3 research outputs found

    Natural Plasmodium infections in Brazilian wild monkeys: reservoirs for human infections?

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    Secretaria de Estado da Saúde. Superintendência de Controle de Endemias. Laboratório de Bioquímica e Biologia Molecular. São Paulo, SP, Brasil.Universidade de São Paulo. Instituto de Medicina Tropical de São Paulo. Laboratório de Protozoologia. São Paulo, SP, Brasil / Universidade de São Paulo. Faculdade de Medicina. Departamento de Doenças Infecciosas e Parasitárias. São Paulo, SP, Brasil.Universidade Federal do Espírito Santo. Departamento de Medicina Social. Centro de Ciência da Saúde. Unidade de Medicina Tropical. Vitória, ES, Brasil.Secretaria de Estado da Saúde. Superintendência de Controle de Endemias. Laboratório de Bioquímica e Biologia Molecular. São Paulo, SP, Brasil.Universidade de São Paulo. Instituto de Medicina Tropical de São Paulo. Laboratório de Protozoologia. São Paulo, SP, Brasil / Universidade de São Paulo. Instituto de Ciências Biomédicas. São Paulo, SP, Brasil.Universidade de São Paulo. Instituto de Medicina Tropical de São Paulo. Laboratório de Protozoologia. São Paulo, SP, Brasil / Universidade de São Paulo. Faculdade de Medicina. Departamento de Doenças Infecciosas e Parasitárias. São Paulo, SP, Brasil.Universidade de São Paulo. Instituto de Medicina Tropical de São Paulo. Laboratório de Protozoologia. São Paulo, SP, Brasil / Universidade de São Paulo. Faculdade de Medicina. Departamento de Doenças Infecciosas e Parasitárias. São Paulo, SP, Brasil.Prefeitura do Município de São Paulo. Secretaria do Verde e do Meio Ambiente. Departamento de Parques e Áreas Verdes. São Paulo, SP, Brasil.Prefeitura do Município de São Paulo. Secretaria do Verde e do Meio Ambiente. Departamento de Parques e Áreas Verdes. São Paulo, SP, Brasil.Ministério da Saúde. Secretaria de Vigilância em Saúde. Instituto Evandro Chagas. Belém, PA, Brasil.Universidade de São Paulo. Faculdade de Saúde Pública. Departamento de Epidemiologia. São Paulo, SP, Brasil.Four hundred and forty-eight samples of total blood from wild monkeys living in areas where human autochthonous malaria cases have been reported were screened for the presence of Plasmodium using microscopy and PCR analysis. Samples came from the following distinct ecological areas of Brazil: Atlantic forest (N = 140), semideciduous Atlantic forest (N = 257) and Cerrado (a savannah-like habitat) (N = 51). Thick and thin blood smears of each specimen were examined and Plasmodium infection was screened by multiplex polymerase chain reaction (multiplex PCR). The frequency of Plasmodium infections detected by PCR in Alouatta guariba clamitans in the São Paulo Atlantic forest was 11.3% or 8/71 (5.6% for Plasmodium malariae and 5.6% for Plasmodium vivax) and one specimen was positive for Plasmodium falciparum (1.4%); Callithrix sp. (N = 30) and Cebus apella (N = 39) specimens were negative by PCR tests. Microscopy analysis was negative for all specimens from the Atlantic forest. The positivity rate for Alouatta caraya from semideciduous Atlantic forest was 6.8% (16/235) in the PCR tests (5.5, 0.8 and 0.4% for P. malariae, P. falciparum and P. vivax, respectively), while C. apella specimens were negative. Parasitological examination of the samples using thick smears revealed Plasmodium sp. infections in only seven specimens, which had few parasites (3.0%). Monkeys from the Cerrado (a savannah-like habitat) (42 specimens of A. caraya, 5 of Callithrix jacchus and 4 of C. apella) were negative in both tests. The parasitological prevalence of P. vivax and P. malariae in wild monkeys from Atlantic forest and semideciduous Atlantic forest and the finding of a positive result for P. falciparum in Alouatta from both types of forest support the hypothesis that monkeys belonging to this genus could be a potential reservoir. Furthermore, these findings raise the question of the relationship between simian and autochthonous human malaria in extra-Amazonian regions

    Rate-complexity-distortion optimization for hybrid video coding

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    O objetivo deste estudo foi de determinar a ocorrência de Sarcocystis spp. em D. albiventris e D. aurita em três regiões do Estado de São Paulo. Para tal, utilizou-se noventa e oito Didelphis mortos, sendo 66 D. aurita e 32 D. albiventris, e também 28 D. aurita e cinco D. albiventris vivos. O método de centrífugo-flutuação em solução de sacarose foi empregado para isolamento dos oocistos/esporocistos de Sarcocystis spp. do intestino delgado e das fezes. Encontrou-se Sarcocystis spp. no intestino delgado de 9,1% dos D. aurita (6/66), sendo que quatro destes também houve positividade nas fezes. Não houve diferença estatística significativa entre machos e fêmeas positivos (P= 0,522), e entre os positivos de diferentes origens do Estado de São Paulo (P= 0,627), quanto a ocorrência de Sarcocystis spp. Entretanto, houve diferença estatística significativa entre animais de vida livre e de cativeiro (P = 0.009), sendo que somente os de vida livre foram positivos. Entre adultos e filhotes positivos também houve diferença (P= 0,004), sendo os adultos mais parasitados que os filhotes. Das amostras provenientes dos 28 D. aurita vivos, encontrou-se Sarcocystis spp. em 7.1% (2/28) deles. Dos 32 D. albiventris, todos foram negativos para Sarcocystis spp. nas amostras de intestino delgado e fezes. Os cincos D. albiventris vivos também foram negativos. Sendo assim, pode-se observar que a ocorrência de Sarcocystis spp. em D. aurita e D. albiventris nestas três regiões do Estado de São Paulo é baixa para estas condições analisadasThe objective of this study was to determine the occurrence of Sarcocystis spp. in Didelphis albiventris and D. aurita in three regions of the state of São Paulo. Ninety-eight dead Didelphis were employed in this study, among which 66 were D. aurita and 32 D. albiventris. Twenty-eight living D. aurita and five D. albiventris were also analyzed. Flotation-centrifugation in sucrose solution was used in the isolation of Sarcocystis spp. of the small intestine and feces. Sarcocystis spp. was found in the small intestines of 9.1% of the D. aurita (6/66); in four of them, the feces were also positives. There was no statistically significant difference between males and females (P= 0,522), or among samples that came from different regions of the state of São Paulo (P= 0,627), regarding the occurrence of Sarcocystis spp. However, there was a significant difference of positive samples harvested from captive compared to free-ranging animals (P = 0.009), and between adults and offspring (P= 0,004). Adults were more affected by the parasite than the offspring, and only free-ranging animals were positives. From the samples collected from 28 living D. aurita, Sarcocystis spp. was found in 7.1% (2/28) of them. A total of 32 D. albiventris were studied, none of which had positive tests for Sarcocystis spp. in samples of intestine of feces, and five animals live were also negative. We conclude that the occurrence of Sarcocystis spp. in D. aurita and D. albiventris in these three regions of the state of São Paulo is low in the conditions assessed in this stud
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