73 research outputs found

    Correlação fenotípica das características peso, perímetro torácico e altura ao garrote em cavalos Puro-sangue Lusitano

    Get PDF
    Comunicação em painelO objetivo deste estudo foi avaliar a existência de correlações entre as características fenotípicas: peso vivo obtido em balança digital de equinos (BD), perímetro torácico (PT) e altura ao garrote (AG) de cavalos Puro-Sangue Lusitano (PSL). Dado ser comum a utilização destas medidas (PT e AG) para estimar um peso aproximado, por intermédio de várias fórmulas de cálculo. Para o efeito foram avaliados 41 cavalos de raça PSL (todos machos inteiros), com idades entre os 3 e os 21 anos. Os animais foram pesados numa BD (erro 0,5 kg), a AG (cm) foi medida com hipómetro e o PT (cm) com fita métrica (FM). Os dados apresentaram uma distribuição não paramétrica, tendo sido calculados os coeficientes de correlação de Spearman. Os resultados indicaram uma correlação elevada entre o peso obtido por BD e a medida PT (r=0,916; p<0,05), sendo reduzido o intervalo de confiança bilateral a 95% (IC95%) com 0,829 a 0,960, indicando claramente que uma variação no peso ou medida PT vai fazer variar o valor do outro. Foi observada uma correlação moderada do peso BD com a AG (r=0,467; p<0,05) e elevado IC95% (0,170 a 0,687), sugerindo que o facto de o cavalo aumentar o peso ou altura, nem sempre vai alterar o outro valor. Relação semelhante, foi observada entre as medidas PT e AG (r=0,459; p<0,05) com elevado IC95% (0,160 a 0,680). Os resultados sugerem que o peso vivo dos cavalos PSL avaliados está fortemente correlacionado com o PT e que existe uma elevada variação com a AG. O estudo sugere que a utilização de fórmulas de cálculo para obter um peso aproximado em machos da raça PSL, deve ser desenvolvida por intermédio da medida perímetro torácico.info:eu-repo/semantics/publishedVersio

    Comparação do peso vivo de cavalos Lusitanos obtido por meio de balança digital e de medidas corporais

    Get PDF
    Apresentação oralO objetivo deste estudo foi comparar o peso de cavalos Puro-Sangue Lusitano (PSL) obtido em balança digital (BD) e o estimado a partir de medidas corporais com fita métrica (FM), por meio de dois cálculos distintos. Foram avaliados 41 cavalos da raça PSL (todos machos inteiros), com idades entre os 3 e 21 anos, distribuídos em 2 grupos de idades: 23 animais com 3-5 anos (Aate5a) e 18 animais com 6 ou mais anos (A+6a). Os cavalos foram pesados numa BD (erro 0,5 kg), tendo sido medidos no mesmo momento, a altura ao garrote (AG) com hipómetro e o perímetro torácico (PT) em metros e centímetros com FM. Para cada animal, foram estimados dois pesos a partir de fórmulas existentes na literatura: pesoAf1 = PT3 x 80 (PT em metros, McManus, et al., 2005); pesoAf2 = (4,3 x PT) + (3 x AG) – 785 (PT e AG em cm, INRA, 1990). Os pesos médios obtidos na BD foram 481,2±38,8 kg, pAf1 477,2±47,0 kg e pAf2 473,8±33,4 kg para o grupo Aate5a sendo que, não foram observadas diferenças significativas entre as médias dos pesos obtidos por BD e os estimados por pesoAf1. Verificaram-se diferenças entre os pesos BD e os pesoAf2 (p<0.05). Observaram-se diferenças significativas entre os pesos BD do grupo A+6a (535,9±53,3 kg) e os pesos estimados a partir das duas fórmulas (pesoAf1: 550,9±61,8 kg; pesoAf2: 517,3±38,9 kg) (p<0,05). Os resultados sugerem que o peso dos cavalos estimado a partir de medidas corporais com FM, não é muito preciso em animais adultos. Por sua vez, valores próximos (pesoAf1) ao peso obtido por BD, sugerem a sua possível utilização nos animais entre três e cinco anos de idade. Contudo, o valor mais exato do peso vivo de cada equino, deve, tanto quanto possível ser determinado em balança digital.info:eu-repo/semantics/publishedVersio

    Modulation Of The Catalytic Activity Of Porphyrins By Lipid- And Surfactant-containing Nanostructures

    Get PDF
    The structural factors modulating porphyrin activity encompass pyrrole and equatorial ligands, as well as the central metal and the number and structure of their axial ligands. Of equal importance is the microenvironment provided by apoproteins, solvents and membranes. Porphyrins are often used to construct supramolecular structures with different applications. The modulation of activity of the porphyrins has been frequently achieved by mimicking nature, i.e., by the provision of different microenvironments for these molecules. The association of porphyrins to surfactant- and lipid-containing nanostructures has changed the activity of these compounds to mimic different enzymes such as SOD, cytochrome P450, peroxidases and others. In determined conditions, the reactive forms of the porphyrins are high-valence states of oxo-metal-π cations and oxo-metal produced by the reaction with peroxides and peracids. The modulation of porphyrin activity by surfactant- and lipid-containing nanostructures has also been achieved for hemeproteins, as the lipid nanostructures affect the conformation of proteins. ©2011 Sociedade Brasileira de Química.22916211633Drain, C.M., Varotto, A., Radivojevic, I., (2009) Chem. Rev., 109, p. 1630Aida, T., Inoue, S., (2000) The Porphyrin Handbook, , Kadish, K., M. Smith, K., M. Guillard R., eds.Academic Press: San Diego ch. 42Ponka, P., (1999) Am. J. Med. Sci., 318, p. 241Da Silva, D.C., De Freitas-Silva, G., Do Nascimento, E., Rebouças, J.S., Barbeira, P.J., De Carvalho, M.E., Idemori, Y.M., (2008) J. Inorg. Biochem., 102, p. 1932Bochot, C., Bartoli, J.F., Frapart, Y., Dansette, P.M., Mansuy, D., Battioni, P., (2007) J. Mol. Catal. A.: Chem., 263, p. 200Alkordi, M.H., Liu, Y.L., Larsen, R.W., Eubank, J.F., Eddaoudi, M., (2008) J. Am. Chem. Soc., 130, p. 12639Suijkerbuijk, B., Schamhart, D.J., Kooijman, H., Spek, A.L., Van Koten, G., Gebbink, R., (2010) Dalton Trans., 39, p. 6198Groves, J.T., Nemo, T.E., (1983) J. Am. Chem. Soc., 10, p. 5786Drain, C.M., Smeureanu, G., Patel, S., Gong, X.C., Garno, J.A., (2006) New. J. Chem., 30, p. 1834Wang, Y.T., Jin, W.J., (2008) Spectrochim. Acta, Part A., 70, p. 871Komatsu, T., Moritake, W., Nakagawa, A., Tsuchida, E., (2002) Chem. - Eur. J., 8, p. 5469Nagami, H., Umakoshi, H., Shimanouchi, T., Kuboi, R., (2004) Biochem. Eng. J., 21, p. 221Szoka, F., Papahadjopoulos, D., (1980) Annu. Rev. Biophys. Bioeng., 9, p. 467Atkin, R., Craig, V.S.J., Wanless, E.J., Biggs, S., (2003) Adv. Colloid Interface Sci., 103, p. 219Grassert, I., Schinkowski, K., Vollhardt, D., Oehme, G., (1998) Chirality, 10, p. 754Hait, S.K., Moulik, S.P., (2001) J. Surfactants Deterg., 4, p. 303Glick, J., Santoyo, G., Casey, P.J., (1996) J. Biol. Chem., 271, p. 2949Maldotti, A., Andreotti, L., Molinari, A., Varani, G., Cerichelli, G., Chiarini, M., (2001) Green Chem., 3, p. 42Batrakova, E.V., Kabanov, A.V., (2008) J. Controlled Release, 130, p. 98Bangham, A.D., Standish, M.M., Watkins, J.C., (1965) J. Mol. Biol., 13, p. 238Johnson, S.M., Bangham, A.D., Hill, M.W., Korn, E.D., (1971) Biochim. Biophys. Acta. Biomembr., 233, p. 820Papahadj, D., Watkins, J.C., (1967) Biochim. Biophys. Acta, Biomembr., 135, p. 639Abramson, M.B., Katzman, R., Gregor, H.P., (1964) J. Biol. Chem., 239, p. 70Hauser, H.O., (1971) Biochem. Biophys. Res. Commun., 45, p. 1049Huang, C.H., (1969) Biochemistry, 8, p. 344Saunders, L., Gammack, D., Perrin, J., (1962) J. Pharm. Pharmacol., 14, p. 567Tien, H.T., (1974) Theory and Practice, , 1th ed.Bilayer Lipid Membranes (BLM): Marcel Dekker: New YorkRazin, S., (1972) Biochim. Biophys. Acta, Biomembr., 265, p. 241Korenbrot, J.I., (1977) Annu. Rev. Physiol., 39, p. 19Batzri, S., Korn, E.D., (1973) Biochim. Biophys. Acta, Biomembr., 298, p. 1015Deamer, D., Bangham, A.D., (1976) Biochim. Biophys. Acta, Biomembr., 443, p. 629Szoka, F., Papahadjopoulos, D., (1978) Proc. Natl. Acad. Sci. U. S. A., 75, p. 4194Mishra, P.P., Bhatnagar, J., Datta, A., (2005) J. Phys. Chem. B., 109, p. 24225Pessoto, F.S., Inada, N.M., Nepomuceno, M.D., Ruggiero, A.C., Nascimento, O.R., Vercesi, A.E., Nantes, I.L., (2009) Chem. Biol. Interact., 181, p. 400Steinbeck, C.A., Hedin, N., Chmelka, B.F., (2004) Langmuir, 20, p. 10399Vanesch, J.H., Feiters, M.C., Peters, A.M., Nolte, R.J.M., (1994) J. Phys. Chem., 98, p. 5541Barber, D.C., Freitagbeeston, R.A., Whitten, D.G., (1991) J. Phys. Chem., 95, p. 4074Maiti, N.C., Mazumdar, S., Periasamy, N.J., (1998) J. Porphyrins Phthalocyanines, 2, p. 369Schmehl, R.H., Whitten, D.G., (1981) J. Phys. Chem., 85, p. 3473Perrin, M.H., (1973) J. Chem. Phys., 59, p. 2090Zhou, X.T., Ji, H.B., (2010) Chem. Eng. J., 156, p. 411Monnereau, C., Ramos, P.H., Deutman, A.B.C., Elemans, J., Nolte, R.J.M., Rowan, A.E., (2010) J. Am. Chem. Soc., 132, p. 1529Merlau, M.L., Grande, W.J., Nguyen, S.T., Hupp, J.T., (2000) J. Mol. Catal. A: Chem., 156, p. 79Anzenbacher, P., Kral, V., Jursikova, K., Gunterova, J., Kasal, A., (1997) J. Mol. Catal. A: Chem., 118, p. 63Zhao, Y.C., Xiang, Y.Z., Pu, L., Yang, M., Yu, X.Q., (2006) Appl. Catal. A, 301, p. 176Zhou, X.T., Tang, Q.H., Ji, H.B., (2009) Tetrahedron Lett., 50, p. 6601Monfared, H.H., Aghapoor, V., Ghorbanloo, M., Mayer, P., (2010) Appl. Catal. A, 372, p. 209Heijnen, J.H.M., De Bruijn, V.G., Van Den Broeke, L.J.P., Keurentjes, J.T.F., (2003) Chem. Eng. Process., 42, p. 223Santos, A.C., Luz, R.A.S., Ferreira, L.G.F., Santos-Júnior, J.R., Silva, W.C., (2010) Quim. Nova, 33, p. 539Zhou, Y.B., Ryu, E.H., Zhao, Y., Woo, L.K., (2007) Organometallics, 26, p. 358Nantes, I.L., Crespilho, F.N., Mugnol, K.C.U., Chaves, J.C.A., Luz, R.A.S., Nascimento, O.R., Pinto, S.M.S., (2010) Circular Dichroism: Theory and Spectroscopy, , Rodgers D. S., ed.Nova Science Publishers: New York ch. 8Travascio, P., Sen, D., Bennet, A.J., (2006) Can. J. Chem., 84, p. 613Omodeo-Sale, F., Monti, D., Olliaro, P., Taramelli, D.P., (2001) Biochem. Pharmacol., 61, p. 999Ishigure, S., Mitsui, T., Ito, S., Kondo, Y., Kawabe, S., Kondo Dewa M, T., Mino, H., Nango, M., (2010) Langmuir, 26, p. 7774Umakoshi, H., Morimoto, K., Ohama, Y., Nagami, H., Shimanouchi, T., Kuboi, R., (2008) Langmuir, 24, p. 4451Prieto, T., Marcon, R.O., Prado, F.M., Caires, A.C.F., Di Mascio, P., Brochsztain, S., Nascimento, O.R., Nantes, I.L., (2006) J. Phys.Chem., 8, p. 1963Mugnol, K.C.U., Ando, R.A., Nagayasu, R.Y., Faljoni-Alario, A., Brochsztain, S., Santos, P.S., Nascimento, R.O., Nantes, I.L., (2008) Biophys. J., 94, p. 4066Nagatomo, H., Matsushita, Y., Sugamoto, K., Matsui, T., (2003) Tetrahedron: Asymmetry, 14, p. 2339Cantonetti, V., Monti, D., Venanzi, M., Bombelli, C., Ceccacci, F., Mancini, G., (2004) Tetrahedron: Asymmetry, 15, p. 1969Hiraka, K., Kanehisa, M., Tamai, M., Asayama, S., Nagaoka, S., Oyaizu, K., Yuasa, M., Kawakami, H., (2008) Colloids Surf. B, 67, p. 54Yuasa, M., Oyaizu, K., Horiuchi, A., Ogata, A., Hatsugai, T., Yamaguchi, A., Kawakami, H., (2004) Mol. Pharm., 1, p. 387Aron, J., Baldwin, D.A., Marques, H.M., Pratt, J.M., Adams, P.A., (1986) J. Inorg. Biochem., 27, p. 227Wang, J.S., Vanwart, H.E., (1989) J. Phys. Chem., 93, p. 7925Munro, O.Q., Marques, H.M., (1996) Inorg. Chem., 35, p. 3752Prieto, T., Nascimento, O.R., Tersariol, I.L.S., Faljoni-Alario, A., Nantes, I.L., (2004) J. Phys. Chem. B, 108, p. 11124Prieto, T., Nantes, I.L., Nascimento, O.R., (2004) Prog. Colloid Polym. Sci., 128, p. 1Makarska, M., Radzki, S., Legendziewicz, J., (2002) J. Alloys Compd., 341, p. 233Riposati, A., Prieto, T., Shida, C.S., Nantes, I.L., Nascimento, O.R., (2006) J. Inorg. Biochem., 100, p. 226Claiborne, A., Fridovich, I., (1979) J. Biol. Chem., 254, p. 4245Hiner, A.N.P., Ruiz, J.H., Lopez, J.N.R., Canovas, F.G., Brisset, N.C., Smith, A.T., Arnao, M.B., Acosta, M., (2002) J. Biol. Chem., 277, p. 26879Primus, J.L., Grunenwald, S., Hagedoorn, P.L., Albrecht-Gary, A.M., Mandon, D., Veeger, C.T., (2002) J. Am. Chem. Soc., 124, p. 1214Demontellano, P.R.O., (1992) Annu. Rev. Pharmacol. Toxicol., 32, p. 89Savenkova, M.I., Kuo, J.M., De Montellano, P.R.O., (1998) Biochemistry, 37, p. 10828Smith, A.T., Veitch, N.C., (1998) Curr. Opin. Chem. Biol., 2, p. 269Prieto, T., Mugnol, K.C.U., Araujo, J.C., Sousa, F.L., Soares, V.A., Cilento, G., Nantes, I.L., (2007) Catalysis and Photochemistry in Heterogeneous Media, , Nantes I. L.Brochesztain, S. eds.Research Signpost: Kerala ch. 1Zucchi, M.R., Nascimento, O.R., Faljoni-Alario, A., Prieto, T., Nantes, I.L., (2003) Biochem. J., 370, p. 671Kinnunen, P.K.J., (1992) Chem. Phys. Lipids, 63, p. 251Kawai, C., Prado, F.M., Nunes, G.L.C., Di Mascio, P., Carmona-Ribeiro, A.M., Nantes, I.L., (2005) J. Biol. Chem., 280, p. 34709Araujo, J.C., Prieto, T., Prado, F.M., Trindade, F.J., Nunes, G.L.C., Dos Santos, J.G., Di Masco, P., Nantes, I.L., (2007) J. Nanosci. Nanotechnol., 7, p. 3643Estevam, M.L., Nascimento, O.R., Baptista, M.S., Di Mascio, P., Prado, F.M., Faljoni-Alario, A., Zucchi, M.D., Nantes, I.L., (2004) J. Biol. Chem., 279, p. 39214Kawai, C., Nantes, I.L., Baptista, M.D.S., (2010) FEBS J., 277, p. 224Nantes, I.L., Faljoni-Alario, A., Vercesi, A.E., Santos, K.E., Bechara, E.J.H., (1998) Free Radic. Biol. Med., 25, p. 54

    Thimet oligopeptidase (EC 3.4.24.15) key functions suggested by knockout mice phenotype characterization

    Get PDF
    Thimet oligopeptidase (THOP1) is thought to be involved in neuropeptide metabolism, antigen presentation, neurodegeneration, and cancer. Herein, the generation of THOP1 C57BL/6 knockout mice (THOP1(-/-)) is described showing that they are viable, have estrus cycle, fertility, and a number of puppies per litter similar to C57BL/6 wild type mice (WT). In specific brain regions, THOP1(-/-) exhibit altered mRNA expression of proteasome beta5, serotonin 5HT2a receptor and dopamine D2 receptor, but not of neurolysin (NLN). Peptidomic analysis identifies differences in intracellular peptide ratios between THOP1(-/-) and WT mice, which may affect normal cellular functioning. In an experimental model of multiple sclerosis THOP1(-/-) mice present worse clinical behavior scores compared to WT mice, corroborating its possible involvement in neurodegenerative diseases. THOP1(-/-) mice also exhibit better survival and improved behavior in a sepsis model, but also a greater peripheral pain sensitivity measured in the hot plate test after bradykinin administration in the paw. THOP1(-/-) mice show depressive-like behavior, as well as attention and memory retention deficits. Altogether, these results reveal a role of THOP1 on specific behaviors, immune-stimulated neurodegeneration, and infection-induced inflammation
    • …
    corecore