Duas novas esp\ue9cies de Alstroemeria L. (Alstroemeriaceae) para o Brasil

São descritas duas novas espécies de Alstroemeria L. para o Brasil: A. amabilis do Paraná e Santa Catarina e A. capixaba do Espírito Santo. São apresentadas descrições, comentários e ilustrações das espécies

New Species of Alstroemeria (Alstroemeriaceae) from Brazil

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ALSTROEMERIACEAE NO ESTADO DO RIO DE JANEIRO

RESUMO Neste trabalho são apresentadas as espécies de Alstroemeriaceae do estado do Rio de Janeiro, Brasil. A família e representada na área pelo gênero Alstroemeria, incluindo cinco espécies: A. caryophyllaea Jacq., A. cunha Vell., A. foliosa Mart. ex Schult. & Schult. f., A. isabelleana Herb., A. radula Dusén e pelo gênero Bomarea incluindo apenas a especie B. edulis (Tussac) Herb. Novas sinonimizações, chaves de identificação, descriçãoao das espécies, ilustrações e comentários são aqui apresentados

Alstroemeriaceae na Região Sul do Brasil

Alstroemeriaceae compreende ervas perenes eretas ou volúveis, rizomatosas de folhas geralmente ressupinadas. É encontrada em quase todos os tipos de hábitats, de florestas a brejos e até desertos. A família está representada na Região Sul do Brasil pelo gênero Alstroemeria L., incluindo 9 espécies: Alstroemeria albescens M.C.Assis, A. amabilis M.C.Assis, A. apertiflora Baker, A. cunha Vell., A. inodora Herb., A. isabelleana Herb., A. malmeana Kraenzl., A. psittacina Lehm., A. sellowiana Seub. ex Schenk, e pelo gênero Bomarea Mirb. incluindo apenas a espécie B. edulis (Tussac) Herb. Neste trabalho são apresentadas nova sinonimização, chaves de identificação, descrição das espécies, ilustrações e comentários

Innovations in diagnosis and post-therapeutic monitoring of Chagas disease : simultaneous flow cytometric detection of IgG1 antibodies anti-live amastigote, anti-live trypomastigote, and anti-fixed epimastigote forms of Trypanosoma cruzi.

This study developed a remarkable methodological innovation (FC-ATE) which enables simultaneous detection of antibodies specific to the three evolutive forms of Trypanosoma cruzi: live amastigote (AMA), live trypomastigote (TRYPO), and fixed epimastigote (EPI) using a differential fluorescence staining as low (AMA), intermediate (TRYPO), and high (EPI). An outstanding performance (100%) was observed in the discrimination of the chagasic (CH) and non-chagasic (NCH) patients. In the applicability of FC-ATE in the diagnosis of Chagas disease, 100% of the CH samples presented positivity in the percentage of positive fluorescent parasites (PPFP) for all the three forms of T. cruzi. Moreover, 94% of the samples of NCH presented negative values of PPFP with AMA and TRYPO, and 88% with EPI. Samples from the NCH group with falsepositive results were those belonging to the leishmaniasis patients. Considering the applicability of this technique in post-therapeuticmonitoring of Chagas disease, 100% of non-treated (NT) and treated non-cured (TNC) samples were positive with the three T. cruzi evolutive forms, while a percentage of 100% fromsamples of the treated cured (TC) patientswere negativewith AMA, 93% with TRYPO and 96% with EPI. The comparison between FC-ATE and two other flow cytometric tests using the same samples of patients NT, TNC and TC showed that the three techniques presented different reactivities, although categorical correlation between the methodologies was observed. Taken together, the results obtained with the novel FC-ATE method have shown an outstanding performance in the diagnosis and post-therapeutic monitoring of Chagas disease