22 research outputs found
Wirtschaftlichkeit bei Arzneimittelverordnungen - lediglich durch das Verordnungsverhalten von Ärzt*innen beeinflusst oder gibt es auch andere Einflussfaktoren?
WirtMed-Studie zur Wirtschaftlichkeit der Arzneimittel-Verordnung - immer diese rote Ampel!
Unwirtschaftliche Arzneimittelverordnungen - realistische Auswege aus der Unwirtschaftlichkeit?
Der Einfluss von C-reaktivem Protein und Empfängermonozyten auf die Immunantwort nach allogener Transplantation im Hinterlaufmodell der Ratte
Ärztliche Erfahrungen mit der bayerischen Wirkstoffvereinbarung als Systematik zur Steuerung einer wirtschaftlichen Arzneimittelverordnung - qualitative Ergebnisse aus der WirtMed-Studie
"Ich übernehme nicht alles unkritisch." Arzneimittelverordnungen nach Krankenhausbehandlungen als Herausforderung für Hausärzt*innen. Eine qualitative Befragung im Rahmen der WirtMed-Studie
Krankenhäuser als "primäre Weichensteller" bei Arzneimittelverordnungen - qualitative Studie zum Verordnungsverhalten von bayerischen Hausärzt*innen an der Schnittstelle stationär-ambulant vor dem Hintergrund der Bayerischen Wirkstoffvereinbarung
An unbiased flow cytometry-based approach to assess subset-specific circulating monocyte activation and cytokine profile in whole blood .
Monocytes are the third most frequent type of leukocytes in humans, linking innate and adaptive immunity and are critical drivers in many inflammatory diseases. Based on the differential expression of surface antigens, three monocytic subpopulations have been suggested in humans and two in rats with varying inflammatory and phenotype characteristics. Potential intervention strategies that aim to manipulate these cells require an in-depth understanding of monocyte behavior under different conditions. However, monocytes are highly sensitive to their specific activation state and expression of surface markers, which can change during cell isolation and purification. Thus, there is an urgent need for an unbiased functional analysis of activation in monocyte subtypes, which is not affected by the isolation procedure. Here, we present a flow cytometry-based protocol for evaluating subset-specific activation and cytokine expression of circulating blood monocytes both in humans and rats using small whole blood samples (50 - 100 μL). In contrast to previously described monocyte isolation and flow cytometry visualization methods, the presented approach virtually leaves monocyte subsets in a resting state or fixes them in their current state and allows for an unbiased functional endpoint analysis without prior cell isolation. This protocol is a comprehensive tool for studying differential monocyte regulation in the inflammatory and allogeneic immune response in vitro and vivo