Perfil de conhecimento das mulheres quilombolas sobre o câncer de colo de útero no povoado Santana dos pretos / Knowledge profile of quilombola women about uterine cervical cancer in the village of Santana dos pretos

INTRODUÇÃO: O câncer de colo uterino (CCU) se destaca como uma das mais graves ameaças à vida das mulheres. As comunidades quilombolas vivenciam situações de extrema vulnerabilidade social, consequência das iniquidades nos fatores sociais, econômicos, políticos e de saúde, que irão refletir nos indicadores de saúde, desencadeando desigualdades raciais/de cor na utilização de serviços preventivos. OBJETIVO: Investigar o conhecimento das mulheres negras e quilombolas acerca do câncer de colo de útero (CCU) e formas de prevenção. MÉTODO: Estudo descritivo transversal, desenvolvido na comunidade Quilombola Santana dos Pretos, situa do      em Pinheiro, interior do estado do Maranhão. Participaram da pesquisa 80 mulheres, que se encaixaram nos critérios de inclusão estabelecidos. Para a coleta de dados foi utilizado questionário semi estruturado para levantamento de características sociodemográficas e relativas aos fatores de exposição ao CCU, e para avaliação do conhecimento um segundo instrumento com alternativas “verdadeiras ou falsas” foi aplicado. Os dados foram tabulados pelo programa Excel e analisados pelo Software Stata, versão 16. RESULTADOS: a maior parte das mulheres       continha 40-49 anos (22,5%), era casada (53,7%), parda (60%), com ensino fundamental completo (18,7%), trabalho relacionado a agricultura e pesca (51,2%), renda de até um salário mínimo (82,5%) e católicas (41,2%). As variáveis “último exame Papanicolau”, “recebimento de preventivo” e “número de gravidezes” associaram-se positivamente a realização do exame. O conhecimento foi considerado adequado em mais de 50% da amostra. CONSIDERAÇÕES FINAIS: Conclui- se que as mulheres quilombolas do povoado possuem conhecimento adequado em relação ao exame colpocitológico e os meios de prevenção contra o CCU

Immunophenotypic characterization of acute leukemia at a public oncology reference center in Maranhão, northeastern Brazil

CONTEXT AND OBJECTIVES: The incidence of acute leukemia (AL) subtypes varies according to geographical distribution. The aim here was to determine the incidence of morphological and immunophenotypic AL subtypes in the state of Maranhão, Brazil, and to correlate the expression of aberrant phenotypes in children with acute lymphoblastic leukemia (ALL) with prognostic factors. DESIGN AND SETTING: Single prospective cohort study at a public oncology reference center in Maranhão. METHODS: Seventy AL cases were diagnosed between September 2008 and January 2010. For the diagnosis, complete blood cell counts, myelograms (at diagnosis and at the end of the induction phase), cytochemical analysis and immunophenotyping were performed. RESULTS: Among adult patients (n = 22), the incidence of AL types was: ALL (22.7%) and acute myeloid leukemia (AML) (77.3%). The subtype AML M0 occurred most frequently (29.4%). In children (n = 48), the types were: AML (18.7%), most frequently subtype AML M4 (33.4%); biphenotypic acute leukemia (BAL) (4.2%); and ALL (77.1%), including the subtypes B-ALL (72.9%) and T-ALL (27.1%). Among the children with ALL, there were no statistically significant differences between patients with and without aberrant phenotypes, in relation to hematological parameters and treatment response. CONCLUSION: This work demonstrates that the frequencies of AML M0 cases among adults and T-ALL cases among children in Maranhão were high. This suggests that there may be differences in AML subtype incidence, as seen with ALL subtypes, in different regions of Brazil. No association was found between the expression of aberrant phenotypes and prognostic factors, in children with ALL

DESEMPENHO DE TRÊS LINHAGENS DE FRANGOS DE CORTE DE CRESCIMENTO RÁPIDO

This study aimed to evaluate the performance of three fast-growing broiler strains which currently represent the highest percentage of production on the market. We used a completely randomized design with six treatments in a 3 x 2 factorial design (strain x gender), with 12 repetitions per treatment. The treatments were divided into males of strain A, females of strain A, males of strain B, females of strain B, males of strain C and females of strain C. The performance variables that were analyzed were mean feed consumption (FC), live weight (LW), real feed conversion (FCr), traditional feed conversion (FCt) and viability (Viab.) at seven, 14 and 35 days of age. The results were submitted to variance analysis and Tukey’s test at 5% probability (SAS 9.2). There were no significant interactions between strain and sex for the performance variables at any age. There were no differences between strains in any variable analyzed performance at 35 days of age. However, as expected, analyses of variance showed sex effect on feed consumption, live weight, real feed and traditional feed, where the performance of males was higher than that of females. It was concluded that there are no differences in the performance between the current commercial strains evaluated, where the use of any can enable the same economic performance

Pulmonary complications after non-cardiac surgeries: temporal patterns and risk factors

BACKGROUND: Postoperative complications are the primary determinants of survival following major surgery. We aimed to characterize the early perioperative risk factors for postoperative pulmonary complications (POPCs) in patients undergoing major non-cardiac surgeries. METHODS: This study utilized a multicenter prospective observational cohort design. Adult patients undergoing non-cardiac surgeries and admitted to 21 Brazilian ICUs were screened for inclusion in the study. POPCs were defined as the presence of acute pulmonary oedema, nosocomial pneumonia, and extubation failure in the postoperative period. RESULTS: Of the 581 patients enrolled, 110 (19%) had at least one POPC, of whom 5% had acute pulmonary oedema, 10% extubation failure while 10% had pneumonia. Most cases of pulmonary oedema occurred in the first week after surgery, while pneumonia was more frequently a later occurrence. The mortality rate was significantly higher in the group with POPCs compared to the group of patients without POPCs (62% vs. 11%, RR: 5.1, 95% CI: 4.23–7.69; P < 0.001). A low functional capacity (RR: 4.6, 95% CI: 2.1–10.0), major surgery (RR: 3.6, 95% CI: 1.2–10.7), preoperative hemodynamic instability (RR: 3.4, 95% CI: 1.1–10.6), alcoholism (RR: 3.3, 95% CI: 1.0–10.7), unplanned surgery (RR: 2.3, 95% CI: 1.0–5.2), the SOFA score (RR: 1.1, 95% CI: 1.0–1.2), and increased central venous pressure (RR: 1.1, 95% CI: 1.0–1.1) were independent predictors of POPCs. CONCLUSIONS: Pulmonary complications are common in intensive care units after major non-cardiac surgeries. Awareness of the risk factors for POPCs may help multidisciplinary teams develop strategies to prevent these complications

Association between Type of Fluid Received Prior to Enrollment, Type of Admission, and Effect of Balanced Crystalloid in Critically Ill Adults A Secondary Exploratory Analysis of the BaSICS Clinical Trial

Rationale: The effects of balanced crystalloid versus saline on clinical outcomes for ICU patients may be modified by the type of fluid that patients received for initial resuscitation and by the type of admission. Objectives: To assess whether the results of a randomized controlled trial could be affected by fluid use before enrollment and admission type. Methods: Secondary post hoc analysis of the BaSICS (Balanced Solution in Intensive Care Study) trial, which compared a balanced solution (Plasma-Lyte 148) with 0.9% saline in the ICU. Patients were categorized according to fluid use in the 24 hours before enrollment in four groups (balanced solutions only, 0.9% saline only, a mix of both, and no fluid before enrollment) and according to admission type (planned, unplanned with sepsis, and unplanned without sepsis). The association between 90-day mortality and the randomization group was assessed using a hierarchical logistic Bayesian model. Measurements and Main Results: A total of 10,520 patients were included. There was a low probability that the balanced solution was associated with improved 90-day mortality in the whole trial population (odds ratio [OR], 0.95; 89% credible interval [CrI], 0.66–10.51; probability of benefit, 0.58); however, probability of benefit was high for patients who received only balanced solutions before enrollment (regardless of admission type, OR, 0.78; 89% CrI, 0.56–1.03; probability of benefit, 0.92), mostly because of a benefit in unplanned admissions due to sepsis (OR, 0.70; 89% CrI, 0.50–0.97; probability of benefit, 0.96) and planned admissions (OR, 0.79; 89% CrI, 0.65–0.97; probability of benefit, 0.97). Conclusions: There is a high probability that balanced solution use in the ICU reduces 90-day mortality in patients who exclusively received balanced fluids before trial enrollment. Clinical trial registered with www.clinicaltrials.gov (NCT 02875873)

Effect of Intravenous Fluid Treatment with a Balanced Solution vs 0.9% Saline Solution on Mortality in Critically Ill Patients: The BaSICS Randomized Clinical Trial

Importance: Intravenous fluids are used for almost all intensive care unit (ICU) patients. Clinical and laboratory studies have questioned whether specific fluid types result in improved outcomes, including mortality and acute kidney injury. Objective: To determine the effect of a balanced solution vs saline solution (0.9% sodium chloride) on 90-day survival in critically ill patients. Design, Setting, and Participants: Double-blind, factorial, randomized clinical trial conducted at 75 ICUs in Brazil. Patients who were admitted to the ICU with at least 1 risk factor for worse outcomes, who required at least 1 fluid expansion, and who were expected to remain in the ICU for more than 24 hours were randomized between May 29, 2017, and March 2, 2020; follow-up concluded on October 29, 2020. Patients were randomized to 2 different fluid types (a balanced solution vs saline solution reported in this article) and 2 different infusion rates (reported separately). Interventions: Patients were randomly assigned 1:1 to receive either a balanced solution (n = 5522) or 0.9% saline solution (n = 5530) for all intravenous fluids. Main Outcomes and Measures: The primary outcome was 90-day survival. Results: Among 11052 patients who were randomized, 10520 (95.2%) were available for the analysis (mean age, 61.1 [SD, 17] years; 44.2% were women). There was no significant interaction between the 2 interventions (fluid type and infusion speed; P =.98). Planned surgical admissions represented 48.4% of all patients. Of all the patients, 60.6% had hypotension or vasopressor use and 44.3% required mechanical ventilation at enrollment. Patients in both groups received a median of 1.5 L of fluid during the first day after enrollment. By day 90, 1381 of 5230 patients (26.4%) assigned to a balanced solution died vs 1439 of 5290 patients (27.2%) assigned to saline solution (adjusted hazard ratio, 0.97 [95% CI, 0.90-1.05]; P =.47). There were no unexpected treatment-related severe adverse events in either group. Conclusion and Relevance: Among critically ill patients requiring fluid challenges, use of a balanced solution compared with 0.9% saline solution did not significantly reduce 90-day mortality. The findings do not support the use of this balanced solution. Trial Registration: ClinicalTrials.gov Identifier: NCT02875873

Field and classroom initiatives for portable sequence-based monitoring of dengue virus in Brazil

This work was supported by Decit, SCTIE, Brazilian Ministry of Health, Conselho Nacional de Desenvolvimento Científico - CNPq (440685/ 2016-8, 440856/2016-7 and 421598/2018-2), Coordenação de Aperfeiçoamento de Pessoal de Nível Superior - CAPES - (88887.130716/2016-00), European Union’s Horizon 2020 Research and Innovation Programme under ZIKAlliance Grant Agreement (734548), STARBIOS (709517), Fundação de Amparo à Pesquisa do Estado do Rio de Janeiro – FAPERJ (E-26/2002.930/2016), International Development Research Centre (IDRC) Canada (108411-001), European Union’s Horizon 2020 under grant agreements ZIKACTION (734857) and ZIKAPLAN (734548).Fundação Ezequiel Dias. Laboratório Central de Saúde Pública do Estado de Minas Gerais. Belo Horizonte, MG, Brazil / Latin American Genomic Surveillance Arboviral Network.Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Laboratório de Flavivírus. Rio de Janeiro, RJ, Brazil / Latin American Genomic Surveillance Arboviral Network.Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Laboratório de Flavivírus. Rio de Janeiro, RJ, Brazil Latin American Genomic Surveillance Arboviral Network.Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Laboratório de Flavivírus. Rio de Janeiro, RJ, Brazil.Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Laboratório de Flavivírus. Rio de Janeiro, RJ, Brazil.Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Leônidas e Maria Deane. Laboratório de Ecologia de Doenças Transmissíveis na Amazônia. Manaus, AM, Brazil.Secretaria de Saúde do Estado de Mato Grosso do Sul. Laboratório Central de Saúde Pública. Campo Grande, MS, Brazil.Fundação Ezequiel Dias. Laboratório Central de Saúde Pública do Estado de Minas Gerais. Belo Horizonte, MG, Brazil.Laboratório Central de Saúde Pública Dr. Giovanni Cysneiros. Goiânia, GO, Brazil.Laboratório Central de Saúde Pública Professor Gonçalo Moniz. Salvador, BA, Brazil.Secretaria de Saúde do Estado da Bahia. Salvador, BA, Brazil.Laboratório Central de Saúde Pública Dr. Milton Bezerra Sobral. Recife, PE, Brazil.Laboratório Central de Saúde Pública do Estado de Mato Grosso. Cuiabá, MT, Brazil.Laboratório Central de Saúde Pública do Distrito Federal. Brasília, DF, Brazil.Fundação Ezequiel Dias. Laboratório Central de Saúde Pública do Estado de Minas Gerais. Belo Horizonte, MG, Brazil.Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Laboratório de Flavivírus. Rio de Janeiro, RJ, Brazil.Ministério da Saúde. Secretaria de Vigilância em Saúde. Coordenação Geral dos Laboratórios de Saúde Pública. Brasília, DF, Brazil.Ministério da Saúde. Secretaria de Vigilância em Saúde. Coordenação Geral dos Laboratórios de Saúde Pública. Brasília, DF, Brazil.Organização Pan-Americana da Saúde / Organização Mundial da Saúde. Brasília, DF, Brazil.Organização Pan-Americana da Saúde / Organização Mundial da Saúde. Brasília, DF, Brazil.Organização Pan-Americana da Saúde / Organização Mundial da Saúde. Brasília, DF, Brazil.Ministério da Saúde. Secretaria de Vigilância em Saúde Coordenação Geral das Arboviroses. Brasília, DF, Brazil.Ministério da Saúde. Secretaria de Vigilância em Saúde Coordenação Geral das Arboviroses. Brasília, DF, Brazil.Ministério da Saúde. Secretaria de Vigilância em Saúde Coordenação Geral das Arboviroses. Brasília, DF, Brazil.Ministério da Saúde. Secretaria de Vigilância em Saúde Coordenação Geral das Arboviroses. Brasília, DF, Brazil.Fundação Hemocentro de Ribeirão Preto. Ribeirão Preto, SP, Brazil.Gorgas Memorial Institute for Health Studies. Panama, Panama.Universidade Federal da Bahia. Vitória da Conquista, BA, Brazil.Laboratorio Central de Salud Pública. Asunción, Paraguay.Fundação Oswaldo Cruz. Bio-Manguinhos. Rio de Janeiro, RJ, Brazil.Ministério da Saúde. Secretaria de Vigilância em Saúde. Coordenação Geral dos Laboratórios de Saúde Pública. Brasília, DF, Brazil.Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Laboratório de Flavivírus. Rio de Janeiro, RJ, Brazil.Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Laboratório de Flavivírus. Rio de Janeiro, RJ, BrazilFundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Laboratório de Flavivírus. Rio de Janeiro, RJ, BrazilMinistério da Saúde. Secretaria de Vigilância em Saúde. Instituto Evandro Chagas. Ananindeua, PA, Brasil.Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Laboratório de Flavivírus. Rio de Janeiro, RJ, Brazil.Laboratório Central de Saúde Pública do Estado de Mato Grosso do Sul. Campo Grande, MS, Brazil.Laboratório Central de Saúde Pública do Estado de Mato Grosso do Sul. Campo Grande, MS, Brazil.Instituto de Investigaciones en Ciencias de la Salud. San Lorenzo, Paraguay.Secretaria de Estado de Saúde de Mato Grosso do Sul. Campo Grande, MS, Brazil.Fundação Oswaldo Cruz. Campo Grande, MS, Brazil.Fundação Hemocentro de Ribeirão Preto. Ribeirão Preto, SP, Brazil.Laboratório Central de Saúde Pública Dr. Giovanni Cysneiros. Goiânia, GO, Brazil.Laboratório Central de Saúde Pública Dr. Giovanni Cysneiros. Goiânia, GO, Brazil.Laboratório Central de Saúde Pública Professor Gonçalo Moniz. Salvador, BA, Brazil.Laboratório Central de Saúde Pública Dr. Milton Bezerra Sobral. Recife, PE, Brazil.Laboratório Central de Saúde Pública do Distrito Federal. Brasília, DF, Brazil.Secretaria de Saúde de Feira de Santana. Feira de Santana, Ba, Brazil.Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Laboratório de Flavivírus. Rio de Janeiro, RJ, Brazil.Universidade Federal de Minas Gerais. Instituto de Ciências Biológicas. Belo Horizonte, MG, Brazil.Universidade Federal de Minas Gerais. Instituto de Ciências Biológicas. Belo Horizonte, MG, Brazil.Secretaria de Saúde do Estado de Minas Gerais. Belo Horizonte, MG, Brazil.Hospital das Forças Armadas. Brasília, DF, Brazil.Ministério da Saúde. Secretaria de Vigilância em Saúde. Brasília, DF, Brazil.Ministério da Saúde. Secretaria de Vigilância em Saúde. Brasília, DF, Brazil.Universidade Nova de Lisboa. Instituto de Higiene e Medicina Tropical. Lisboa, Portugal.University of Sydney. School of Life and Environmental Sciences and School of Medical Sciences. Marie Bashir Institute for Infectious Diseases and Biosecurity. Sydney, NSW, Australia.University of KwaZulu-Natal. College of Health Sciences. KwaZulu-Natal Research Innovation and Sequencing Platform. Durban, South Africa.University of Oxford. Peter Medawar Building. Department of Zoology. Oxford, UK.Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Laboratório de Flavivírus. Rio de Janeiro, RJ, Brazil.Universidade Estadual de Feira de Santana. Salvador, BA, Brazil.Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Gonçalo Moniz. Salvador, BA, Brazil.Universidade de Brasília. Brasília, DF, Brazil.Universidade Salvador. Salvador, BA, Brazil.Fundação Ezequiel Dias. Belo Horizonte, MG, Brazil.Fundação Ezequiel Dias. Belo Horizonte, MG, Brazil.Fundação Ezequiel Dias. Belo Horizonte, MG, Brazil.Fundação Ezequiel Dias. Belo Horizonte, MG, Brazil.Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Laboratório de Flavivírus. Rio de Janeiro, RJ, Brazil.Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Laboratório de Flavivírus. Rio de Janeiro, RJ, Brazil.Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Laboratório de Flavivírus. Rio de Janeiro, RJ, Brazil.Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Laboratório de Flavivírus. Rio de Janeiro, RJ, Brazil.Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Laboratório de Flavivírus. Rio de Janeiro, RJ, Brazil.Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Laboratório de Flavivírus. Rio de Janeiro, RJ, Brazil.Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Laboratório de Flavivírus. Rio de Janeiro, RJ, Brazil.Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Laboratório de Flavivírus. Rio de Janeiro, RJ, Brazil.Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Laboratório de Hantaviroses e Rickettsioses. Rio de Janeiro, RJ, Brazil.Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Leônidas e Maria Deane. Laboratório de Ecologia de Doenças Transmissíveis na Amazônia. Manaus, AM, Brazil.Universidade Federal de Minas Gerais. Instituto de Ciências Biológicas. Belo Horizonte, MG, Brazil.Universidade Federal de Minas Gerais. Instituto de Ciências Biológicas. Belo Horizonte, MG, Brazil.Universidade Federal de Minas Gerais. Instituto de Ciências Biológicas. Belo Horizonte, MG, Brazil.Universidade Federal de Minas Gerais. Instituto de Ciências Biológicas. Belo Horizonte, MG, Brazil.Universidade Federal de Minas Gerais. Instituto de Ciências Biológicas. Belo Horizonte, MG, Brazil.Universidade Federal de Minas Gerais. Instituto de Ciências Biológicas. Belo Horizonte, MG, Brazil.Universidade Federal de Minas Gerais. Instituto de Ciências Biológicas. Belo Horizonte, MG, Brazil.Universidade Federal de Minas Gerais. Instituto de Ciências Biológicas. Belo Horizonte, MG, Brazil.Universidade Federal de Minas Gerais. Instituto de Ciências Biológicas. Belo Horizonte, MG, Brazil.Universidade Federal de Minas Gerais. Instituto de Ciências Biológicas. Belo Horizonte, MG, Brazil.Universidade Federal de Minas Gerais. Instituto de Ciências Biológicas. Belo Horizonte, MG, Brazil.Universidade Federal de Minas Gerais. Instituto de Ciências Biológicas. Belo Horizonte, MG, Brazil.Universidade Federal de Minas Gerais. Instituto de Ciências Biológicas. Belo Horizonte, MG, Brazil.Universidade Federal de Minas Gerais. Faculdade de Medicina Veterinária. Belo Horizonte, MG, Brazil.Universidade Federal de Minas Gerais. Faculdade de Medicina Veterinária. Belo Horizonte, MG, Brazil.Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Gonçalo Moniz. Salvador, BA, Brazil.Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Gonçalo Moniz. Salvador, BA, Brazil.Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Gonçalo Moniz. Salvador, BA, Brazil.Laboratório Central de Saúde Pública do Estado do Paraná. Curitiba, PR, Brazil.Laboratório Central de Saúde Pública do Estado de Rondônia. Porto Velho, RO, Brazil.Laboratório Central de Saúde Pública do Estado do Amazonas. Manaus, AM, Brazil.Laboratório Central de Saúde Pública do Estado do Rio Grande do Norte. Natal, RN, Brazil.Laboratório Central de Saúde Pública do Estado de Mato Grosso. Cuiabá, MT, Brazil.Laboratório Central de Saúde Pública Professor Gonçalo Moniz. Salvador, BA, Brazil.Laboratório Central de Saúde Pública Professor Gonçalo Moniz. Salvador, BA, Brazil.Laboratório Central de Saúde Pública Noel Nutels. Rio de Janeiro, RJ, Brazil.Instituto Adolfo Lutz. São Paulo, SP, Brazil.Ministério da Saúde. Secretaria de Vigilância em Saúde. Instituto Evandro Chagas. Ananindeua, PA, Brasil.Ministério da Saúde. Secretaria de Vigilância em Saúde. Instituto Evandro Chagas. Ananindeua, PA, Brasil.Ministério da Saúde. Secretaria de Vigilância em Saúde. Instituto Evandro Chagas. Ananindeua, PA, Brasil.Ministério da Saúde. Secretaria de Vigilância em Saúde. Instituto Evandro Chagas. Ananindeua, PA, Brasil.Universidade de São Paulo. Instituto de Medicina Tropical. São Paulo, SP, Brazil.Universidade de São Paulo. Instituto de Medicina Tropical. São Paulo, SP, Brazil.Universidade de São Paulo. Instituto de Medicina Tropical. São Paulo, SP, Brazil.University of Oxford. Peter Medawar Building. Department of Zoology. Oxford, UK.Instituto Nacional de Enfermedades Virales Humanas Dr. Julio Maiztegui. Pergamino, Argentina.Gorgas Memorial Institute for Health Studies. Panama, Panama.Gorgas Memorial Institute for Health Studies. Panama, Panama.Gorgas Memorial Institute for Health Studies. Panama, Panama.Instituto de Salud Pública de Chile. Santiago, Chile.Instituto de Diagnóstico y Referencia Epidemiológicos Dr. Manuel Martínez Báez. Ciudad de México, México.Instituto Nacional de Enfermedades Infecciosas Dr Carlos G Malbrán. Buenos Aires, Argentina.Ministerio de Salud Pública de Uruguay. Montevideo, Uruguay.Instituto Costarricense de Investigación y Enseñanza em Nutrición y Salud. Tres Ríos, Costa Rica.Instituto Nacional de Investigacion en Salud Publica Dr Leopoldo Izquieta Pérez. Guayaquil, Ecuador.Instituto Nacional de Investigacion en Salud Publica Dr Leopoldo Izquieta Pérez. Guayaquil, Ecuador.Universidade Federal de Pernambuco. Recife, PE, Brazil.Secretaria de Saúde do Estado de Minas Gerais. Belo Horizonte. MG, Brazil.Ministério da Saúde. Secretaria de Vigilância em Saúde. Brasília, DF, Brazil.Ministério da Saúde. Secretaria de Vigilância em Saúde. Brasília, DF, Brazil.Universidade Federal do Rio de Janeiro. Rio de Janeiro, RJ, Brazil.Universidade Federal do Rio de Janeiro. Rio de Janeiro, RJ, Brazil.Universidade Federal do Rio de Janeiro. Rio de Janeiro, RJ, Brazil.Universidade Federal do Rio de Janeiro. Rio de Janeiro, RJ, Brazil.Universidade Federal de Ouro Preto. Ouro Preto, MG, Brazil.Universidade Federal de Ouro Preto. Ouro Preto, MG, Brazil.Universidade Federal de Ouro Preto. Ouro Preto, MG, Brazil.Universidade Federal de Ouro Preto. Ouro Preto, MG, Brazil.Fundação Hemocentro de Ribeirão Preto. Ribeirão Preto, SP, Brazil.Secretaria de Saúde de Feira de Santana. Feira de Santana, BA, Brazil.Universidade Federal de Minas Gerais. Instituto de Ciências Biológicas. Belo Horizonte, MG, Brazil.Brazil experienced a large dengue virus (DENV) epidemic in 2019, highlighting a continuous struggle with effective control and public health preparedness. Using Oxford Nanopore sequencing, we led field and classroom initiatives for the monitoring of DENV in Brazil, generating 227 novel genome sequences of DENV1-2 from 85 municipalities (2015–2019). This equated to an over 50% increase in the number of DENV genomes from Brazil available in public databases. Using both phylogenetic and epidemiological models we retrospectively reconstructed the recent transmission history of DENV1-2. Phylogenetic analysis revealed complex patterns of transmission, with both lineage co-circulation and replacement. We identified two lineages within the DENV2 BR-4 clade, for which we estimated the effective reproduction number and pattern of seasonality. Overall, the surveillance outputs and training initiative described here serve as a proof-of-concept for the utility of real-time portable sequencing for research and local capacity building in the genomic surveillance of emerging viruses