting in the formation of root nitrogen-fixing nodules. Compatible bacteria can reach cortical cells in a tightly regulated infection process, in which the specific recognition of signal molecules is a key step to select the symbiotic partner. In this work, we show that RabA2, a monomeric GTPase from common bean, is required for the progression of the infection canal, referred to as the infection thread (IT), toward the cortical cells. Expression of miss-regulated mutant variants of RabA2 resulted in an increased number of abortive infection events, including bursting of ITs and a reduction in the number of nodules. Nodules formed in these plants were small and contained infected cells with disrupted symbiosome membranes, indicating either early senescence of these cells or defects in the formation of the symbiosome membrane during bacterial release. RabA2 localized to mobile vesicles around the IT, but mutations that affect GTP hydrolysis or GTP/GDP exchange modified this localization. Colocalization of RabA2 with ArfA1 and a Golgi marker indicates that RabA2 localizes in Golgi stacks and the trans-Golgi network. Our results suggest that RabA2 is part of the vesicle transport events required to maintain the integrity of the membrane during IT progression.Instituto de Biotecnologia y Biologia Molecula

Reprogramming of root cells during nitrogen-fixing symbiosis involves dynamic polysome association of coding and noncoding RNAs

Translational control is a widespread mechanism that allows the cell to rapidly modulate gene expression in order to provide flexibility and adaptability to eukaryotic organisms. We applied translating ribosome affinity purification combined with RNA sequencing to characterize translational regulation of mRNAs at early stages of the nitrogen-fixing symbiosis established between Medicago truncatula and Sinorhizobium meliloti. Our analysis revealed a poor correlation between transcriptional and translational changes and identified hundreds of regulated protein-coding and long noncoding RNAs (lncRNAs), some of which are regulated in specific cell types. We demonstrated that a short variant of the lncRNA Trans-acting small interference RNA3 (TAS3) increased its association to the translational machinery in response to rhizobia. Functional analysis revealed that this short variant of TAS3 might act as a target mimic that captures microRNA390, contributing to reduce trans acting small interference Auxin Response Factor production and modulating nodule formation and rhizobial infection. The analysis of alternative transcript variants identified a translationally upregulated mRNA encoding subunit 3 of the SUPERKILLER complex (SKI3), which participates in mRNA decay. Knockdown of SKI3 decreased nodule initiation and development, as well as the survival of bacteria within nodules. Our results highlight the importance of translational control and mRNA decay pathways for the successful establishment of the nitrogen-fixing symbiosis.Fil: Traubenik, Laura Soledad. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Centro Científico Tecnológico Conicet - La Plata. Instituto de Biotecnología y Biología Molecular. Universidad Nacional de La Plata. Facultad de Ciencias Exactas. Instituto de Biotecnología y Biología Molecular; ArgentinaFil: Reynoso, Mauricio Alberto. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Centro Científico Tecnológico Conicet - La Plata. Instituto de Biotecnología y Biología Molecular. Universidad Nacional de La Plata. Facultad de Ciencias Exactas. Instituto de Biotecnología y Biología Molecular; ArgentinaFil: Hobecker, Karen Vanesa. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Centro Científico Tecnológico Conicet - La Plata. Instituto de Biotecnología y Biología Molecular. Universidad Nacional de La Plata. Facultad de Ciencias Exactas. Instituto de Biotecnología y Biología Molecular; ArgentinaFil: Lancia, Marcos. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Centro Científico Tecnológico Conicet - La Plata. Instituto de Biotecnología y Biología Molecular. Universidad Nacional de La Plata. Facultad de Ciencias Exactas. Instituto de Biotecnología y Biología Molecular; ArgentinaFil: Hummel, Maureen. University of California; Estados UnidosFil: Rosen, Benjamin. J. Craig Venter Institute; Estados UnidosFil: Town, Christopher. J. Craig Venter Institute; Estados UnidosFil: Bailey Serres, Julia. University of California; Estados UnidosFil: Blanco, Flavio Antonio. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Centro Científico Tecnológico Conicet - La Plata. Instituto de Biotecnología y Biología Molecular. Universidad Nacional de La Plata. Facultad de Ciencias Exactas. Instituto de Biotecnología y Biología Molecular; ArgentinaFil: Zanetti, María Eugenia. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Centro Científico Tecnológico Conicet - La Plata. Instituto de Biotecnología y Biología Molecular. Universidad Nacional de La Plata. Facultad de Ciencias Exactas. Instituto de Biotecnología y Biología Molecular; Argentin

Regulación dinámica del traductoma de <i>Medicago truncatula</i> durante la simbiosis fijadora de nitrógeno

La capacidad de las leguminosas de establecer una asociación simbiótica con bacterias fijadoras de nitrógeno es de fundamental importancia para la incorporación de nitrógeno en los suelos. Si bien en los últimos años se ha avanzado en la identificación de genes de la planta requeridos para la nodulación, aún se desconocen muchos aspectos de los mecanismos moleculares que regulan un proceso complejo, en el que se integran y coordinan la infección de la bacteria, el desarrollo de un nuevo órgano en la raíz de la leguminosa y las señales del ambiente. La expresión génica es regulada a múltiples niveles, que involucran eventos nucleares y citoplasmáticos. Los eventos nucleares incluyen la remodelación de la cromatina, la transcripción y el procesamiento del RNA, el control de la calidad de los RNAs y el exporte de los mismos del núcleo al citoplasma. Una vez en el citoplasma, los transcriptos pueden ser traducidos activamente en los polirribosomas, almacenados en complejos ribonucleoproteicos o sometidos a degradación por diferentes mecanismos. El auge de las técnicas asociadas a la transcriptómica ha llevado al uso de los niveles estacionarios de mRNA como criterio para la selección y el estudio de genes con una posible implicancia en caracteres de importancia agronómica. Este enfoque ha excluido los niveles de regulación post-transcripcionales, asociados a una respuesta rápida mediante la activación o represión traduccional de mRNAs preexistentes, así como a la degradación de mRNAs. Este conocimiento es esencial para establecer criterios racionales que permitan optimizar el proceso de fijación biológica de nitrógeno. En el presente trabajo de Tesis se caracterizó a escala genómica la distribución dinámica de la asociación de RNAs mensajeros (mRNAs) y RNAs no codificantes largos (lncRNAs) a la maquinaria traduccional durante las etapas tempranas de la simbiosis. Para ello, se utilizó la técnica Translating Ribosome Affinity Purification (TRAP) seguida de secuenciación masiva de RNA (RNA-seq) en raíces de la leguminosa Medicago truncatula inoculadas o no con su par simbiótico Sinorhizobium meliloti. Un aspecto notable de nuestros resultados fue la limitada correlación entre la regulación a nivel transcripcional y traduccional observada en respuesta a la inoculación con S. meliloti, sugiriendo que el control traduccional contribuye significativamente a la reprogramación de la expresión génica en las células de la raíz comprometidas para la simbiosis. Posteriormente, se evaluaron los niveles de asociación de los mRNAs y lncRNAs a la maquinaria traduccional de tejidos específicos de la raíz involucrados en la formación de nódulos. Este análisis permitió establecer que los cambios de asociación de los RNAs a polisomas están fuertemente determinados por los diferentes tipos de células que participan en las etapas tempranas de la simbiosis. El análisis de las variantes de transcriptos alternativos asociados diferencialmente a la maquinaria traduccional en respuesta a la inoculación nos permitió identificar al transcripto SUPERKILLER 3 (SKI3), el cual codifica una proteína involucrada en la vía de degradación 3´-5´. El silenciamiento de SKI3 alteró el desarrollo de los nódulos y la supervivencia de las bacterias dentro de los mismos. Un mapeo de los RNAs clivados diferencialmente en plantas silenciadas en SKI3 o plantas control utilizando la técnica de GMUCT 2.0, permitió identificar al transcripto que codifica un miembro de la familia de factores de transcripción APETALA2 (AP2) como target putativo de la vía de degradación mediada por SKI3. Dicho AP2 es el ortólogo putativo de NNC1, un represor transcripcional del gen de nodulación ENOD40. Por último, se analizó la dinámica de la asociación de lncRNAs a la maquinaria traduccional durante la simbiosis. Se identificaron lncRNAs que muestran un comportamiento determinado por el tipo celular. Así se identificó al lncRNA intergénico denominado POSEIDON (PSD), el cual disminuye su asociación a la maquinaria traduccional en el córtex de la raíz luego de la inoculación con S. meliloti. El silenciamiento de PSD alteró tanto los eventos de infección como la organogénesis del nódulo, sugiriendo que este lncRNA podría desempeñar una función regulatoria durante la simbiosis fijadora de nitrógeno. El presente trabajo de tesis contribuye a sustentar la relevancia de los niveles de regulación post transcripcional en el control de la expresión génica durante el establecimiento de la asociación simbiótica entre leguminosas y rizobios. Los resultados obtenidos permiten mejorar nuestra comprensión del fenómeno biológico que conduce a la fijación biológica de nitrógeno, a la vez que resultan útiles para aumentar la información en la cual se basa la selección de genes con potencial utilización en el mejoramiento genético de caracteres agronómicos relevantes en plantas leguminosas.Facultad de Ciencias Exacta

Translational regulation in pathogenic and beneficial plant-microbe interactions

Plants are surrounded by a vast diversity of microorganisms. Limiting pathogenic microorganisms is crucial for plant survival. On the other hand, the interaction of plants with beneficial microorganisms promotes their growth or allows them to overcome nutrient deficiencies. Balancing the number and nature of these interactions is crucial for plant growth and development, and thus, for crop productivity in agriculture. Plants use sophisticated mechanisms to recognize pathogenic and beneficial microorganisms and genetic programs related to immunity or symbiosis. Although most research has focused on characterizing changes in the transcriptome during plant-microbe interactions, the application of techniques such as Translating Ribosome Affinity Purification (TRAP) and Ribosome profiling allowed examining the dynamic association of RNAs to the translational machinery, highlighting the importance of the translational level of control of gene expression in both pathogenic and beneficial interactions. These studies revealed that the transcriptional and the translational responses are not always correlated, and that translational control operates at cell-specific level. In addition, translational control is governed by ciselements present in the 50mRNA leader of regulated mRNAs, e.g. upstream open reading frames (uORFs) and sequence-specific motifs. In this review, we summarize and discuss the recent advances made in the field of translational control during pathogenic and beneficial plant-microbe interactions.Fil: Traubenik, Laura Soledad. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Centro Científico Tecnológico Conicet - La Plata. Instituto de Biotecnología y Biología Molecular. Universidad Nacional de La Plata. Facultad de Ciencias Exactas. Instituto de Biotecnología y Biología Molecular; ArgentinaFil: Ferrari, Milagros. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Centro Científico Tecnológico Conicet - La Plata. Instituto de Biotecnología y Biología Molecular. Universidad Nacional de La Plata. Facultad de Ciencias Exactas. Instituto de Biotecnología y Biología Molecular; ArgentinaFil: Blanco, Flavio Antonio. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Centro Científico Tecnológico Conicet - La Plata. Instituto de Biotecnología y Biología Molecular. Universidad Nacional de La Plata. Facultad de Ciencias Exactas. Instituto de Biotecnología y Biología Molecular; ArgentinaFil: Zanetti, María Eugenia. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Centro Científico Tecnológico Conicet - La Plata. Instituto de Biotecnología y Biología Molecular. Universidad Nacional de La Plata. Facultad de Ciencias Exactas. Instituto de Biotecnología y Biología Molecular; Argentin

TRAP-SEQ of eukaryotic translatomes applied to the detection of polysome-associated long noncoding RNAs

Translating ribosome affinity purification (TRAP) technology allows the isolation of polysomal complexes and the RNAs associated with at least one 80S ribosome. TRAP consists of the stabilization and affinity purification of polysomes containing a tagged version of a ribosomal protein. Quantitative assessment of the TRAP RNA is achieved by direct sequencing (TRAP-SEQ), which provides accurate quantitation of ribosome-associated RNAs, including long noncoding RNAs (lncRNAs). Here we present an updated procedure for TRAP-SEQ, as well as a primary analysis guide for identification of ribosome-associated lncRNAs. This methodology enables the study of dynamic association of lncRNAs by assessing rapid changes in their transcript levels in polysomes at organ or cell-type level, during development, or in response to endogenous or exogenous stimuli.Fil: Traubenik, Laura Soledad. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Centro Científico Tecnológico Conicet - La Plata. Instituto de Biotecnología y Biología Molecular. Universidad Nacional de La Plata. Facultad de Ciencias Exactas. Instituto de Biotecnología y Biología Molecular; ArgentinaFil: Blanco, Flavio Antonio. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Centro Científico Tecnológico Conicet - La Plata. Instituto de Biotecnología y Biología Molecular. Universidad Nacional de La Plata. Facultad de Ciencias Exactas. Instituto de Biotecnología y Biología Molecular; ArgentinaFil: Zanetti, María Eugenia. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Centro Científico Tecnológico Conicet - La Plata. Instituto de Biotecnología y Biología Molecular. Universidad Nacional de La Plata. Facultad de Ciencias Exactas. Instituto de Biotecnología y Biología Molecular; ArgentinaFil: Reynoso, Mauricio Alberto. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Centro Científico Tecnológico Conicet - La Plata. Instituto de Biotecnología y Biología Molecular. Universidad Nacional de La Plata. Facultad de Ciencias Exactas. Instituto de Biotecnología y Biología Molecular; Argentin

Small GTPases in plant biotic interactions

The superfamily of small monomeric GTPases originated in a common ancestor of eukaryotic multicellular organisms and, since then, it has evolved independently in each lineage to cope with the environmental challenges imposed by their different life styles. Members of the small GTPase family function in the control of vesicle trafficking, cytoskeleton rearrangements and signaling during crucial biological processes, such as cell growth and responses to environmental cues. In this review, we discuss the emerging roles of these small GTPases in the pathogenic and symbiotic interactions established by plants with microorganisms present in their nearest environment, in which membrane trafficking is crucial along the different steps of the interaction, from recognition and signal transduction to nutrient exchange.Fil: Rivero Hernandez, Claudio Hernan. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Centro Científico Tecnológico Conicet - La Plata. Instituto de Biotecnología y Biología Molecular. Universidad Nacional de La Plata. Facultad de Ciencias Exactas. Instituto de Biotecnología y Biología Molecular; ArgentinaFil: Traubenik, Laura Soledad. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Centro Científico Tecnológico Conicet - La Plata. Instituto de Biotecnología y Biología Molecular. Universidad Nacional de La Plata. Facultad de Ciencias Exactas. Instituto de Biotecnología y Biología Molecular; ArgentinaFil: Zanetti, María Eugenia. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Centro Científico Tecnológico Conicet - La Plata. Instituto de Biotecnología y Biología Molecular. Universidad Nacional de La Plata. Facultad de Ciencias Exactas. Instituto de Biotecnología y Biología Molecular; ArgentinaFil: Blanco, Flavio Antonio. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Centro Científico Tecnológico Conicet - La Plata. Instituto de Biotecnología y Biología Molecular. Universidad Nacional de La Plata. Facultad de Ciencias Exactas. Instituto de Biotecnología y Biología Molecular; Argentin

Post-transcriptional reprogramming during root nodule symbiosis

Plant cells adjust their genetic programs integrating developmentaland environmental cues, leading to a constantreprogramming in gene expression that contributes to thephysiological and ecological adaptation of the whole plant.Legume plants establish a nitrogen fixing symbiosis with soilbacteria known as rhizobia, providing an exquisite biologicalmodel to study reprogramming of gene expression in a pluricellulareukaryotic organism interacting with its prokaryoticmicrosymbiont in a changing environmental context, whichalso impacts on the output of the symbiotic association. Manystudies in this field have focused on the modification of theplant transcriptome during the onset of the interaction, takingadvantage of the DNA microarray and direct RNA sequencing(RNA-seq) technologies. As a consequence, most of theinformation available describes changes in the steady-statelevels of poly A+ RNAs at different stages of the interaction (ElYahyaoui et al. 2004; Lohar et al. 2006; Benedito et al. 2008;Breakspear et al. 2014; Roux et al. 2014), underestimating thepost-transcriptional mechanisms that add new layers of regulationto the reprogramming of gene expression. In the last years,a number of studies have contributed to a more comprehensiveunderstanding of these changes, highlighting the importance ofthe stability and translatability of poly A+ RNAs, as well as therole of endogenous small RNAs (sRNAs), mainly microRNAs(miRNAs) and phased small interfering RNAs (phasiRNAs),as key regulators of gene expression. In this chapter, we willsummarize the contribution of translational regulation to thegenetic responses of the plant during root nodule symbiosisand the crucial roles played by sRNAs in this ecologically andagronomically important interaction.Fil: Reynoso, Mauricio Alberto. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Centro Científico Tecnológico Conicet - La Plata. Instituto de Biotecnología y Biología Molecular. Universidad Nacional de La Plata. Facultad de Ciencias Exactas. Instituto de Biotecnología y Biología Molecular; ArgentinaFil: Traubenik, Laura Soledad. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Centro Científico Tecnológico Conicet - La Plata. Instituto de Biotecnología y Biología Molecular. Universidad Nacional de La Plata. Facultad de Ciencias Exactas. Instituto de Biotecnología y Biología Molecular; ArgentinaFil: Hobecker, Karen Vanesa. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Centro Científico Tecnológico Conicet - La Plata. Instituto de Biotecnología y Biología Molecular. Universidad Nacional de La Plata. Facultad de Ciencias Exactas. Instituto de Biotecnología y Biología Molecular; ArgentinaFil: Blanco, Flavio Antonio. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Centro Científico Tecnológico Conicet - La Plata. Instituto de Biotecnología y Biología Molecular. Universidad Nacional de La Plata. Facultad de Ciencias Exactas. Instituto de Biotecnología y Biología Molecular; ArgentinaFil: Zanetti, María Eugenia. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Centro Científico Tecnológico Conicet - La Plata. Instituto de Biotecnología y Biología Molecular. Universidad Nacional de La Plata. Facultad de Ciencias Exactas. Instituto de Biotecnología y Biología Molecular; Argentin

The monomeric GTPase RabA2 is required for progression and maintenance of membrane integrity of infection threads during root nodule symbiosis

Key message: Progression of the infection canal that conducts rhizobia to the nodule primordium requires a functional Rab GTPase located in Golgi/trans-Golgi that also participate in root hair polar growth. Abstract: Common bean (Phaseolus vulgaris) symbiotically associates with its partner Rhizobium etli, resulting in the formation of root nitrogen-fixing nodules. Compatible bacteria can reach cortical cells in a tightly regulated infection process, in which the specific recognition of signal molecules is a key step to select the symbiotic partner. In this work, we show that RabA2, a monomeric GTPase from common bean, is required for the progression of the infection canal, referred to as the infection thread (IT), toward the cortical cells. Expression of miss-regulated mutant variants of RabA2 resulted in an increased number of abortive infection events, including bursting of ITs and a reduction in the number of nodules. Nodules formed in these plants were small and contained infected cells with disrupted symbiosome membranes, indicating either early senescence of these cells or defects in the formation of the symbiosome membrane during bacterial release. RabA2 localized to mobile vesicles around the IT, but mutations that affect GTP hydrolysis or GTP/GDP exchange modified this localization. Colocalization of RabA2 with ArfA1 and a Golgi marker indicates that RabA2 localizes in Golgi stacks and the trans-Golgi network. Our results suggest that RabA2 is part of the vesicle transport events required to maintain the integrity of the membrane during IT progression.Fil: Dalla Via, Maria Virginia. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Centro Científico Tecnológico Conicet - La Plata. Instituto de Biotecnología y Biología Molecular. Universidad Nacional de La Plata. Facultad de Ciencias Exactas. Instituto de Biotecnología y Biología Molecular; ArgentinaFil: Traubenik, Laura Soledad. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Centro Científico Tecnológico Conicet - La Plata. Instituto de Biotecnología y Biología Molecular. Universidad Nacional de La Plata. Facultad de Ciencias Exactas. Instituto de Biotecnología y Biología Molecular; ArgentinaFil: Rivero Hernandez, Claudio Hernan. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Centro Científico Tecnológico Conicet - La Plata. Instituto de Biotecnología y Biología Molecular. Universidad Nacional de La Plata. Facultad de Ciencias Exactas. Instituto de Biotecnología y Biología Molecular; ArgentinaFil: Aguilar, Orlando Mario. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Centro Científico Tecnológico Conicet - La Plata. Instituto de Biotecnología y Biología Molecular. Universidad Nacional de La Plata. Facultad de Ciencias Exactas. Instituto de Biotecnología y Biología Molecular; ArgentinaFil: Zanetti, María Eugenia. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Centro Científico Tecnológico Conicet - La Plata. Instituto de Biotecnología y Biología Molecular. Universidad Nacional de La Plata. Facultad de Ciencias Exactas. Instituto de Biotecnología y Biología Molecular; ArgentinaFil: Blanco, Flavio Antonio. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Centro Científico Tecnológico Conicet - La Plata. Instituto de Biotecnología y Biología Molecular. Universidad Nacional de La Plata. Facultad de Ciencias Exactas. Instituto de Biotecnología y Biología Molecular; Argentin

Reprogramming of Root Cells during Nitrogen-Fixing Symbiosis Involves Dynamic Polysome Association of Coding and Noncoding RNAs

Translational control is a widespread mechanism that allows the cell to rapidly modulate gene expression in order to provide flexibility and adaptability to eukaryotic organisms. We applied translating ribosome affinity purification combined with RNA sequencing to characterize translational regulation of mRNAs at early stages of the nitrogen-fixing symbiosis established between Medicago truncatula and Sinorhizobium meliloti. Our analysis revealed a poor correlation between transcriptional and translational changes and identified hundreds of regulated protein-coding and long noncoding RNAs (lncRNAs), some of which are regulated in specific cell types. We demonstrated that a short variant of the lncRNA Trans-acting small interference RNA3 (TAS3) increased its association to the translational machinery in response to rhizobia. Functional analysis revealed that this short variant of TAS3 might act as a target mimic that captures microRNA390, contributing to reduce trans acting small interference Auxin Response Factor production and modulating nodule formation and rhizobial infection. The analysis of alternative transcript variants identified a translationally upregulated mRNA encoding subunit 3 of the SUPERKILLER complex (SKI3), which participates in mRNA decay. Knockdown of SKI3 decreased nodule initiation and development, as well as the survival of bacteria within nodules. Our results highlight the importance of translational control and mRNA decay pathways for the successful establishment of the nitrogen-fixing symbiosis.Facultad de Ciencias ExactasInstituto de Biotecnologia y Biologia Molecula