39 research outputs found

    Immune regulation by allergen immunotherapy:lessons learned from experimental approaches

    Get PDF
    Veel allergische aandoeningen kunnen onderdrukt worden. Er zijn echter nauwelijks medicijnen die de oorzaak van de ziekte aanpakken en die langdurig werkzaam zijn. Dat is ook het geval bij allergische astma. Omdat er over de oorzaak van deze ziekte weinig bekend is, zijn er geen goede medicijnen beschikbaar. Hadi Maazi en Soheila Shirinbak gingen op zoek naar de cellulaire mechanismen die aan allergische astma ten grondslag liggen. De inzichten die dit onderzoek opleverde kunnen wellicht helpen bij de ontwikkeling van een medicijn tegen allergische astma. Maazi en Shirinbak ontdekten dat FoxP3-positieve regulatoire T-cellen belangrijk zijn voor onderdrukking van de luchtwegontsteking die bij allergische astma een rol spelen. B-cellen, plasmacytoide dendritische cellen en CD8-positieve T-cellen daarentegen zijn niet vereist voor de onderdrukking van luchtwegontsteking, luchtweghyperreactiviteit en allergeen-specifiek IgE responsen. Eerder hadden Maazi en Shirinbak al ontdekt dat ook het cytokine IL-10 een belangrijke rol speelt bij de behandeling van allergische astma. In dit proefschrift brengen ze de precieze rol van dit cytokine in kaart. Tenslotte laten ze zien dat CTLA4-Ig en TGFβ de efficiëntie van de SIT behandeling sterk vergroten

    Immune regulation by allergen immunotherapy : lessons learned from experimental approaches

    Get PDF
    Veel allergische aandoeningen kunnen onderdrukt worden. Er zijn echter nauwelijks medicijnen die de oorzaak van de ziekte aanpakken en die langdurig werkzaam zijn. Dat is ook het geval bij allergische astma. Omdat er over de oorzaak van deze ziekte weinig bekend is, zijn er geen goede medicijnen beschikbaar. Hadi Maazi en Soheila Shirinbak gingen op zoek naar de cellulaire mechanismen die aan allergische astma ten grondslag liggen. De inzichten die dit onderzoek opleverde kunnen wellicht helpen bij de ontwikkeling van een medicijn tegen allergische astma. Maazi en Shirinbak ontdekten dat FoxP3-positieve regulatoire T-cellen belangrijk zijn voor onderdrukking van de luchtwegontsteking die bij allergische astma een rol spelen. B-cellen, plasmacytoide dendritische cellen en CD8-positieve T-cellen daarentegen zijn niet vereist voor de onderdrukking van luchtwegontsteking, luchtweghyperreactiviteit en allergeen-specifiek IgE responsen. Eerder hadden Maazi en Shirinbak al ontdekt dat ook het cytokine IL-10 een belangrijke rol speelt bij de behandeling van allergische astma. In dit proefschrift brengen ze de precieze rol van dit cytokine in kaart. Tenslotte laten ze zien dat CTLA4-Ig en TGFβ de efficiëntie van de SIT behandeling sterk vergroten. In this PhD thesis we aimed to unravel the mechanism of action of SIT at cellular level on the one hand and find ways to improve the efficacy of SIT in the other hand in a mouse model of allergic asthma. We found that while FOXP3+ regulatory T cells play a role in SIT-induced suppression of airway eosinophilia, CD8+ T cells, B cells and plasmacytoid dendritic cells play dispensable roles in SIT-induced suppression of airway hyperreactivity, airway eosinophilia and allergen-specific IgE levels in the serum.

    Programmed cell death ligand 2 regulates TH9 differentiation and induction of chronic airway hyperreactivity.

    No full text
    Our findings suggest that PD-L2 plays a pivotal role in the regulation of TH9 cell development in chronic AHR, providing novel strategies for modulating adaptive immunity during chronic allergic responses

    Airway responsiveness, lung cells infiltration and OVA-specific IgE serum levels.

    No full text
    <p>Mice (n = 8) were sensitized with OVA/Alum and received a first series of 3 OVA inhalation challenges, during which TLR-2 agonist (20 µg per mouse in PBS) or PBS was administered intranasally 1 hour before challenge. After 3 weeks, mice received a second series of 3 inhalation challenges (OVA or PBS). Asthma manifestations were measured one day after the last challenge. A: Airway responsiveness to increasing doses of methacholine was measured by whole-body plethysmography and is expressed as enhanced pause (PenH) (gray symbols: PBS-challenged groups, white symbols: OVA-challenged groups, squares: Pam3Cys-treated groups, triangles: PBS-treated groups). B: total cell counts in the BAL of PBS and OVA-challenged mice as indicated. C: differential cell counts in the BAL of OVA-challenged mice only. D: OVA-specific IgE levels in pre-challenge and post-challenge sera of OVA-challenged mice. (E) Lung tissue cytokines measured in lung homogenates of PBS or Pam3Cys (P3C) treated mice after OVA challenge at timepoint 1 (left-hand panel) or at timepoint 2 (right-hand panel) as indicated. All values in panels A–D are displayed as average ± SEM, panel E displays individual values (dots)+mean (bar). Significance is indicated (*) when p<0.05.</p

    Airway responsiveness, lung cell infiltration and OVA-specific IgE serum levels.

    No full text
    <p>Mice (n = 8) were sensitized with OVA/Alum and received 3 OVA or PBS inhalation challenges. TLR-2 agonist (20 µg per mouse in PBS) or PBS was administered intranasally 1 hour before each challenge. Asthma manifestations were measured one day after the last challenge. A: Airway responsiveness to increasing doses of methacholine was measured by whole-body plethysmography and is expressed as enhanced pause (PenH) (gray symbols: PBS-challenged groups, white symbols: OVA-challenged groups, squares: Pam3Cys-treated groups, triangles: PBS-treated groups). B, C: total (B) and differential (C) cell counts in the BAL of OVA-challenged mice. D: OVA-specific IgE levels in the serum of OVA-challenged mice. (E) Lung tissue cytokines measured in lung homogenates of PBS or Pam3Cys (P3C) treated mice as indicated. All values are displayed as average ± SEM (panels A–D) or individual values (dots)+mean (bar) (panel E). Significance is indicated (*) when p<0.05.</p

    Time schedule of the experimental procedures.

    No full text
    <p>Days of sensitization, OVA/PBS challenges, Pam3Cys/PBS treatments and lung function measurements/section are indicated for both the short protocol (A) and the long-term protocol (B).</p

    Airway responsiveness, BAL cell counts and composition, and OVA-specific IgE serum levels.

    No full text
    <p>Mice (n = 8) were sensitized with OVA/Alum and received 4 OVA or PBS inhalation challenges. TLR-2 agonist (20 µg per mouse in PBS) or PBS was administered intranasally 1 hour before the 2 first challenges. Asthma manifestations were measured one day after the last challenge. A: Airway responsiveness to increasing doses of methacholine was measured by whole-body plethysmography and is expressed as enhanced pause (PenH) (gray symbols: PBS-challenged groups, white symbols: OVA-challenged groups, squares: Pam3Cys-treated groups, triangles: PBS-treated groups). B, C: total (B) and differential (C) cell counts in the BAL of PBS and OVA-challenged mice as indicated. D: OVA-specific IgE levels in the serum of PBS and OVA-challenged mice as indicated. All values are displayed as average ± SEM.</p
    corecore