First report of papaya ringspot virus w infecting momordica charantia in Cuba

During a survey conducted in July 2010, severe mosaic and deformations were observed on the leaves of cerasee (Momordica charantia) in Villa Clara, Cuba. The symptoms resembled those induced by Papaya ringspot virus (PRSV) in papaya (Carica papaya L.) plants (Olarte et al., 2011). Leaf samples were ELISA positive when tested with a specific PRSV antiserum (Agdia, USA). The presence of PRSV was confirmed by the amplification of a 850 bp fragment by RT-PCR using primers specific to the PRSV coat protein gene (unpublished information). BLASTn analysis of the sequences from the RT-PCR amplified product (GenBank accession No. KP019380) showed 94% identity with PRSV-W isolates from Citrullus lanatus in the USA (GenBank accession Nos. JN132439 to JN132457) and PRSV-P isolates (GenBank accession Nos. AF196839 and EF189736). Crude sap extracts from symptomatic M. charantia leaf samples were mechanically inoculated onto Cucurbita moschata and papaya plants. Symptoms developed in the former but not in the latter plants, suggesting the presence of PRSV-W, since only PRSV-P is able to infect papaya plants (Romay et al., 2014). In inoculated plants, the presence of this virus was determined by ELISA. In Cuba, the first molecular detection of PRSV-W was from Cucurbita pepo (Rodríguez- Martínez, personal communication) and PRSV-P has only been reported in papaya plants (Portal et al., 2006). To our knowledge, this is the first report of PRSV-W infecting M. charantia in Cuba. This finding is relevant for the epidemiology, and management of this disease in cucurbits.Instituto de Patología VegetalFil: Cabrera Mederos, Dariel. Instituto Nacional de Tecnología Agropecuaria (INTA). Instituto de Patología Vegetal; ArgentinaFil: Cabrera Mederos, Dariel. Universidad Central “Marta Abreu” de Las Villas. Facultad de Ciencias Agropecuarias; CubaFil: Giolitti, Fabian. Instituto Nacional de Tecnología Agropecuaria (INTA). Instituto de Patología Vegetal; ArgentinaFil: Portal, O. Universidad Central “Marta Abreu” de Las Villas. Facultad de Ciencias Agropecuarias; Cub

First report of Papaya ringspot virus infecting Carica papaya in Argentina

Papaya plants (Carica papaya L.) with severe leaf mosaic and deformation symptoms were observed and collected in the Formosa, Corrientes and Misiones provinces of northern Argentina. These symptoms were similar to those induced by Papaya ringspot virus (PRSV-P) (Tripathi et al., 2008). Electron microscopy observations of leaf dip preparations from symptomatic papaya leaves revealed typical flexuous potyvirus particles of ca. 800×12 nm (Francki et al., 1985). Papaya leaf extracts from affected plants were mechanically inoculated on healthy papaya plants, which showed typical symptoms of the disease. The presence of the virus in symptomatic plants was tested and confirmed by double antibody sandwich enzyme-linked immunosorbent assay (DAS-ELISA), using a specific PRSV antiserum (Agdia, Elkhart, IN). Total RNA was extracted using RNeasy Plant Mini Kit (Qiagen, Hilden, Germany) and tested by reverse transcription-polymerase chain reaction (RT-PCR) with specific PRSV coat protein gene primers: BoCP_Fwd 5’-TCCAAGAATGAAGCTGTGGACGCTGGTT-3’ and BoCP_Rev 5’-TYAGTTGCGCATACCCAGGAGAGAGT-3’. The RT-PCR amplicons of the expected size were purified and directly sequenced in both directions at Macrogen Inc. (Seoul, Korea). BLASTn analysis of the sequenced fragments (828 bp) (GenBank accession Nos. KX385113 to KX385116) showed 97 to 98% nucleotide sequence identity with previously reported PRSV-P isolates from Brazil (AF344642, JQ755427, JQ755424). To the best of our knowledge, this is the first report of the occurrence of PRSV in papaya plants in Argentina. Due to the devastating effects of PRSV in papaya (Tripathi et al., 2008) and the recent increase of cultivation area in northern Argentina, it becomes necessary to implement management strategies to control this disease and avoid the introduction of the virus into new production areas.Instituto de Patología VegetalFil: Cabrera Mederos, Dariel. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas; ArgentinaFil: Cabrera Mederos, Dariel. Instituto Nacional de Tecnología Agropecuaria (INTA). Instituto de Patología Vegetal; ArgentinaFil: Dal Zotto, Angelica. Instituto Nacional de Tecnología Agropecuaria (INTA). Instituto de Patología Vegetal; ArgentinaFil: Galdeano, Ernestina. Universidad Nacional del Nordeste. Facultad de Ciencias Agrarias; ArgentinaFil: Galdeano, Ernestina. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Instituto de Botánica del Nordeste; ArgentinaFil: Portal, O. Universidad Central “Marta Abreu” de Las Villas. Facultad de Ciencias Agropecuarias; CubaFil: Giolitti, Fabian. Instituto Nacional de Tecnología Agropecuaria (INTA). Instituto de Patología Vegetal; Argentin

Variables climáticas que influyen en la ocurrencia del achaparramiento de la alfalfa

Presentación de diapositivasAchaparramiento enfermedad viral altamente prevalente en el cultivo de alfalfa Medicago sativa Afecta negativamente la cadena de producción de carne y leche de ArgentinaInstituto de Patología VegetalFil: Trucco, Veronica Milagros. Instituto Nacional de Tecnología Agropecuaria (INTA). Instituto de Patología Vegetal; ArgentinaFil: Trucco, Veronica Milagros. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Unidad de Fitopatología y Modelización Agrícola (UFyMA); ArgentinaFil: Piccardi, Mónica. Universidad Nacional de Córdoba. Facultad de Ciencias Agropecuarias. Área de Estadística y Biometría; ArgentinaFil: Piccardi, Mónica. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Unidad de Fitopatología y Modelización Agrícola (UFyMA); ArgentinaFil: Suarez, Franco. Universidad Nacional de Córdoba. Facultad de Ciencias Agropecuarias. Área de Estadística y Biometría; ArgentinaFil: Giolitti, Fabian. Instituto Nacional de Tecnología Agropecuaria (INTA). Instituto de Patología Vegetal; ArgentinaFil: Giolitti, Fabian. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas). Unidad de Fitopatología y Modelización Agrícola (UFyMA); Argentin

First report of raspberry bushy dwarf virus infecting raspberry in Argentina

In 2014-2015, raspberry (Rubus idaeus) cv. Autum bliss plants with dwarfism and foliar chlorosis were observed in commercial fields in parallel 42° in the Patagonia region of Argentina. Symptoms were similar to those observed in raspberry infected by Raspberry bushy dwarf virus (RBDV) in the USA (Ellis et al., 2005; Martin et al., 2013). A survey was conducted to determine if RBDV was also present in Argentinian raspberry fields. Transmission electron microscope observations of leaf dip preparations revealed the presence of spherical particles of 30 nm, resembling those of virus members of the genus Ideaovirus. RBDV was detected in 88 of the 130 plants (68%) tested using double-antibody sandwich ELISA with a specific polyclonal antiserum (Bioreba AG, Switzerland). RNA was extracted with Spectrum™ Plant Total RNA Kit (Sigma-Aldrich, USA) and tested by RT-PCR using a pair of specific primers to the capsid protein gene (Wang et al., 2008). Expected fragments of 825 bp were obtained and custom-sequenced in both directions (Macrogen, Korea). Nucleotide BLAST analysis of the complete sequence obtained (GenBank accession No. KY308191) showed 97% identity at the nucleotide level with virus isolates from Slovenia, Belarus, Switzerland and Japan (EU796088, FR687356, FR687358, AB948216, respectively). To our knowledge, this is the first report of RBDV infecting raspberry in Argentina. Further research is needed to determine the distribution of this virus in the country and its effects on raspberry plant production.Instituto de Patología VegetalFil: Dal Zotto, Angelica. Instituto Nacional de Tecnología Agropecuaria (INTA). Instituto de Patología Vegetal; ArgentinaFil: Cardozo, Andrea. Instituto Nacional de Tecnología Agropecuaria (INTA). Estación Experimental Agropecuaria Bariloche. Agencia De Extensión Rural El Bolsón; ArgentinaFil: Cabrera Mederos, Dariel. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas; ArgentinaFil: Cabrera Mederos, Dariel. Instituto Nacional de Tecnología Agropecuaria (INTA). Instituto de Patología Vegetal; ArgentinaFil: Nome Docampo, Claudia. Instituto Nacional de Tecnología Agropecuaria (INTA). Instituto de Patología Vegetal; ArgentinaFil: Giolitti, Fabian. Instituto Nacional de Tecnología Agropecuaria (INTA). Instituto de Patología Vegetal; ArgentinaFil: Cobelo, Claudia Mónica. nstituto Nacional de Tecnología Agropecuaria (INTA). Estación Experimental Agropecuaria Bariloche. Agencia De Extensión Rural El Bolsón; Argentin

Ultraestructura de órganos de áfidos asociados a la transmisión de fitopatógenos

Presentación en diapositivasLos pulgones (o áfidos) están posicionados como una de las principales plagas de cultivos agrícolas debido a su alto potencial para ocasionar pérdidas económicas en los cultivos, su alta tasa reproductiva, y por ser el grupo más importante de insectos vectores de virus vegetales. El objetivo del presente fue emplear técnicas de microscopía electrónica de transmisión en áfidos para la identificación a nivel ultraestructural de glándulas salivales e intestino medio. Estos son órganos involucrados en la transmisión de virus fitopatógenos. Se estudiaron áfidos de la especie Sitobion avenae, los cuales se fijaron en solución Karnovsky, se postfijaron con tetróxido de osmio, y luego de su deshidratación se incluyeron en resina Epoxy (Sigma). Se realizaron cortes ultrafinos empleando ultramicrótomo Ultrotome® y cuchilla de diamante DiATOME®; posteriormente se contrastaron con acetato de uranilo 2% y se observaron al microscopio electrónico de transmisión PHILIPS EM 208 (FEI®, Países Bajos). Mediante cortes tisulares transversales y longitudinales se obtuvieron imágenes de la ultraestructura de las glándulas salivales (GS) (Fig.1) y del intestino medio (IM) (Fig.2). En los cortes transversales de las GS se indican las vesículas secretorias y la membrana basal (Fig.1 A-B); y en los longitudinales, el conducto salival junto con las microvellosidades que lo rodean y vesículas secretorias (Fig.1 C-D). En los cortes transversales del IM se observa el epitelio intestinal y sus microvellosidades, mitocondrias y la membrana basal (Fig.2 A-B); y en los longitudinales, se puede apreciar con mayor claridad el epitelio uniestratificado del intestino, como así también las microvellosidades (Fig.2 C-D). El reconocimiento de la ultraestructura tisular de órganos involucrados en la transmisión de virus permitirá la localización de estos patógenos in situ, y este conocimiento es crucial para el entendimiento de los mecanismos de transmisión base de las relaciones patógeno-vector, y esto, a su vez, contribuirá al diseño de estrategias de control de dispersión de patógenos que afectan cultivos de importancia agrícola.Instituto de Patología VegetalFil: Trucco, Veronica Milagros. Instituto Nacional de Tecnología Agropecuaria (INTA). Instituto de Patología Vegetal; ArgentinaFil: Trucco, Veronica Milagros. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Unidad de Fitopatología y Modelización Agrícola (UFyMA); ArgentinaFil: Castellanos Collazo, Onias. Fondo para la Investigación Científica y Tecnológica (FONCYT); ArgentinaFil: Castellanos Collazo, Onias. Instituto Nacional de Tecnología Agropecuaria (INTA). Instituto de Patología Vegetal; ArgentinaFil: Cabrera Mederos, Dariel. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Unidad de Fitopatología y Modelización Agrícola (UFyMA); ArgentinaFil: Cabrera Mederos, Dariel. Instituto Nacional de Tecnología Agropecuaria (INTA). Instituto de Patología Vegetal; ArgentinaFil: Giolitti, Fabian. Instituto Nacional de Tecnología Agropecuaria (INTA). Instituto de Patología Vegetal; ArgentinaFil: Giolitti, Fabian. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Unidad de Fitopatología y Modelización Agrícola (UFyMA); ArgentinaFil: Romani, R. UNIPG-DSA3-Unità di Ricerca di Protezione delle Piante; Italia

Distribución de los virus que infectan girasol en Argentina

PosterEl girasol Helianthus annuus L es uno de los principales cultivos oleaginosos de Argentina Las enfermedades causadas por virus son una de las limitaciones para su cultivo y un riesgo para su producción y exportación Los virus que lo infectan en nuestro país son sunflower chlorotic mottle virus SCMoV sunflower ring blotch virus SuRBV sunflower mild mosaic virus ( pelargonium zonate spot virus ( y tobacco streak virus ( El objetivo de este trabajo fue determinar la distribución geográfica de los virus que afectan girasol en Argentina.Instituto de Patología VegetalFil: Castellanos Collazo, Onias. Instituto Nacional de Tecnología Agropecuaria (INTA). Instituto de Patología Vegetal; ArgentinaFil: Cabrera Mederos, Dariel. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Unidad de Fitopatología y Modelización Agrícola (UFyMA); ArgentinaFil: Cabrera Mederos, Dariel. Instituto Nacional de Tecnología Agropecuaria (INTA). Instituto de Patología Vegetal; ArgentinaFil: Trucco, Veronica Milagros. Instituto Nacional de Tecnología Agropecuaria (INTA). Instituto de Patología Vegetal; ArgentinaFil: Trucco, Veronica Milagros. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Unidad de Fitopatología y Modelización Agrícola (UFyMA); ArgentinaFil: Lenardon, Sergio Luis. Instituto Nacional de Tecnología Agropecuaria (INTA). Instituto de Patología Vegetal; ArgentinaFil: Lenardon, Sergio Luis. Universidad Nacional de Río Cuarto. Facultad de Agronomía y Veterinaria. Departamento Biología Agrícola; Argentin

Primer informe de virus infectando cártamo en Argentina

PosterEl cártamo (Carthamus tinctorius L.) es una oleaginosa anual de ciclo inverno-primaveral, adaptada a condiciones de aridez y reconocida por la calidad de su aceite. En Argentina el cártamo se cultiva principalmente en la región del noroeste, y en Buenos Aires y La Pampa en menor medida. Aunque se han informado varios virus infectando esta especie, en Argentina no existen reportes al respecto. En plantaciones experimentales de cártamo realizadas en Bahía Blanca, provincia de Buenos Aires, en el año 2019 se muestrearon plantas con mosaico, necrosis y deformación en distintos órganos, que en algunos casos terminó con la muerte de la planta (Fig. 1). El objetivo fue identificar al agente causal de los síntomas observados.Instituto de Patología VegetalFil: Cabrera Mederos, Dariel. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Unidad de Fitopatología y Modelización Agrícola (UFyMA); ArgentinaFil: Cabrera Mederos, Dariel. Instituto Nacional de Tecnología Agropecuaria (INTA). Instituto de Patología Vegetal; ArgentinaFil: Cerrotta, A. Centro de Recursos Naturales Renovables de la Zona Semiárida (CERZOS). Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas; ArgentinaFil: Lindström, L.I. Universidad Nacional del Sur. Departamento de Agronomía; ArgentinaFil: Trucco, Veronica Milagros. Instituto Nacional de Tecnología Agropecuaria (INTA). Instituto de Patología Vegetal; ArgentinaFil: Trucco, Veronica Milagros. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Unidad de Fitopatología y Modelización Agrícola (UFyMA); ArgentinaFil: Castellanos Collazo, Onias. Instituto Nacional de Tecnología Agropecuaria (INTA). Instituto de Patología Vegetal; ArgentinaFil: Giolitti, Fabian. Instituto Nacional de Tecnología Agropecuaria (INTA). Instituto de Patología Vegetal; ArgentinaFil: Giolitti, Fabian. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Unidad de Fitopatología y Modelización Agrícola (UFyMA); Argentin

Primera detección de alfalfa mosaic virus en plantas de Lavandin Super en Argentina

PosterEn la Argentina, el cultivo de lavandas (incluidos los lavandines) se encuentra principalmente en las provincias de Río Negro, Córdoba, Mendoza, San Luis y Buenos Aires. Su producción tiene amplios destinos, desde la obtención de flores secas y aceite esencial hasta su industrialización en productos de perfumería, cosmética y desodorización ambiental; además, presenta valor ornamental y repelente de insectos. En un cultivo ubicado en la provincia de Córdoba, se detectaron plantas de Lavandín Super (Lavandula angustifolia x latifolia) con síntomas virales de moteado y mosaicos cloróticos, similares a los causados por el alfalfa mosaic virus (AMV; familia: Bromoviridae, género: Alfamovirus). El objetivo del presente fue investigar la presencia de AMV en muestras de Lavandin Super que presentaban los síntomas mencionados. El test serológico (DAS-ELISA) con antisueros comerciales específicos al AMV resultó positivo. Se realizaron RT-PCRs con oligonucleótidos para el gen de la cápside proteica (CP) del AMV y los amplicones obtenidos se enviaron a secuenciar (Macrogen).Instituto de Patología VegetalFil: Trucco, Veronica Milagros. Instituto Nacional de Tecnología Agropecuaria (INTA). Instituto de Patología Vegetal; ArgentinaFil: Trucco, Veronica Milagros. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Unidad de Fitopatología y Modelización Agrícola (UFyMA); ArgentinaFil: Castellanos Collazo, Onias. Instituto Nacional de Tecnología Agropecuaria (INTA). Instituto de Patología Vegetal; ArgentinaFil: Vaghi Medina, Carlos Gaston. Instituto Nacional de Tecnología Agropecuaria (INTA). Instituto de Patología Vegetal; ArgentinaFil: Vaghi Medina, Carlos Gaston. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Unidad de Fitopatología y Modelización Agrícola(UFyMA); ArgentinaFil: Cabrera Mederos, Dariel. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Unidad de Fitopatología y Modelización Agrícola (UFyMA); ArgentinaFil: Cabrera Mederos, Dariel. Instituto Nacional de Tecnología Agropecuaria (INTA). Instituto de Patología Vegetal; ArgentinaFil: Giolitti, Fabian. Instituto Nacional de Tecnología Agropecuaria (INTA). Instituto de Patología Vegetal; ArgentinaFil: Giolitti, Fabian. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Unidad de Fitopatología y Modelización Agrícola (UFyMA); Argentin

Chilto (Solanum betaceum ), especie andina con alto potencial en la agricultura familiar del Norte Argentino

Presentación en diapositivasChilto (Solanum betaceum), es una planta originaria de las Yungas cuyo cultivo tiene escaso desarrollo en nuestro país y se presenta como una alternativa promisoria para la región.Instituto de Patología VegetalFil: Jaramillo Zapata, M.M. Universidad de San Pablo T; ArgentinaFil: Cabrera Mederos, Dariel. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Unidad de Fitopatología y Modelización Agrícola (UFyMA); ArgentinaFil: Cabrera Mederos, Dariel. Instituto Nacional de Tecnología Agropecuaria (INTA). Instituto de Patología Vegetal; ArgentinaFil: Trucco, Veronica Milagros. Instituto Nacional de Tecnología Agropecuaria (INTA). Instituto de Patología Vegetal; ArgentinaFil: Trucco, Veronica Milagros. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Unidad de Fitopatología y Modelización Agrícola (UFyMA); ArgentinaFil: Ortiz, Claudio Manuel. Instituto Nacional de Tecnología Agropecuaria (INTA). Estación Experimental Agropecuaria Yuto; ArgentinaFil: Flores, Ceferino Rene. Instituto Nacional de Tecnología Agropecuaria (INTA). Estación Experimental Agropecuaria Yuto; ArgentinaFil: Giolitti, Fabian. Instituto Nacional de Tecnología Agropecuaria (INTA). Instituto de Patología Vegetal; ArgentinaFil: Giolitti, Fabian. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Unidad de Fitopatología y Modelización Agrícola (UFyMA); Argentin

Detección del potyvirus johnsongrass mosaic virus en Argentina

PosterLos potyvirus son responsables de importantes pérdidas económicas en el cultivo de maíz, uno de los cereales más importante en Argentina. En el norte de la provincia de Córdoba se detectaron plantas con síntomas similares a los ocasionados por potyvirus (Figura 1 El objetivo del presente fue identificar al agente causal de los síntomas observados en maíz.Instituto de Patología VegetalFil: Trucco, Veronica Milagros. Instituto Nacional de Tecnología Agropecuaria (INTA). Instituto de Patología Vegetal; ArgentinaFil: Trucco, Veronica Milagros. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Unidad de Fitopatología y Modelización Agrícola (UFyMA); ArgentinaFil: Cabrera Mederos, Dariel. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Unidad de Fitopatología y Modelización Agrícola (UFyMA); ArgentinaFil: Cabrera Mederos, Dariel. Instituto Nacional de Tecnología Agropecuaria (INTA). Instituto de Patología Vegetal; ArgentinaFil: Castellanos Collazo, Onias. Instituto Nacional de Tecnología Agropecuaria (INTA). Instituto de Patología Vegetal; ArgentinaFil: Vaghi Medina, Carlos Gaston. Instituto Nacional de Tecnología Agropecuaria (INTA). Instituto de Patología Vegetal; ArgentinaFil: Vaghi Medina, Carlos Gaston. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Unidad de Fitopatología y Modelización Agrícola (UFyMA); ArgentinaFil: Lenardon, Sergio Luis. Instituto Nacional de Tecnología Agropecuaria (INTA). Instituto de Patología Vegetal; ArgentinaFil: Lenardon, Sergio Luis. Universidad Nacional de Río Cuarto. Facultad de Agronomía y Veterinaria. Cátedra de Fitopatología; ArgentinaFil: Giolitti, Fabian. Instituto Nacional de Tecnología Agropecuaria (INTA). Instituto de Patología Vegetal; ArgentinaFil: Giolitti, Fabian. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Unidad de Fitopatología y Modelización Agrícola (UFyMA); Argentin