Dos capas independientes de miofilamentos constituyen el aparato contráctil de las células mioides peritubulares del testículo de rata

Peritubular myoid cells (PM cells) are found in the wall of seminiferous tubules (ST) and participate\nin ST contraction. These cells have an atypical cytoskeleton organized in two independent layers: the\ninner layer and the outer layer with myofilaments perpendicular and parallel to the ST axis,\nrespectively. This model differs from the orthogonal mesh of filaments previously proposed for PM\ncells. Therefore, in addition to the organization of cytoskeleton, the distribution of other structures\nand proteins involved in the contraction were evaluated in adult rats. The effects of endothelin-1 on\nST, especially on PM cells, were analyzed. In postnatal testicular development, the cytoskeleton\nmaduration and the start of the contractile response were assessed. By different microscopes, it was\nobserved that PM cells despite being flat cells, have a very organized machinery, with structures such\nas endothelin receptors and caveolae orientated along two myofilaments layers that coexist in the\nsame cell, allowing the cell to contract in two directions. In the development, the myofilaments\norganization changes depending on progress of spermatogenesis. The two layers do not appear\nsimultaneously. Even with one of the myofilaments layers, the PM cells are able to contract\nseminiferous cords in response to endothelin-1.Fil: Losinno, Antonella Denise. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica; ArgentinaLas células mioides peritubulares (células MP) se encuentran en la pared del túbulo\nseminífero (TS) y participan en su contracción. Poseen un citoesqueleto particular, organizado en\ndos capas independientes: una capa interna y otra externa con miofilamentos perpendiculares y\nparalelos al eje del TS, respectivamente. Esto difiere de la malla ortogonal de filamentos\npropuesta anteriormente para las células MP. Por ello, en animales adultos se evaluó además de la\norganización del citoesqueleto, la distribución de otras estructuras y proteínas implicadas en la\ncontracción. Se analizaron los efectos del estímulo con endotelina-1 sobre el TS, especialmente en\nla célula MP. En el desarrollo testicular postnatal, se evaluó la maduración de este citoesqueleto y\nel inicio de la respuesta contráctil. Por diferentes microscopios se observó que la célula MP a\npesar de ser plana dispone de una maquinaria altamente organizada, con estructuras como caveolas\ny receptores de endotelina-1 orientadas según las dos capas de miofilamentos que coexisten en la\nmisma célula y que le permite contraerse en dos direcciones. En el desarrollo la organización de\nlos filamentos cambia según progresa la espermatogénesis. Las dos capas no aparecen\nsimultáneamente. Aún con una capa la célula MP se contrae pero de una manera diferent

Peritubular myoid cells from rat seminiferous tubules contain actin and myosin filaments distributed in two independent layers

In the mammalian testis, peritubular myoid cells (PM cells) surround the seminiferous tubules (STs), express cytoskeletal markers of true smooth muscle cells, and participate in the contraction of the ST. It has been claimed that PM cells contain bundles of actin filaments distributed orthogonally in an intermingled mesh. Our hypothesis is that these actin filaments are not forming a random intermingled mesh, but are actually arranged in contractile filaments in independent layers. The aim of this study is to describe the organization of the actin cytoskeleton in PM cells from adult rat testes and its changes during endothelin-1-induced ST contraction. For this purpose, we isolated segments of ST corresponding to the stages IX-X of the spermatogenic cycle (ST segments), and analyzed the actin and myosin filament distribution by confocal and transmission electron microscopy. We found that PM cells have actin and myosin filaments interconnected in thick bundles (AF-MyF bundles). These AF-MyF bundles are distributed in two independent layers: an inner layer toward the seminiferous epithelium, and an outer layer toward the interstitium, with the bundles oriented perpendicularly and in parallel to the main ST axis, respectively. In endothelin-1 contracted ST segments, PM cells increased their thickness and reduced their length in both directions, parallel and perpendicular to the main ST axis. The AF-MyF bundles maintained the same organization in two layers, although both layers appeared significantly thicker. We believe that this is the first time this arrangement of AF-MyF bundles in two independent layers has been shown in smooth muscle cells, and that this organization would allow the cell to generate contractile force in two directions.Fil: Losinno, Antonella Denise. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Centro Científico Tecnológico Conicet - Mendoza. Instituto de Histología y Embriología de Mendoza Dr. Mario H. Burgos. Universidad Nacional de Cuyo. Facultad de Ciencias Médicas. Instituto de Histología y Embriología de Mendoza Dr. Mario H. Burgos; ArgentinaFil: Morales, Alfonsina. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Centro Científico Tecnológico Conicet - Mendoza. Instituto de Histología y Embriología de Mendoza Dr. Mario H. Burgos. Universidad Nacional de Cuyo. Facultad de Ciencias Médicas. Instituto de Histología y Embriología de Mendoza Dr. Mario H. Burgos; ArgentinaFil: Fernández, Darío. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Centro Científico Tecnológico Conicet - Mendoza. Instituto de Histología y Embriología de Mendoza Dr. Mario H. Burgos. Universidad Nacional de Cuyo. Facultad de Ciencias Médicas. Instituto de Histología y Embriología de Mendoza Dr. Mario H. Burgos; ArgentinaFil: Lopez, Luis Alberto. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Centro Científico Tecnológico Conicet - Mendoza. Instituto de Histología y Embriología de Mendoza Dr. Mario H. Burgos. Universidad Nacional de Cuyo. Facultad de Ciencias Médicas. Instituto de Histología y Embriología de Mendoza Dr. Mario H. Burgos; Argentin

Induction of autophagy increases the proteolytic activity of reservosomes during Trypanosoma cruzi metacyclogenesis

Cruzipain, the major cysteine protease of the pathogenic protozoa Trypanosoma cruzi, is an important virulence factor that plays a key role in the parasite nutrition, differentiation and host cell infection. Cruzipain is synthesized as a zymogen, matured, and delivered to reservosomes. These organelles that store proteins and lipids ingested by endocytosis undergo a dramatic decrease in number during the metacyclogenesis of T. cruzi. Autophagy is a process that digests the own cell components to supply energy under starvation or different stress situations. This pathway is important during cell growth, differentiation and death. Previously, we showed that the autophagy pathway of T. cruzi is induced during metacyclogenesis. This work aimed to evaluate the participation of macroautophagy/autophagy in the distribution and function of reservosomes and cruzipain during this process. We found that parasite starvation promotes the cruzipain delivery to reservosomes. Enhanced autophagy increases acidity and hydrolytic activity in these compartments resulting in cruzipain enzymatic activation and self- processing. Inhibition of autophagy similarly impairs cruzipain traffic and activity than protease inhibitors, whereas mutant parasites that exhibit increased basal autophagy, also display increased cruzipain processing under control conditions. Further experiments showed that autophagy induced cruzipain activation and self-processing promote T. cruzi differentiation and host cell infection. These findings highlight the key role of T. cruzi autophagy in these processes and reveal a potential new target for Chagas disease therapy.Fil: Losinno, Antonella Denise. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Centro Científico Tecnológico Conicet - Mendoza. Instituto de Histología y Embriología de Mendoza Dr. Mario H. Burgos. Universidad Nacional de Cuyo. Facultad de Ciencias Médicas. Instituto de Histología y Embriología de Mendoza Dr. Mario H. Burgos; ArgentinaFil: Martinez, Santiago Jose. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Centro Científico Tecnológico Conicet - Mendoza. Instituto de Histología y Embriología de Mendoza Dr. Mario H. Burgos. Universidad Nacional de Cuyo. Facultad de Ciencias Médicas. Instituto de Histología y Embriología de Mendoza Dr. Mario H. Burgos; ArgentinaFil: Labriola, Carlos Alberto. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Parque Centenario. Instituto de Investigaciones Bioquímicas de Buenos Aires. Fundación Instituto Leloir. Instituto de Investigaciones Bioquímicas de Buenos Aires; ArgentinaFil: Carrillo, Carolina. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Parque Centenario. Instituto de Ciencia y Tecnología "Dr. César Milstein". Fundación Pablo Cassará. Instituto de Ciencia y Tecnología "Dr. César Milstein"; ArgentinaFil: Romano, Patricia Silvia. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Centro Científico Tecnológico Conicet - Mendoza. Instituto de Histología y Embriología de Mendoza Dr. Mario H. Burgos. Universidad Nacional de Cuyo. Facultad de Ciencias Médicas. Instituto de Histología y Embriología de Mendoza Dr. Mario H. Burgos; Argentin

Trypanosoma rangeli: growth in mammalian cells in vitro and action of a repositioned drug (17-AAG) and a natural extract (Artemisia sp. essential oil)

Trypanosoma rangeli and T. cruzi are both parasitic unicellular species that infect humans. Unlike T. cruzi, the causative agent of Chagas disease, T. rangeli is an infective and non-pathogenic parasite for humans, but pathogenic for vectors from the Rhodnius genus. Because both species can coexist in different hosts and overlap their infective cycles but very little is known about the infection of T. rangeli in mammalian cells, we decided to characterize both the development of this parasite in cell culture and the effect of therapeutic agents with potential trypanocidal action on it. We found that T. rangeli exhibits a cycle of infection in Vero cells similar to that for T. cruzi and that the repurposed drug, 17-AAG, and the natural extract Artemisia sp. essential oil produce a toxic effect on epimastigotes showing a trypanocidal action from the fifth day of culture. Both treatments also affected the infection of trypomastigotes and reduced the capacity of replication of amastigotes of T. rangeli. Since T. cruzi / T. rangeli coinfection cases have been reported, the finding of drugs with potential activity against both species could be significant in the future. Furthermore, studies of susceptibility of both species to drugs could also help to know the different mechanisms of pathogenicity in humans displayed by T. cruzi that are absent in T. rangeli.Fil: Cimador, Ana Laura. Universidad "Juan Agustín Maza". Facultad de Farmacia y Bioquímica; ArgentinaFil: Galante, Emeli Luciana. Universidad "Juan Agustín Maza". Facultad de Farmacia y Bioquímica; ArgentinaFil: Muñoz, Lucila Ibel. Universidad "Juan Agustín Maza". Facultad de Farmacia y Bioquímica; ArgentinaFil: Romano, Patricia Silvia. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Centro Científico Tecnológico Conicet - Mendoza. Instituto de Histología y Embriología de Mendoza Dr. Mario H. Burgos. Universidad Nacional de Cuyo. Facultad de Ciencias Médicas. Instituto de Histología y Embriología de Mendoza Dr. Mario H. Burgos; Argentina. Universidad Nacional de Cuyo. Facultad de Ciencias Médicas; ArgentinaFil: Losinno, Antonella Denise. Universidad Nacional de Cuyo. Facultad de Ciencias Médicas; Argentina. Universidad "Juan Agustín Maza". Facultad de Farmacia y Bioquímica; ArgentinaFil: Vanrell, Maria Cristina. Universidad "Juan Agustín Maza". Facultad de Farmacia y Bioquímica; Argentina. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Centro Científico Tecnológico Conicet - Mendoza. Instituto de Histología y Embriología de Mendoza Dr. Mario H. Burgos. Universidad Nacional de Cuyo. Facultad de Ciencias Médicas. Instituto de Histología y Embriología de Mendoza Dr. Mario H. Burgos; Argentina. Universidad Nacional de Cuyo. Facultad de Ciencias Médicas; Argentin

Glycosylation-dependent galectin-receptor interactions promote Chlamydia trachomatis infection

Chlamydia trachomatis (Ct) constitutes the most prevalent sexually transmitted bacterium worldwide. Chlamydial infections can lead to severe clinical sequelae including pelvic inflammatory disease, ectopic pregnancy, and tubal infertility. As an obligate intracellular pathogen, Ct has evolved multiple strategies to promote adhesion and invasion of host cells, including those involving both bacterial and host glycans. Here, we show that galectin-1 (Gal1), an endogenous lectin widely expressed in female and male genital tracts, promotes Ct infection. Through glycosylation-dependent mechanisms involving recognition of bacterial glycoproteins and N-glycosylated host cell receptors, Gal1 enhanced Ct attachment to cervical epithelial cells. Exposure to Gal1, mainly in its dimeric form, facilitated bacterial entry and increased the number of infected cells by favoring Ct–Ct and Ct–host cell interactions. These effects were substantiated in vivo in mice lacking Gal1 or complex β1–6-branched N-glycans. Thus, disrupting Gal1–N-glycan interactions may limit the severity of chlamydial infection by inhibiting bacterial invasion of host cells.Fil: Lujan, Agustin Leonardo. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Centro Científico Tecnológico Conicet - Mendoza. Instituto de Histología y Embriología de Mendoza Dr. Mario H. Burgos. Universidad Nacional de Cuyo. Facultad de Ciencias Médicas. Instituto de Histología y Embriología de Mendoza Dr. Mario H. Burgos; Argentina. Universidad Nacional de Cuyo. Facultad de Cs.medicas. Area Quimica Biologica; ArgentinaFil: Croci Russo, Diego Omar. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Centro Científico Tecnológico Conicet - Mendoza. Instituto de Histología y Embriología de Mendoza Dr. Mario H. Burgos. Universidad Nacional de Cuyo. Facultad de Ciencias Médicas. Instituto de Histología y Embriología de Mendoza Dr. Mario H. Burgos; Argentina. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Instituto de Biología y Medicina Experimental. Fundación de Instituto de Biología y Medicina Experimental. Instituto de Biología y Medicina Experimental; ArgentinaFil: Gambarte Tudela, Julian Alberto. Universidad Nacional de Cuyo. Facultad de Cs.medicas. Area Quimica Biologica; Argentina. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Centro Científico Tecnológico Conicet - Mendoza. Instituto de Histología y Embriología de Mendoza Dr. Mario H. Burgos. Universidad Nacional de Cuyo. Facultad de Ciencias Médicas. Instituto de Histología y Embriología de Mendoza Dr. Mario H. Burgos; ArgentinaFil: Losinno, Antonella Denise. Universidad Nacional de Cuyo. Facultad de Cs.medicas. Area Quimica Biologica; Argentina. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Centro Científico Tecnológico Conicet - Mendoza. Instituto de Histología y Embriología de Mendoza Dr. Mario H. Burgos. Universidad Nacional de Cuyo. Facultad de Ciencias Médicas. Instituto de Histología y Embriología de Mendoza Dr. Mario H. Burgos; ArgentinaFil: Cagnoni, Alejandro. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Instituto de Biología y Medicina Experimental. Fundación de Instituto de Biología y Medicina Experimental. Instituto de Biología y Medicina Experimental; ArgentinaFil: Mariño, Karina Valeria. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Instituto de Biología y Medicina Experimental. Fundación de Instituto de Biología y Medicina Experimental. Instituto de Biología y Medicina Experimental; ArgentinaFil: Damiani, María Teresa. Universidad Nacional de Cuyo. Facultad de Cs.medicas. Area Quimica Biologica; Argentina. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Centro Científico Tecnológico Conicet - Mendoza. Instituto de Histología y Embriología de Mendoza Dr. Mario H. Burgos. Universidad Nacional de Cuyo. Facultad de Ciencias Médicas. Instituto de Histología y Embriología de Mendoza Dr. Mario H. Burgos; ArgentinaFil: Rabinovich, Gabriel Adrián. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Instituto de Biología y Medicina Experimental. Fundación de Instituto de Biología y Medicina Experimental. Instituto de Biología y Medicina Experimental; Argentina. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Departamento de Química Biológica; Argentin

Nuevas estrategias para el control de las infecciones clamidiales

Chlamydia trachomatis (Ctr) es la causa más frecuente de infecciones de transmisión sexual (ITS). La Organización Mundial de la Salud (OMS) estima que cada año se infectan 131 millones de personas, principalmente jóvenes en edad reproductiva. Ctr provoca en la mujer infecciones agudas como cervicitis, endometritis, salpingitis, que frecuentemente cronifican y generan complicaciones graves como enfermedad inflamatoria pélvica, abortos espontáneos e infertilidad. El recién nacido, al infectarse en el canal del parto, puede desarrollar conjuntivitis y neumonía. En el hombre causa uretritis, prostatitis y epididimitis. Es la causa más frecuente en el mundo de ceguera prevenible de naturaleza infecciosa o tracoma. El Ministerio de Salud de la Nación emitió una alerta epidemiológica en agosto de 2018 por la aparición de linfogranuloma venéreo. La falta de sintomatología dificulta el diagnóstico y el tratamiento; sumado a la falta de una vacuna preventiva para evitar el contagio y la aparición de resistencia a antibióticos. Por lo que se requiere el desarrollo de nuevas herramientas para la prevención y el control de las infecciones clamidiales. Ctr invade las células epiteliales cervicales a través de numerosos receptores, muchos de ellos glicosilados y sobrevive y se multiplica intracelularmente en una vesícula llamada inclusión. En el laboratorio hemos demostrado que las células cervicales inflamadas liberan una proteína unidora de glicanos, galectina 1 (Gal1); y que esta lectina es capaz de unirse a proteínas glicosiladas de la membrana externa de Ctr como MOMP (Major Outer Membrane Protein) y OmcB; y a receptores glicosilados de la célula epitelial cervical como PDGFR y varias integrinas. Demostramos que Gal1 facilita el acercamiento de la bacteria a la membrana plasmática y promueve la invasión celular, al actuar como un puente entre los glicanos bacterianos y eucariotas. Gal1 aumenta no sólo el número de células infectadas sino también el número de inclusiones por célula y el número de bacterias por inclusión. Nuestros resultados muestran que la interferencia de la interacción glicanos bacterianos-Gal1-receptores glicosilados con lactosa, glicanasas como PNGasa F o anticuerpos neutralizantes contra los receptores involucrados es efectiva para reducir el reconocimiento y la unión de Ctr a la superficie celular, disminuyendo la invasión, y en consecuencia la magnitud de la infección clamidial. Hemos comprobado in vivo en un modelo murino de infección genital, que los ratones KO para Gal1 o para enzimas formadoras de N-glicanos complejos son menos susceptibles a la infección clamidial. Se ha descripto que Gal1 favorece la infección por el virus de la inmunodeficiencia humana (VIH) y por Trichomonas vaginalis. Gal1 es uno de los mediadores que se libera en los tejidos inflamados y hemos demostrado que Ctr aumenta su expresión, lo que podría explicar al menos en parte, la mayor susceptibilidad del tejido genital femenino inflamado a la invasión por patógenos y la alta frecuencia de re- y co-infecciones en ITS. Nuestros hallazgos sugieren que la interferencia del puente glicanos bacterianos-Gal1-receptores celulares N-glicosilados podría ser una nueva herramienta preventiva para evitar la invasión celular y lograr el control de las infecciones clamidiales y otras ITS.Fil: Damiani, Maria Elena Teresa. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Centro Científico Tecnológico Conicet - Mendoza. Instituto de Medicina y Biología Experimental de Cuyo; ArgentinaFil: Lujan, Agustin Leonardo. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Centro Científico Tecnológico Conicet - Mendoza. Instituto de Medicina y Biología Experimental de Cuyo; ArgentinaFil: Croci Russo, Diego Omar. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Centro Científico Tecnológico Conicet - Mendoza. Instituto de Histología y Embriología de Mendoza Dr. Mario H. Burgos. Universidad Nacional de Cuyo. Facultad de Ciencias Médicas. Instituto de Histología y Embriología de Mendoza Dr. Mario H. Burgos; ArgentinaFil: Gambarte Tudela, Julian Alberto. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Centro Científico Tecnológico Conicet - Mendoza. Instituto de Medicina y Biología Experimental de Cuyo; ArgentinaFil: Losinno, Antonella Denise. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Centro Científico Tecnológico Conicet - Mendoza. Instituto de Histología y Embriología de Mendoza Dr. Mario H. Burgos. Universidad Nacional de Cuyo. Facultad de Ciencias Médicas. Instituto de Histología y Embriología de Mendoza Dr. Mario H. Burgos; ArgentinaFil: Rabinovich, Gabriel Adrián. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Instituto de Biología y Medicina Experimental. Fundación de Instituto de Biología y Medicina Experimental. Instituto de Biología y Medicina Experimental; ArgentinaXXI Congreso de la Sociedad de Biología de Rosario; XXXIX Reunión Anual de la Sociedad de Biología de RosarioRosarioArgentinaSociedad de Biología de Rosari

Chlamydia trachomatis: pathogen-host cell interplay

Chlamydia trachomatis (Ct) is the most prevalent sexually-transmitted bacterium worldwide. It completes its entire life cycle within human cells, inside of a modified vacuole termed inclusion. As an obligate intracellular pathogen, Ct has evolved multiple strategies to bind to, invade and parasite the host cell. In our laboratory, we aim to describe the interaction of the bacterium and the host from various approaches and scales. We have studied the manipulation of intracellular trafficking pathways executed by the bacterium to, conveniently, prevent its degradation, create a favorable niche for replication and evade the immune defense. In this way, we have reported the active recruitment of several Rab proteins and their effectors (Rab14, FIP2, Rab39a, Rab39b) to the membrane inclusion, a process that results in the acquisition of nutrients essential for growth and replication. Moreover, we study the modulation of signaling pathways (Akt, PKC) during the course of infection that may play a role in the development of Ct. To further complete the study of Ct life cycle in our team, we have described how galectin-1 enhanced its attachment to cervical epithelial cells to promote entry and invasion. A thorough understanding of the epidemiology and biology of Ct is crucial for the improvement of therapeutic strategies. For the former, we have dedicated efforts for the development of diagnostic tools of Ct and other sexually-transmitted pathogens; and for the latter, our laboratory has established a murine model of infection of Ct for in vivo assays of new therapeutic targets.Fil: Alonso Bivou, Mariano Ángel. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Centro Científico Tecnológico Conicet - Mendoza. Instituto de Histología y Embriología de Mendoza Dr. Mario H. Burgos. Universidad Nacional de Cuyo. Facultad de Ciencias Médicas. Instituto de Histología y Embriología de Mendoza Dr. Mario H. Burgos; ArgentinaFil: del Balzo, Diego Damián. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Centro Científico Tecnológico Conicet - Mendoza. Instituto de Histología y Embriología de Mendoza Dr. Mario H. Burgos. Universidad Nacional de Cuyo. Facultad de Ciencias Médicas. Instituto de Histología y Embriología de Mendoza Dr. Mario H. Burgos; ArgentinaFil: Lujan, Agustin Leonardo. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Centro Científico Tecnológico Conicet - Mendoza. Instituto de Histología y Embriología de Mendoza Dr. Mario H. Burgos. Universidad Nacional de Cuyo. Facultad de Ciencias Médicas. Instituto de Histología y Embriología de Mendoza Dr. Mario H. Burgos; ArgentinaFil: Buonfigli, Julio Federico. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Centro Científico Tecnológico Conicet - Mendoza. Instituto de Histología y Embriología de Mendoza Dr. Mario H. Burgos. Universidad Nacional de Cuyo. Facultad de Ciencias Médicas. Instituto de Histología y Embriología de Mendoza Dr. Mario H. Burgos; ArgentinaFil: Capmany, Anahi. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Centro Científico Tecnológico Conicet - Mendoza. Instituto de Histología y Embriología de Mendoza Dr. Mario H. Burgos. Universidad Nacional de Cuyo. Facultad de Ciencias Médicas. Instituto de Histología y Embriología de Mendoza Dr. Mario H. Burgos; ArgentinaFil: Lucchesi, Ornella. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Centro Científico Tecnológico Conicet - Mendoza. Instituto de Histología y Embriología de Mendoza Dr. Mario H. Burgos. Universidad Nacional de Cuyo. Facultad de Ciencias Médicas. Instituto de Histología y Embriología de Mendoza Dr. Mario H. Burgos; ArgentinaFil: Gambarte Tudela, Julian Alberto. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Centro Científico Tecnológico Conicet - Mendoza. Instituto de Histología y Embriología de Mendoza Dr. Mario H. Burgos. Universidad Nacional de Cuyo. Facultad de Ciencias Médicas. Instituto de Histología y Embriología de Mendoza Dr. Mario H. Burgos; ArgentinaFil: Leiva, Natalia Lorena. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Centro Científico Tecnológico Conicet - Mendoza; Argentina. Universidad Nacional de Cuyo. Facultad de Ciencias Médicas; ArgentinaFil: Sanchez, D.. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Centro Científico Tecnológico Conicet - Mendoza. Instituto de Histología y Embriología de Mendoza Dr. Mario H. Burgos. Universidad Nacional de Cuyo. Facultad de Ciencias Médicas. Instituto de Histología y Embriología de Mendoza Dr. Mario H. Burgos; ArgentinaFil: Losinno, Antonella Denise. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Centro Científico Tecnológico Conicet - Mendoza. Instituto de Histología y Embriología de Mendoza Dr. Mario H. Burgos. Universidad Nacional de Cuyo. Facultad de Ciencias Médicas. Instituto de Histología y Embriología de Mendoza Dr. Mario H. Burgos; ArgentinaFil: Damiani, M. T.. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Centro Científico Tecnológico Conicet - Mendoza. Instituto de Histología y Embriología de Mendoza Dr. Mario H. Burgos. Universidad Nacional de Cuyo. Facultad de Ciencias Médicas. Instituto de Histología y Embriología de Mendoza Dr. Mario H. Burgos; ArgentinaArgentina Symposium on Translational MedicineMendozaArgentinaUniversidad Nacional de Cuyo. Facultad de Ciencias MédicasUniversidad de FriburgoCónsul Honorario de la República Federal de Alemani

Rab Proteins: Insights into Intracellular Trafficking in Endometrium

Rab proteins belong to the Ras superfamily of small monomeric GTPases. These G proteins are the main controllers of vesicular transport in every tissue, among them, the endometrium. They are in charge of to the functional subcellular compartmentalization and cargo transport between organelles and the plasma membrane. In turn, intracellular trafficking contributes to endometrial changes during the menstrual cycle, secretion to the uterine fluid, and trophoblast implantation; however, few reports analyze the role of Rab proteins in the uterus. In general, Rab proteins control the release of cytokines, growth factors, enzymes, hormones, cell adhesion molecules, and mucus. Further, the secretion of multiple compounds into the uterine cavity is required for successful implantation. Therefore, alterations in Rab-controlled intracellular transport likely impair secretory processes to the uterine fluid that may correlate with abnormal endometrial development and failed reproductive outcomes. Overall, they could explain recurrent miscarriages, female infertility, and/or assisted reproductive failure. Interestingly, estrogen (E2) and progesterone (P) regulate gene expression of Rab proteins involved in secretory pathways. This review aims to gather information regarding the role of Rab proteins and intracellular trafficking in the endometrium during the different menstrual phases, and in the generation of a receptive stage for embryo implantation, modulated by E2 and P. This knowledge might be useful for the development of novel reproductive therapies that overcome low implantation rates of assisted reproductive procedures.Fil: Leiva, Natalia Lorena. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Centro Científico Tecnológico Conicet - Mendoza. Instituto de Medicina y Biología Experimental de Cuyo; Argentina. Universidad Nacional de Cuyo. Facultad de Ciencias Exactas y Naturales; ArgentinaFil: Nolly, Mariela Beatriz. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Centro Científico Tecnológico Conicet - Mendoza. Instituto de Medicina y Biología Experimental de Cuyo; ArgentinaFil: Ávila Maniero, Mariángeles. Universidad Nacional de Cuyo. Facultad de Cs.medicas. Area Quimica Biologica; ArgentinaFil: Losinno, Antonella Denise. Universidad Nacional de Cuyo. Facultad de Cs.medicas. Area Quimica Biologica; ArgentinaFil: Damiani, Maria Teresa. Universidad Nacional de Cuyo. Facultad de Cs.medicas. Area Quimica Biologica; Argentina. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Centro Científico Tecnológico Conicet - Mendoza. Instituto de Medicina y Biología Experimental de Cuyo; Argentin

Changes of myoid and endothelial cells in the peritubular wall during contraction of the seminiferous tubule

The wall of the seminiferous tubule in rodents consists of an inner layer of myoid cells covered by an outer layer of endothelial cells. Myoid cells are a type of smooth muscle cell containing α-actin filaments arranged in two independent layers that contract when stimulated by endothelin-1. The irregular surface relief of the tubular wall is often considered a hallmark of contraction induced by a variety of stimuli. We examine morphological changes of the rat seminiferous tubule wall during contraction by a combination of light, confocal, transmission and scanning electron microscopy. During ET-1-induced contraction, myoid cells changed from a flat to a conical shape, but their actin filaments remained in independent layers. As a consequence of myoid cell contraction, the basement membrane became wavy, orientation of collagen fibers in the extracellular matrix was altered and the endothelial cell layer became folded. To observe the basement of the myoid cell cone, the endothelial cell monolayer was removed by collagenase digestion prior to SEM study. In contracted tubules, it is possible to distinguish cell relief: myoid cells have large folds on the external surface oriented parallel to the tubular axis, whereas endothelial cells have numerous cytoplasmic projections facing the interstitium. The myoid cell cytoskeleton is unusual in that the actin filaments are arranged in two orthogonal layers, which adopt differing shapes during contraction with myoid cells becoming cone-shaped. This arrangement impacts on other components of the seminiferous tubule wall and affects the propulsion of the tubular contents to the rete testis.Fil: Losinno, Antonella Denise. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Centro Científico Tecnológico Conicet - Mendoza. Instituto de Histología y Embriología de Mendoza Dr. Mario H. Burgos. Universidad Nacional de Cuyo. Facultad de Cienicas Médicas. Instituto de Histología y Embriología de Mendoza Dr. Mario H. Burgos; ArgentinaFil: Sorrivas, Viviana. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Centro Científico Tecnológico Conicet - Bahía Blanca; ArgentinaFil: Ezquer, Eduardo Marcelo. Universidad del Desarrollo; ChileFil: Ezquer, Fernando. Universidad del Desarrollo; ChileFil: Lopez, Luis Alberto. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Centro Científico Tecnológico Conicet - Mendoza. Instituto de Histología y Embriología de Mendoza Dr. Mario H. Burgos. Universidad Nacional de Cuyo. Facultad de Cienicas Médicas. Instituto de Histología y Embriología de Mendoza Dr. Mario H. Burgos; ArgentinaFil: Morales, Alfonsina. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Centro Científico Tecnológico Conicet - Mendoza. Instituto de Histología y Embriología de Mendoza Dr. Mario H. Burgos. Universidad Nacional de Cuyo. Facultad de Cienicas Médicas. Instituto de Histología y Embriología de Mendoza Dr. Mario H. Burgos; Argentin

Beta actin: its implication in the seminiferous tubule

Junctional devices in Sertoli cells play a key role in maturation and differentiation of germ cells. However, the cellular and subcellular organization of these specializations are still not totally understood. By combining light and electron microscopic techniques using â-actin immunolabeling and prosaposin and glutaredoxin antibodies to label Sertoli cytoplasm, we observed the structural (by confocal microscopy) and fine structural (by electron microscopy) organization of tight and adherent junctions, which are the morphological substrate of the blood testis barrier (BTB). The association to the beta actin also characterizes ectoplasmic specializations (ES) found at two different level of the seminiferous epithelium. We also used freeze fracture to analyze the characteristics of tubular bulbar complexes (TBC), a known component of apical ectoplasmic specializations. These different approaches also allowed us to study the complex arrangement of the actin cytoskeleton of Sertoli cells branches, which surround germ cells in different stages of the spermatogenic cycle. Our results show a consistent labelling for â-actin before, during and after the release of spermatozoa in the tubular lumen (spermiation) suggesting a significant role of the actin network in spermatic cell differentiation. In conclusion, significant interrelations among the â-actin network, the junctional complexes of the BTB and the ectoplasmic specializations were detected at different stages of the seminiferous cycle. â-actin immunolabeling and prosaposin and glutaredoxin antibodies to label Sertoli cytoplasm, we observed the structural (by confocal microscopy) and fine structural (by electron microscopy) organization of tight and adherent junctions, which are the morphological substrate of the blood testis barrier (BTB). The association to the beta actin also characterizes ectoplasmic specializations (ES) found at two different level of the seminiferous epithelium. We also used freeze fracture to analyze the characteristics of tubular bulbar complexes (TBC), a known component of apical ectoplasmic specializations. These different approaches also allowed us to study the complex arrangement of the actin cytoskeleton of Sertoli cells branches, which surround germ cells in different stages of the spermatogenic cycle. Our results show a consistent labelling for â-actin before, during and after the release of spermatozoa in the tubular lumen (spermiation) suggesting a significant role of the actin network in spermatic cell differentiation. In conclusion, significant interrelations among the â-actin network, the junctional complexes of the BTB and the ectoplasmic specializations were detected at different stages of the seminiferous cycle.Fil: Losinno, Antonella Denise. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Centro Científico Tecnológico Conicet - Mendoza. Instituto de Histología y Embriología de Mendoza Dr. Mario H. Burgos. Universidad Nacional de Cuyo. Facultad de Ciencias Médicas. Instituto de Histología y Embriología de Mendoza Dr. Mario H. Burgos; ArgentinaFil: Lopez, Luis Alberto. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Centro Científico Tecnológico Conicet - Mendoza. Instituto de Histología y Embriología de Mendoza Dr. Mario H. Burgos. Universidad Nacional de Cuyo. Facultad de Ciencias Médicas. Instituto de Histología y Embriología de Mendoza Dr. Mario H. Burgos; ArgentinaFil: Capani, Francisco. Consejo Nacional de Investigaciones Cientificas y Tecnicas. Oficina de Coordinacion Administrativa Houssay. Instituto Alberto C. Taquini de Investigaciones En Medicina Traslacional. - Universidad de Buenos Aires. Facultad de Medicina. Instituto de Investigaciones Cardiologicas "prof. Dr. Alberto C. Taquini". Instituto Alberto C. Taquini de Investigaciones En Medicina Traslacional.; ArgentinaFil: Foscolo, Mabel Rosa. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Centro Científico Tecnológico Conicet - Mendoza. Instituto de Histología y Embriología de Mendoza Dr. Mario H. Burgos. Universidad Nacional de Cuyo. Facultad de Ciencias Médicas. Instituto de Histología y Embriología de Mendoza Dr. Mario H. Burgos; ArgentinaFil: Ibañez, Jorge Ernesto. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Centro Científico Tecnológico Conicet - Mendoza. Instituto de Histología y Embriología de Mendoza Dr. Mario H. Burgos. Universidad Nacional de Cuyo. Facultad de Ciencias Médicas. Instituto de Histología y Embriología de Mendoza Dr. Mario H. Burgos; ArgentinaFil: Cavicchia, Juan Carlos. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Centro Científico Tecnológico Conicet - Mendoza. Instituto de Histología y Embriología de Mendoza Dr. Mario H. Burgos. Universidad Nacional de Cuyo. Facultad de Ciencias Médicas. Instituto de Histología y Embriología de Mendoza Dr. Mario H. Burgos; Argentin