Spironolactone ameliorates lipopolysaccharide-induced cholestasis in rats by improving Mrp2 function: Role of transcriptional and post-transcriptional mechanisms

Aims: Lipopolysaccharide (LPS) induces inflammatory cholestasis by impairing expression, localization, and function of carriers involved in bile formation, e.g. bile salt export pump (Bsep) and multidrug resistance-associated protein 2 (Mrp2). A specific therapy against this disease is still lacking. Therefore, we evaluated the anticholestatic effects of spironolactone (SL), a PXR ligand that regulates bile salt homeostasis, up-regulates Mrp2, and bears anti-inflammatory properties. Main methods: Male Wistar rats were divided into four groups: Control, SL (83.3 mg/kg/day of SL, i.p., for 3 days), LPS (2.5 mg/kg/day, i.p., at 8 am of the last 2 days, and 1.5 mg/kg/day at 8 pm of the last day), and SL + LPS. Biliary and plasma parameters and the expression, function, and localization of Mrp2 and Bsep were evaluated. Key findings: SL partially prevented LPS-induced drop of basal bile flow by normalizing the bile salt-independent fraction of bile flow (BSIBF), via improvement of glutathione output. This was due to a recovery in Mrp2 transport function, the major canalicular glutathione transporter, estimated by monitoring the output of its exogenously administered substrate dibromosulfophthalein. SL counteracted the LPS-induced downregulation of Mrp2, but not that of Bsep, at both mRNA and protein levels. LPS induced endocytic internalization of both transporters, visualized by immunofluorescence followed by confocal microscopy, and SL partially prevented this relocalization. SL did not prevent the increase in IL-1β, IL-6, and TNF-α plasma levels. Significance: SL prevents the impairment in Mrp2 expression and localization, and the resulting recovery of Mrp2 function normalizes the BSIBF by improving glutathione excretion.Fil: Razori, María Valeria. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Centro Científico Tecnológico Conicet - Rosario. Instituto de Fisiología Experimental. Universidad Nacional de Rosario. Facultad de Ciencias Bioquímicas y Farmacéuticas. Instituto de Fisiología Experimental; ArgentinaFil: Martín, Pamela Lucía. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Centro Científico Tecnológico Conicet - Rosario. Instituto de Fisiología Experimental. Universidad Nacional de Rosario. Facultad de Ciencias Bioquímicas y Farmacéuticas. Instituto de Fisiología Experimental; ArgentinaFil: Maidagan, Paula María. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Centro Científico Tecnológico Conicet - Rosario. Instituto de Fisiología Experimental. Universidad Nacional de Rosario. Facultad de Ciencias Bioquímicas y Farmacéuticas. Instituto de Fisiología Experimental; ArgentinaFil: Barosso, Ismael Ricardo. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Centro Científico Tecnológico Conicet - Rosario. Instituto de Fisiología Experimental. Universidad Nacional de Rosario. Facultad de Ciencias Bioquímicas y Farmacéuticas. Instituto de Fisiología Experimental; ArgentinaFil: Ciriaci, Nadia. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Centro Científico Tecnológico Conicet - Rosario. Instituto de Fisiología Experimental. Universidad Nacional de Rosario. Facultad de Ciencias Bioquímicas y Farmacéuticas. Instituto de Fisiología Experimental; ArgentinaFil: Andermatten, Romina Belén. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Centro Científico Tecnológico Conicet - Rosario. Instituto de Fisiología Experimental. Universidad Nacional de Rosario. Facultad de Ciencias Bioquímicas y Farmacéuticas. Instituto de Fisiología Experimental; ArgentinaFil: Sanchez Pozzi, Enrique Juan. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Centro Científico Tecnológico Conicet - Rosario. Instituto de Fisiología Experimental. Universidad Nacional de Rosario. Facultad de Ciencias Bioquímicas y Farmacéuticas. Instituto de Fisiología Experimental; ArgentinaFil: Basiglio, Cecilia Lorena. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Centro Científico Tecnológico Conicet - Rosario. Instituto de Fisiología Experimental. Universidad Nacional de Rosario. Facultad de Ciencias Bioquímicas y Farmacéuticas. Instituto de Fisiología Experimental; ArgentinaFil: Ruiz, Maria Laura. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Centro Científico Tecnológico Conicet - Rosario. Instituto de Fisiología Experimental. Universidad Nacional de Rosario. Facultad de Ciencias Bioquímicas y Farmacéuticas. Instituto de Fisiología Experimental; ArgentinaFil: Roma, Marcelo Gabriel. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Centro Científico Tecnológico Conicet - Rosario. Instituto de Fisiología Experimental. Universidad Nacional de Rosario. Facultad de Ciencias Bioquímicas y Farmacéuticas. Instituto de Fisiología Experimental; Argentin

Anticholestatic mechanisms of ursodeoxycholic acid in lipopolysaccharide-induced cholestasis

Lipopolysaccharide (LPS) from Gram (-) bacteria induces inflammatory cholestasis by impairing the expression/localization of transporters involved in bile formation (e.g., Bsep, Mrp2). Therapeutic options for this disease are lacking. Ursodeoxycholic acid (UDCA) is the first choice therapy in cholestasis, but its anticholestatic efficacy in this hepatopathy remains to be evaluated. To asses it, male Wistar rats received UDCA for 5 days (25 mg/Kg/day, i.p.) with or without LPS, administered at 8 a.m. of the last 2 days (4 mg/Kg/day, i.p.), plus half of this dose at 8 p.m. of the last day. Then, plasma alkaline phosphatase (ALP), bile flow, basal and taurocholate-stimulated bile acid output, total glutathione output, and total/plasma membrane liver protein expression of Bsep and Mrp2 by confocal microscopy were assessed. mRNA levels of both transporters were assessed by Real-Time PCR. Plasma pro-inflammatory cytokines (IL-6 and TNF-α) were measured by ELISA. Our results showed that UDCA attenuated LPS-induced ALP plasma release and the impairment in the excretion of the Bsep substrate, taurocholate. This was associated with an improved Bsep expression at both mRNA and protein levels, and by an improved localization of Bsep in plasma membrane. UDCA failed to reduce the increase in plasma pro-inflammatory cytokines induced by LPS and Mrp2 expression/function. In conclusion, UDCA protects the hepatocyte against the damaging effect of bile acids accumulated by the LPS-induced secretory failure. This involved an enhanced synthesis of Bsep and an improved membrane stability of the newly synthesized transporters.Fil: Razori, María Valeria. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Centro Científico Tecnológico Conicet - Rosario. Instituto de Fisiología Experimental. Universidad Nacional de Rosario. Facultad de Ciencias Bioquímicas y Farmacéuticas. Instituto de Fisiología Experimental; ArgentinaFil: Maidagan, Paula María. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Centro Científico Tecnológico Conicet - Rosario. Instituto de Fisiología Experimental. Universidad Nacional de Rosario. Facultad de Ciencias Bioquímicas y Farmacéuticas. Instituto de Fisiología Experimental; ArgentinaFil: Ciriaci, Nadia. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Centro Científico Tecnológico Conicet - Rosario. Instituto de Fisiología Experimental. Universidad Nacional de Rosario. Facultad de Ciencias Bioquímicas y Farmacéuticas. Instituto de Fisiología Experimental; ArgentinaFil: Andermatten, Romina Belén. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Centro Científico Tecnológico Conicet - Rosario. Instituto de Fisiología Experimental. Universidad Nacional de Rosario. Facultad de Ciencias Bioquímicas y Farmacéuticas. Instituto de Fisiología Experimental; ArgentinaFil: Barosso, Ismael Ricardo. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Centro Científico Tecnológico Conicet - Rosario. Instituto de Fisiología Experimental. Universidad Nacional de Rosario. Facultad de Ciencias Bioquímicas y Farmacéuticas. Instituto de Fisiología Experimental; ArgentinaFil: Martín, Pamela Lucía. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Centro Científico Tecnológico Conicet - Rosario. Instituto de Fisiología Experimental. Universidad Nacional de Rosario. Facultad de Ciencias Bioquímicas y Farmacéuticas. Instituto de Fisiología Experimental; ArgentinaFil: Basiglio, Cecilia Lorena. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Centro Científico Tecnológico Conicet - Rosario. Instituto de Fisiología Experimental. Universidad Nacional de Rosario. Facultad de Ciencias Bioquímicas y Farmacéuticas. Instituto de Fisiología Experimental; ArgentinaFil: Sanchez Pozzi, Enrique Juan. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Centro Científico Tecnológico Conicet - Rosario. Instituto de Fisiología Experimental. Universidad Nacional de Rosario. Facultad de Ciencias Bioquímicas y Farmacéuticas. Instituto de Fisiología Experimental; ArgentinaFil: Ruiz, Maria Laura. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Centro Científico Tecnológico Conicet - Rosario. Instituto de Fisiología Experimental. Universidad Nacional de Rosario. Facultad de Ciencias Bioquímicas y Farmacéuticas. Instituto de Fisiología Experimental; ArgentinaFil: Roma, Marcelo Gabriel. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Centro Científico Tecnológico Conicet - Rosario. Instituto de Fisiología Experimental. Universidad Nacional de Rosario. Facultad de Ciencias Bioquímicas y Farmacéuticas. Instituto de Fisiología Experimental; Argentin

Role of ERK1/2 in TNFα-induced internalization of Abcc2 in rat hepatocyte couplets

TNFα is a cytokine whose levels are increased in inflammatory pathologies that are associated with cholestasis. Endocytic internalization of Abcc2 (multidrug resistance-associated protein 2), a canalicular transporter of organic anions that is implicated in the clearance of clinically important drugs, is a phenomenon that occurs in inflammatory liver diseases, and it has been established that cytokines act as mediators. However, the intracellular mechanism involved in this effect remains unknown. The aim of the present work was to characterize the internalization of Abcc2 induced by TNFα and to study the role of ERK1/2 and reactive oxygen species as signaling mediators of transporter internalization. Using rat hepatocyte couplets, we found that TNFα (6.25 pg/ml) induced a decrease in Abcc2 activity estimated by the accumulation of the Abcc2 substrate glutathione methylfluorescein in the canalicular vacuole that was accompanied by internalization of Abcc2 from the canalicular membrane. Inhibition of MEK1/2 (upstream of ERK1/2) partially prevented TNFα effects on Abcc2 internalization and activity impairment. Reactive oxygen species (ROS) scavengers such as vitamin C and mannitol partially prevented both TNFα-induced decrease in Abcc2 activity and ERK1/2 phosphorylation. Apocynin, a NADPH oxidase inhibitor, prevented the increase in ROS and the phosphorylation of ERK1/2 produced by TNFα. Taken together, these results indicate that TNFα activates a pathway involving NADPH oxidase, ROS and MEK1/2-ERK1/2 that is partially responsible for the internalization of Abcc2. This internalization leads to an altered transport activity of Abcc2 that could impair drug disposal, enhancing drug toxicity in patients suffering from inflammatory liver diseases.Fil: Ciriaci, Nadia. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Centro Científico Tecnológico Conicet - Rosario. Instituto de Fisiología Experimental. Universidad Nacional de Rosario. Facultad de Ciencias Bioquímicas y Farmacéuticas. Instituto de Fisiología Experimental; ArgentinaFil: Andermatten, Romina Belén. Universidad Nacional de Rosario; ArgentinaFil: Razori, María Valeria. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Centro Científico Tecnológico Conicet - Rosario. Instituto de Fisiología Experimental. Universidad Nacional de Rosario. Facultad de Ciencias Bioquímicas y Farmacéuticas. Instituto de Fisiología Experimental; ArgentinaFil: Schuck, Virginia. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Centro Científico Tecnológico Conicet - Rosario. Instituto de Fisiología Experimental. Universidad Nacional de Rosario. Facultad de Ciencias Bioquímicas y Farmacéuticas. Instituto de Fisiología Experimental; ArgentinaFil: Miszczuk, Gisel Sabrina. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Centro Científico Tecnológico Conicet - Rosario. Instituto de Fisiología Experimental. Universidad Nacional de Rosario. Facultad de Ciencias Bioquímicas y Farmacéuticas. Instituto de Fisiología Experimental; ArgentinaFil: Medeot, Anabela Carolina. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Centro Científico Tecnológico Conicet - Rosario. Instituto de Fisiología Experimental. Universidad Nacional de Rosario. Facultad de Ciencias Bioquímicas y Farmacéuticas. Instituto de Fisiología Experimental; ArgentinaFil: Crocenzi, Fernando Ariel. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Centro Científico Tecnológico Conicet - Rosario. Instituto de Fisiología Experimental. Universidad Nacional de Rosario. Facultad de Ciencias Bioquímicas y Farmacéuticas. Instituto de Fisiología Experimental; ArgentinaFil: Roma, Marcelo Gabriel. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Centro Científico Tecnológico Conicet - Rosario. Instituto de Fisiología Experimental. Universidad Nacional de Rosario. Facultad de Ciencias Bioquímicas y Farmacéuticas. Instituto de Fisiología Experimental; ArgentinaFil: Barosso, Ismael Ricardo. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Centro Científico Tecnológico Conicet - Rosario. Instituto de Fisiología Experimental. Universidad Nacional de Rosario. Facultad de Ciencias Bioquímicas y Farmacéuticas. Instituto de Fisiología Experimental; ArgentinaFil: Ruiz, Maria Laura. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Centro Científico Tecnológico Conicet - Rosario. Instituto de Fisiología Experimental. Universidad Nacional de Rosario. Facultad de Ciencias Bioquímicas y Farmacéuticas. Instituto de Fisiología Experimental; ArgentinaFil: Sanchez Pozzi, Enrique Juan. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Centro Científico Tecnológico Conicet - Rosario. Instituto de Fisiología Experimental. Universidad Nacional de Rosario. Facultad de Ciencias Bioquímicas y Farmacéuticas. Instituto de Fisiología Experimental; Argentin

Vías de señalización involucradas en la internalización de transportadores canaliculares en colestasis de origen intrahepática. Estudio de la sal biliar taurolitocolato

La sal biliar taurolitocolato (TLC) es un potente agente colestásico y su administración en ratas induce colestasis aguda y reversible. Un punto clave en la patogénesis de la colestasis inducida por TLC, es la internalización del transportador canalicular Mrp2 (proteína asociada a resistencia a multidrogas 2) hacia un compartimiento de reciclado endosomal. Hasta el momento, se han reportado diferentes proteínas de señalización intracelular mediando este proceso, tales como PI3K, PKCε y MARCKS; sin embargo, el receptor inicial de TLC sigue siendo desconocido. Unos pocos receptores acoplados a proteína G interactúan con las sales biliares en los hepatocitos, entre ellos, el receptor 2 de esfingosina 1-fosfato (S1PR2). En este trabajo de Tesis se postuló como hipótesis la participación de dicho receptor y sus posteriores efectores, adenilato ciclasa (AC) y PKA, en la internalización de Mrp2 inducida por TLC. Finalmente, se pretendió integrar las vías estudiadas con otras cascadas de señales involucradas en el proceso. En los modelos in vitro utilizados, el bloqueo de S1PR2, por inhibición con su antagonista o por knock-down con ARNi, previno parcialmente la disminución de la actividad de Mrp2 inducida por TLC. De la misma manera, la inhibición de AC y PKA en duplas de hepatocitos de rata, tuvo un efecto beneficioso sobre la alteración de la función de Mrp2. Además, los efectos preventivos de los inhibidores de AC y PKA no se sumaron con la protección del inhibidor de S1PR2, sugiriendo que todas estas proteínas forman parte de la misma vía de señalización. Este último supuesto, fue corroborado mediante western blot, donde el aumento de los niveles de sustratos fosforilados de PKA producidos por TLC fue impedido en presencia de los inhibidores de S1PR2, AC y PKA. Los hallazgos anteriores fueron validados en un modelo de mayor complejidad como es el hígado aislado y perfundido de rata. La administración de TLC provocó una disminución en el flujo biliar y en la excreción biliar de dinitrofenil-glutatión, sustrato de Mrp2. Los inhibidores de S1PR2 o AC no modificaron la caída inicial, pero aceleraron la recuperación de estos parámetros, indicando que la vía está involucrada en la prevención de la reinserción espontánea del transportador en la membrana canalicular. Los cambios en la función de transporte de Mrp2, en los modelos in vitro así como también en hígado aislado y perfundido, ocurrieron en paralelo con una modificación en la localización del transportador, el cual abandona la membrana canalicular hacia compartimentos endosomales. En todos los casos, en presencia de los inhibidores correspondientes, el fenómeno de desinserción dejó de ser visible en las imágenes de microscopía confocal. La vía dependiente de PI3K/Akt también fue evaluada. El bloqueo con sus respectivos inhibidores, previno parcialmente el daño funcional de Mrp2 inducido por la sal biliar en duplas. El tratamiento conjunto de estos inhibidores con el antagonista de S1PR2 no provocó efectos de sumación, conectando S1PR2/AC/PKA y PI3K/Akt en una misma vía de señalización. A su vez, TLC produjo aumento de fosforilación (activación) de Akt, lo que fue bloqueado por los inhibidores de S1PR2/AC/PKA, reafirmando la dependencia de PI3K/Akt con la vía caracterizada en este trabajo. Por otro lado, los resultados obtenidos por inhibición de p38 MAPK (recientemente reportada como blanco de TLC) in vitro, sugieren que esta proteína actúa en una ruta complementaria a S1PR2/AC/PKA/PI3K, debido a que los efectos protectores de los inhibidores se sumaron, si bien no alcanzaron juntos la protección total. En el modelo de hígado aislado y perfundido se determinó que p38 participa en la prevención de la reinserción del transportador ya que no evitó la caída del flujo biliar pero mejoró la recuperación del mismo, al igual que la vía S1PR2/AC/PKA. Es decir, p38 MAPK y S1PR2/AC/PKA participan en vías que no se vinculan con la desinserción sino con procesos que mantienen desinsertado al transportador. A partir de datos bibliográficos, se puede hipotetizar que la MAPK estaría implicada en un paso intermedio, actuando inmediatamente después de la endocitosis de Mrp2, mientras que la vía que termina en PI3K/Akt participaría frenando la reinserción del mismo desde los endosomas de reciclado a la membrana canalicular. En síntesis, la sal biliar TLC induce la internalización del transportador canalicular Mrp2 y la subsecuente colestasis, a través de mecanismos complementarios que dependen de la activación de un receptor inicial (S1PR2), seguido de cascadas de señales constituidas por AC/PKA, PI3K/Akt y p38 MAPK. El entendimiento de los mecanismos por los cuales ocurre el proceso colestásico contribuye al conocimiento de la fisiopatología de este síndrome e identifica blancos promisorios para nuevas estrategias terapéuticas .Fil: Andermatten, Romina Belén. Universidad Nacional de Rosario. Facultad de Ciencias Bioquímicas y Farmacéuticas; Argentin

β-Lactoglobulin heat-induced aggregates as carriers of polyunsaturated fatty acids

The aim of this work was to obtain heat-induced β-lactoglobulin (BLG) aggregates in order to test them as carriers of a model polyunsaturated fatty acid (PUFA), linoleic acid (LA). BLG aggregates were obtained at 85 °C by varying the heating time (0–60 min) and pH of protein dispersion (6.5–7.5). Aggregates were characterised by intrinsic and extrinsic fluorescence and surface hydrophobicity (S0). Binding experiments were conducted by fluorescence spectroscopy. Results showed increased BLG aggregate S0 values which could strongly depend on the pH of aggregate formation. Aggregates obtained at pH 6.5 showed the greatest S0 values, so they could find application as LA carriers. Nevertheless, conjugation of LA to BLG aggregates showed complex behaviour depending on the aggregate producing conditions (pH, heating time and/or combination). The LA binding properties of BLG aggregates were not linked to their hydrophobic characteristics, suggesting that conjugation could require the structural preservation of the LA binding site.Fil: Perez, Adrián Alejandro. Universidad Nacional del Litoral. Facultad de Ingeniería Química. Instituto de Tecnología de los Alimentos; Argentina. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Centro Científico Tecnológico Conicet - Santa Fe; ArgentinaFil: Andermatten, Romina Belén. Universidad Nacional del Litoral. Facultad de Ingeniería Química. Instituto de Tecnología de los Alimentos; Argentina. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Centro Científico Tecnológico Conicet - Santa Fe; ArgentinaFil: Rubiolo, Amelia Catalina. Universidad Nacional del Litoral. Facultad de Ingeniería Química. Instituto de Tecnología de los Alimentos; Argentina. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Centro Científico Tecnológico Conicet - Santa Fe; ArgentinaFil: Santiago, Liliana Gabriela. Universidad Nacional del Litoral. Facultad de Ingeniería Química. Instituto de Tecnología de los Alimentos; Argentina. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Centro Científico Tecnológico Conicet - Santa Fe; Argentin

Biopolymer nanoparticles designed for polyunsaturated fatty acid vehiculization: Protein-polysaccharide ratio study

Information about the design of biopolymer nanoparticles (BNPs) for polyunsaturated fatty acid (PUFA) vehiculization is provided. Linoleic acid (LA) was used as a model PUFA. The binding ability of LA to β-lactoglobulin (BLG) was applied for obtaining BLG-LA complexes. BLG-LA complex formation was monitored by fluorimetry and it was observed that a moderate heat treatment (60 °C, 10 min) enhanced BLG-LA complexation. Obtaining BNPs involved the electrostatic deposition of high methoxyl pectin (HMP) onto the BLG-LA complex surface. The phase behavior of biopolymer systems was discussed at different Prot:HMP ratio (RProt:HMP, wt.%) levels (1:1-6:1). Absorbance at 600 nm, particle size, and ζ potential were analyzed at pH 4.0. At 1:1-2:1 RProt:HMP, BNPs showed appreciable turbidity, a nanometric diameter (337-364 nm), and a negative ζ potential. Finally, intrinsic and extrinsic fluorimetry was used for examining the HMP protective role at the LA binding site. At 2:1 RProt:HMP, HMP cover could promote significant LA protection in BNPs.Fil: Perez, Adrián Alejandro. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas; Argentina. Universidad Nacional del Litoral. Facultad de Ingeniería Química. Instituto de Tecnología de los Alimentos; ArgentinaFil: Sponton, Osvaldo Ernesto. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas; Argentina. Universidad Nacional del Litoral. Facultad de Ingeniería Química. Instituto de Tecnología de los Alimentos; ArgentinaFil: Andermatten, Romina Belén. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas; Argentina. Universidad Nacional del Litoral. Facultad de Ingeniería Química. Instituto de Tecnología de los Alimentos; ArgentinaFil: Rubiolo, Amelia Catalina. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas; Argentina. Universidad Nacional del Litoral. Facultad de Ingeniería Química. Instituto de Tecnología de los Alimentos; ArgentinaFil: Santiago, Liliana Gabriela. Universidad Nacional del Litoral. Facultad de Ingeniería Química. Instituto de Tecnología de los Alimentos; Argentin

Activation of insulin-like growth factor 1 receptor participates downstream of GPR30 in estradiol-17β-d-glucuronide-induced cholestasis in rats

Estradiol-17β-d-glucuronide (E17G), through the activation of different signaling proteins, induces acute endocytic internalization of canalicular transporters in rat, including multidrug resistance-associated protein 2 (Abcc2) and bile salt export pump (Abcb11), generating cholestasis. Insulin-like growth factor 1 receptor (IGF-1R) is a membrane-bound tyrosine kinase receptor that can potentially interact with proteins activated by E17G. The aim of this study was to analyze the potential role of IGF-1R in the effects of E17G in isolated perfused rat liver (IPRL) and isolated rat hepatocyte couplets. In vitro, IGF-1R inhibition by tyrphostin AG1024 (TYR, 100 nM), or its knock-down with siRNA, strongly prevented E17G-induced impairment of Abcc2 and Abcb11 function and localization. The protection by TYR was not additive to that produced by wortmannin (PI3K inhibitor, 100 nM), and both protections share the same dependency on microtubule integrity, suggesting that IGF-1R shared the signaling pathway of PI3K/Akt. Further analysis of the activation of Akt and IGF-1R induced by E17G indicated a sequence of activation GPR30-IGF-1R-PI3K/Akt. In IPRL, an intraportal injection of E17G triggered endocytosis of Abcc2 and Abcb11, and this was accompanied by a sustained decrease in the bile flow and the biliary excretion of Abcc2 and Abcb11 substrates. TYR did not prevent the initial decay, but it greatly accelerated the recovery to normality of these parameters and the reinsertion of transporters into the canalicular membrane. In conclusion, the activation of IGF-1R is a key factor in the alteration of canalicular transporter function and localization induced by E17G, and its activation follows that of GPR30 and precedes that of PI3K/Akt.Fil: Barosso, Ismael Ricardo. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Centro Científico Tecnológico Conicet - Rosario. Instituto de Fisiología Experimental. Universidad Nacional de Rosario. Facultad de Ciencias Bioquímicas y Farmacéuticas. Instituto de Fisiología Experimental; ArgentinaFil: Miszczuk, Gisel Sabrina. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Centro Científico Tecnológico Conicet - Rosario. Instituto de Fisiología Experimental. Universidad Nacional de Rosario. Facultad de Ciencias Bioquímicas y Farmacéuticas. Instituto de Fisiología Experimental; ArgentinaFil: Ciriaci, Nadia. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Centro Científico Tecnológico Conicet - Rosario. Instituto de Fisiología Experimental. Universidad Nacional de Rosario. Facultad de Ciencias Bioquímicas y Farmacéuticas. Instituto de Fisiología Experimental; ArgentinaFil: Andermatten, Romina Belén. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Centro Científico Tecnológico Conicet - Rosario. Instituto de Fisiología Experimental. Universidad Nacional de Rosario. Facultad de Ciencias Bioquímicas y Farmacéuticas. Instituto de Fisiología Experimental; ArgentinaFil: Maidagan, Paula María. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Centro Científico Tecnológico Conicet - Rosario. Instituto de Fisiología Experimental. Universidad Nacional de Rosario. Facultad de Ciencias Bioquímicas y Farmacéuticas. Instituto de Fisiología Experimental; ArgentinaFil: Razori, María Valeria. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Centro Científico Tecnológico Conicet - Rosario. Instituto de Fisiología Experimental. Universidad Nacional de Rosario. Facultad de Ciencias Bioquímicas y Farmacéuticas. Instituto de Fisiología Experimental; ArgentinaFil: Taborda, Diego Ramon. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Centro Científico Tecnológico Conicet - Rosario. Instituto de Fisiología Experimental. Universidad Nacional de Rosario. Facultad de Ciencias Bioquímicas y Farmacéuticas. Instituto de Fisiología Experimental; ArgentinaFil: Roma, Marcelo Gabriel. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Centro Científico Tecnológico Conicet - Rosario. Instituto de Fisiología Experimental. Universidad Nacional de Rosario. Facultad de Ciencias Bioquímicas y Farmacéuticas. Instituto de Fisiología Experimental; ArgentinaFil: Crocenzi, Fernando Ariel. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Centro Científico Tecnológico Conicet - Rosario. Instituto de Fisiología Experimental. Universidad Nacional de Rosario. Facultad de Ciencias Bioquímicas y Farmacéuticas. Instituto de Fisiología Experimental; ArgentinaFil: Sanchez Pozzi, Enrique Juan. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Centro Científico Tecnológico Conicet - Rosario. Instituto de Fisiología Experimental. Universidad Nacional de Rosario. Facultad de Ciencias Bioquímicas y Farmacéuticas. Instituto de Fisiología Experimental; Argentin

Sphingosine 1-phosphate receptor 2/adenylyl cyclase/protein kinase A pathway is involved in taurolithocholate-induced internalization of Abcc2 in rats

Taurolithocholate (TLC) is a cholestatic bile salt that induces disinsertion of the canalicular transporter Abcc2 (Mrp2, multidrug resistance-associated protein 2). This internalization is mediated by different intracellular signaling proteins such as PI3K, PKCε and MARCK but the initial receptor of TLC remains unknown. A few G protein-coupled receptors interact with bile salts in hepatocytes. Among them, sphingosine-1 phosphate receptor 2 (S1PR2) represents a potential initial receptor for TLC. The aim of this study was to evaluate the role of this receptor and its downstream effectors in the impairment of Abcc2 function induced by TLC. In vitro, S1PR2 inhibition by JTE-013 or its knockdown by small interfering RNA partially prevented the decrease in Abcc2 activity induced by TLC. Moreover, adenylyl cyclase (AC)/PKA and PI3K/Akt inhibition partially prevented TLC effect on canalicular transporter function. TLC produced PKA and Akt activation, which were blocked by JTE-013 and AC inhibitors, connecting S1PR2/AC/PKA and PI3K/Akt in a same pathway. In isolated perfused rat liver, injection of TLC triggered endocytosis of Abcc2 that was accompanied by a sustained decrease in the bile flow and the biliary excretion of the Abcc2 substrate dinitrophenyl-glutathione until the end of the perfusion period. S1PR2 or AC inhibition did not prevent the initial decay, but they accelerated the recovery of these parameters and the reinsertion of Abcc2 into the canalicular membrane. In conclusion, S1PR2 and the subsequent activation of AC, PKA, PI3K and Akt is partially responsible for the cholestatic effects of TLC through sustained internalization of Abcc2.Fil: Andermatten, Romina Belén. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Centro Científico Tecnológico Conicet - Rosario. Instituto de Fisiología Experimental. Universidad Nacional de Rosario. Facultad de Ciencias Bioquímicas y Farmacéuticas. Instituto de Fisiología Experimental; ArgentinaFil: Ciriaci, Nadia. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Centro Científico Tecnológico Conicet - Rosario. Instituto de Fisiología Experimental. Universidad Nacional de Rosario. Facultad de Ciencias Bioquímicas y Farmacéuticas. Instituto de Fisiología Experimental; ArgentinaFil: Schuck, Virginia. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Centro Científico Tecnológico Conicet - Rosario. Instituto de Fisiología Experimental. Universidad Nacional de Rosario. Facultad de Ciencias Bioquímicas y Farmacéuticas. Instituto de Fisiología Experimental; ArgentinaFil: Di Siervi, Nicolás. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Houssay. Instituto de Investigaciones Farmacológicas. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Instituto de Investigaciones Farmacológicas; ArgentinaFil: Razori, María Valeria. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Houssay. Instituto de Investigaciones Farmacológicas. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Instituto de Investigaciones Farmacológicas; ArgentinaFil: Miszczuk, Gisel Sabrina. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Centro Científico Tecnológico Conicet - Rosario. Instituto de Fisiología Experimental. Universidad Nacional de Rosario. Facultad de Ciencias Bioquímicas y Farmacéuticas. Instituto de Fisiología Experimental; ArgentinaFil: Medeot, Anabela Carolina. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Centro Científico Tecnológico Conicet - Rosario. Instituto de Fisiología Experimental. Universidad Nacional de Rosario. Facultad de Ciencias Bioquímicas y Farmacéuticas. Instituto de Fisiología Experimental; ArgentinaFil: Davio, Carlos Alberto. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Houssay. Instituto de Investigaciones Farmacológicas. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Instituto de Investigaciones Farmacológicas; ArgentinaFil: Crocenzi, Fernando Ariel. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Houssay. Instituto de Investigaciones Farmacológicas. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Instituto de Investigaciones Farmacológicas; ArgentinaFil: Roma, Marcelo Gabriel. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Centro Científico Tecnológico Conicet - Rosario. Instituto de Fisiología Experimental. Universidad Nacional de Rosario. Facultad de Ciencias Bioquímicas y Farmacéuticas. Instituto de Fisiología Experimental; ArgentinaFil: Barosso, Ismael Ricardo. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Centro Científico Tecnológico Conicet - Rosario. Instituto de Fisiología Experimental. Universidad Nacional de Rosario. Facultad de Ciencias Bioquímicas y Farmacéuticas. Instituto de Fisiología Experimental; ArgentinaFil: Sanchez Pozzi, Enrique Juan. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Centro Científico Tecnológico Conicet - Rosario. Instituto de Fisiología Experimental. Universidad Nacional de Rosario. Facultad de Ciencias Bioquímicas y Farmacéuticas. Instituto de Fisiología Experimental; Argentin