Peptide Affinity Chromatography Applied to Therapeutic Antibodies Purification

The interest in therapeutic monoclonal antibodies (mAbs) has significantly grown in the pharmaceutical industry, exceeding 100 FDA mAbs approved. Although the upstream processing of their industrial production has been significantly improved in the last years, the downstream processing still depends on immobilized protein A affinity chromatography. The high cost, low capacity and short half-life of immobilized protein A chromatography matrices, encouraged the design of alternative short-peptide ligands for mAb purification. Most of these peptides have been obtained by screening combinatorial peptide libraries. These low-cost ligands can be easily produced by solid-phase peptide synthesis and can be immobilized on chromatographic supports, thus obtaining matrices with high capacity and selectivity. Furthermore, matrices with immobilized peptide ligands have longer half-life than those with protein A due to the higher stability of the peptides. In this review the design and synthesis of peptide ligands, their immobilization on chromatographic supports and the evaluation of the affinity supports for their application in mAb purification is described.Fil: Barredo, Gabriela Romina. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Houssay. Instituto de Nanobiotecnología. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Instituto de Nanobiotecnología; ArgentinaFil: Giudicessi, Silvana Laura. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Houssay. Instituto de Nanobiotecnología. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Instituto de Nanobiotecnología; ArgentinaFil: Martínez Ceron, María Camila. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Houssay. Instituto de Nanobiotecnología. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Instituto de Nanobiotecnología; ArgentinaFil: Cascone, Osvaldo. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Houssay. Instituto de Nanobiotecnología. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Instituto de Nanobiotecnología; ArgentinaFil: Camperi, Silvia Andrea. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Houssay. Instituto de Nanobiotecnología. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Instituto de Nanobiotecnología; Argentin

Temporins: An Approach of Potential Pharmaceutic Candidates

Antimicrobial peptides (AMPs), also known as host defense peptides (HDPs), are small and mostlypolycationic molecules that form part of the innate immune response. There are currently more than3000 experimentally reported AMPs. Particularly, in frogs, the temporin family, have beendiscovered as potential AMPs. The aim of this work is to review the latest publications about thisclass of peptides, discuss their properties and make an update of the last studies and new discoveriesin the field.More than 130 temporins have been identified in this family. The most studied temporins aretemporin A (TA), temporin B (TB) and temporin L (TL). These peptides showed antimicrobialactivity against Gram-negative, Gram-positive bacteria and fungi. Since the discovery of temporinsin 1996, several groups of research isolated different peptides from various species of frogs thatwere included as members of this family. Although antimicrobial activity of many temporins has not been analyzed yet, most of them showed antimicrobial and antifungal activities. Combination ofnanotechnology and AMPs as temporins in different antimicrobial treatments could be a promisingalternative for resistance pathogens. These studies demonstrate that, even with the advancement inscientific research on the composition and antimicrobial activity of temporins, further studies arenecessary to wholly understand their components and mechanisms of action.Fil: Romero, Stella Maris. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Centro Científico Tecnológico Conicet - Córdoba. Instituto Multidisciplinario de Biología Vegetal. Universidad Nacional de Córdoba. Facultad de Ciencias Exactas Físicas y Naturales. Instituto Multidisciplinario de Biología Vegetal; ArgentinaFil: Cardillo, Alejandra Beatriz. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Departamento de Microbiología, Inmunología y Biotecnología. Cátedra de Microbiología Industrial y Biotecnología; Argentina. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Houssay. Instituto de Nanobiotecnología. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Instituto de Nanobiotecnología; ArgentinaFil: Martínez Ceron, María Camila. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Houssay. Instituto de Nanobiotecnología. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Instituto de Nanobiotecnología; Argentina. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Departamento de Microbiología, Inmunología y Biotecnología. Cátedra de Microbiología Industrial y Biotecnología; ArgentinaFil: Camperi, Silvia Andrea. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Departamento de Microbiología, Inmunología y Biotecnología. Cátedra de Microbiología Industrial y Biotecnología; Argentina. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Houssay. Instituto de Nanobiotecnología. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Instituto de Nanobiotecnología; ArgentinaFil: Giudicessi, Silvana Laura. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Departamento de Microbiología, Inmunología y Biotecnología. Cátedra de Microbiología Industrial y Biotecnología; Argentina. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Houssay. Instituto de Nanobiotecnología. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Instituto de Nanobiotecnología; Argentin

Fully automated screening of a combinatorial library to avoid false positives: application to tetanus toxoid ligand identification

Peptide ligands are widely used in protein purification by affinity chromatography. Here, we applied a fully automated two-stage library screening method that avoids false positive peptidyl-bead selection and applied it to tetanus toxoid purification. The first library screening was performed using only sulforhodamine (a fluorescent dye), and fluorescent beads were isolated automatically by flow cytometry and discarded. A second screening was then performed with the rest of the library, using the target protein (tetanus toxoid)-rhodamine conjugate. This time, fluorescent beads were isolated, and peptide sequences were identified by matrix-assisted laser desorption/ionization tandem mass spectrometry. Those appearing with greater frequency were synthesized and immobilized on agarose to evaluate a range of chromatographic purification conditions. The affinity matrix PTx1-agarose (Ac-Leu-Arg-Val-Tyr-His-Gly-Gly-Ala-Gly-Lys-agarose) showed the best performance when 20 mM sodium phosphate, 0.05% Tween 20, pH 5.9 as adsorption buffer and 100 mM Tris-HCl, 100 mM NaCl, pH 8.0 as elution buffer were used. A pure tetanus toxoid (Ttx) was loaded on a chromatographic column filled with the PTx1 matrix, and 96% adsorption was achieved, with a Kd of 9.18 ± 0.07 nmol/L and a qm of 1.31 ± 0.029 μmol Ttx/mL matrix. Next, a Clostridium tetani culture supernatant treated with formaldehyde (to obtain the toxoid) was applied as a sample. The sodium dodecyl sulfate polyacrylamide gel electrophoresis analysis showed a band, identified by electrospray ionization mass spectrometry as the Ttx, that appeared only in the elution fraction, where an S-layer protein was also detected.Fil: Martínez Ceron, María Camila. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Houssay. Instituto de Nanobiotecnología. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Instituto de Nanobiotecnología; ArgentinaFil: Avila, Lucía. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Houssay. Instituto de Nanobiotecnología. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Instituto de Nanobiotecnología; ArgentinaFil: Giudicessi, Silvana Laura. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Houssay. Instituto de Nanobiotecnología. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Instituto de Nanobiotecnología; ArgentinaFil: Minoia, Juan Mauricio. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Houssay. Instituto de Nanobiotecnología. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Instituto de Nanobiotecnología; ArgentinaFil: Fingermann, Matias. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Departamento de Microbiología, Inmunología y Biotecnología. Cátedra de Microbiología Industrial y Biotecnología; Argentina. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas; ArgentinaFil: Camperi, Silvia Andrea. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Houssay. Instituto de Nanobiotecnología. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Instituto de Nanobiotecnología; ArgentinaFil: Albericio, Fernando. Universidad de Barcelona; EspañaFil: Cascone, Osvaldo. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Houssay. Instituto de Nanobiotecnología. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Instituto de Nanobiotecnología; Argentin

Friendly Strategy to Prepare Encoded One Bead−One Compound Cyclic Peptide Library

One bead−one peptide libraries allow the screening of suitable ligands for any target protein. Short cyclic peptides are ideal ligands for affinity chromatography because of their high affinity and selectivity for the target protein and stability against proteases. We designed a library synthesis strategy to facilitate the identification of cyclic peptides by MS consisting of (a) sequential incorporation of a mixture of Fmoc-Ala-OH and Fmoc-Asp[2-phenylisopropyl (OPp)]-OH (15:85) to Gly-oxymethylbenzamide-ChemMatrix (Gly-HMBA-CM) resin, (b) synthesis of the combinatorial library on the resin by the divide−couple−recombine method, (c) removal of OPp with 4% TFA, (d) peptide cyclization on solid phase through side-chain Asp and amino terminus, and (e) removal of side chain protecting groups with a 95% TFA cocktail. Peptides were cleaved from the beads with ammonia and the linear code was sequenced by MALDI-TOF MS/MS. The high capacity of ChemMatrix resin together with the sensitivity of MS allows code sequencing from a single bead.Fil: Giudicessi, Silvana Laura. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica; Argentina; Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas; Argentina;Fil: Gurevich Messina, Juan Manuel. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Departamento de Microbiología, Inmunología y Biotecnología; Argentina;Fil: Martínez Ceron, María Camila. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica; Argentina; Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas; Argentina;Fil: Erra Balsells, Rosa. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Ciudad Universitaria. Centro de Investigaciones en Hidratos de Carbono; Argentina; Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas; Argentina;Fil: Albericio, F.. Instituto de Investigación Biomédica; España; Universidad de Barcelona; España; Centro de Investigación Biomédica en Red en Bioingeniería, Biomateriales y Nanomedicina; España;Fil: Cascone, Osvaldo. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Departamento de Microbiología, Inmunología y Biotecnología; Argentina; Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas; Argentina;Fil: Camperi, Silvia Andrea. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Departamento de Microbiología, Inmunología y Biotecnología; Argentina; Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas; Argentina

Immobilized short peptides chromatography applied to therapeutic antibodies purification

Los anticuerpos monoclonales (mAbs) tienen un enorme y creciente interés en la industria farmacéutica. Actualmente hay más de 70 mAbs terapéuticos aprobados por la Food and Drug Administration (FDA). Su proceso de producción industrial consiste en una etapa de crecimiento de las células productoras del mAb en un biorreactor y en una etapa de recuperación y purificación del mAb a partir del caldo de cultivo celular. La cromatografía de afinidad (AC) con proteína A inmovilizada es el método de elección para su purificación. Ésta se basa en un reconocimiento molecular entre la proteína de interés y la proteína A inmovilizada sobre un soporte. Sin embargo, las matrices con proteína A inmovilizada son costosas, de baja capacidad, lábiles y de corta vida útil. Las desventajas de la proteína A han incentivado el desarrollo de métodos de purificación alternativos con péptidos cortos sintéticos (entre 5 y12 aminoácidos) como ligandos de afinidad. Éstos son ideales para separaciones industriales por afinidad ya que pueden ser producidos a un costo muy inferior a los ligandos proteicos y en forma aséptica bajo normas GMP. A su vez, son mucho más estables porque no requieren de una estructura terciaria específica para mantener su actividad biológica y las interacciones entre los péptidos y las proteínas son generalmente moderadas, lo que resulta en condiciones suaves de elución. La presente revisión describe:1. El desarrollo de ligandos peptídicos con afinidad por anticuerpos; 2. La síntesis y evaluación de soportes de afinidad con ligandos peptídicos inmovilizados; y 3. Las aplicaciones de las matrices de afinidad con péptidos inmovilizados en la purificación de anticuerpos.Monoclonal antibodies (mAbs) have an enormous and growing interest in the pharmaceutical industry. Currently, there are more than 70 therapeutic mAbs approved by the Food and Drug Administration (FDA). Its industrial production process consists of a first step of growing the mAb-producing cells in a bioreactor and a step of recovering and purifying the mAb from the cell culture broth. Affinity chromatography (AC) with immobilized protein A is the method of choice for their purification. Itis based on a molecular recognition between the antibody and protein A immobilized on a support. However, matrices with immobilized protein A are expensive, with low capacity, labile and of shorthalf-life. The disadvantages of protein A have encouraged the development of alternative purification methods with synthetic short peptides (from 5 to 12 amino acids) as affinity ligands. Peptides are ideal for affinity industrial separations since they can be synthesized at lower cost than proteins and in an aseptic way under GMP standards. Furthermore, they are much more stable because they do not require a specific tertiary structure to maintain their biological activity. Also, interactions between peptides and proteins are generally moderate, resulting in mild elution conditions. The present review describes the development of peptide ligands with affinity for antibodies, the synthesis and evaluation of affinity supports with immobilized peptide ligands and the applications of affinity matrices with immobilized peptides to antibodies purification.Fil: Barredo, Gabriela Romina. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Houssay. Instituto de Nanobiotecnología. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Instituto de Nanobiotecnología; ArgentinaFil: Giudicessi, Silvana Laura. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Houssay. Instituto de Nanobiotecnología. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Instituto de Nanobiotecnología; ArgentinaFil: Saavedra, Soledad Lorena. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Houssay. Instituto de Nanobiotecnología. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Instituto de Nanobiotecnología; ArgentinaFil: Martínez Ceron, María Camila. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Houssay. Instituto de Nanobiotecnología. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Instituto de Nanobiotecnología; ArgentinaFil: Cascone, Osvaldo. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Houssay. Instituto de Nanobiotecnología. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Instituto de Nanobiotecnología; ArgentinaFil: Camperi, Silvia Andrea. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Houssay. Instituto de Nanobiotecnología. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Instituto de Nanobiotecnología; Argentin

Protocol for bevacizumab purification using Ac-PHQGQHIGVSK-agarose

Bevacizumab is a monoclonal antibody, produced in CHO cells, used for the treatment of many human cancers. It is an anti-vascular endothelial growth factor (anti-VEGF) that blocks the growth of tumor blood vessels. Nowadays its purification is achieved by affinity chromatography (AC) using protein A which is a very expensive ligand. On the other hand, the peptide Ac-PHQGQHIGVSK contained in the VEGF fragment binds bevacizumab with high affinity. This short peptide ligand has higher stability and lower cost than protein A and it can be prepared very easily by solid phase peptide synthesis. The present protocol describes the synthesis of Ac-PHQGQHIGVSK-agarose and its use for affinity chromatography purification of bevacizumab from a clarified CHO cell culture.?Ac-PHQGQHIGVSK-agarose capacity and selectivity are equivalent to those of protein A matrices.?The peptide ligand shows a greater stability and lower cost. The lack of Trp, Met or Cys in the peptide ligand prevents its oxidation and extends the useful life of the chromatographic matrix.?Mild conditions used during chromatography preserved the integrity of bevacizumab.Fil: Barredo, Gabriela Romina. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Houssay. Instituto de Nanobiotecnología. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Instituto de Nanobiotecnología; ArgentinaFil: Giudicessi, Silvana Laura. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Houssay. Instituto de Nanobiotecnología. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Instituto de Nanobiotecnología; ArgentinaFil: Martínez Ceron, María Camila. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Houssay. Instituto de Nanobiotecnología. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Instituto de Nanobiotecnología; ArgentinaFil: Saavedra, Soledad Lorena. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Houssay. Instituto de Nanobiotecnología. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Instituto de Nanobiotecnología; ArgentinaFil: Rodriguez, Santiago. No especifíca;Fil: Filgueira Risso, Lucas. No especifíca;Fil: Erra Balsells, Rosa. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Ciudad Universitaria. Centro de Investigaciones en Hidratos de Carbono. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Centro de Investigaciones en Hidratos de Carbono; ArgentinaFil: Mahler, Gustavo. No especifíca;Fil: Albericio, Fernando. Universidad de Barcelona; EspañaFil: Cascone, Osvaldo. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Houssay. Instituto de Nanobiotecnología. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Instituto de Nanobiotecnología; ArgentinaFil: Camperi, Silvia Andrea. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Houssay. Instituto de Nanobiotecnología. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Instituto de Nanobiotecnología; Argentin

Protein purification by affinity chromatography with peptide ligands selected from the screening of combinatorial libraries

Affinity chromatography is likely to play an everincreasing important role in protein purification as it is the most effective method for the direct isolation and purification of biomolecules from complex mixtures. Successful separation by affinity chromatography requires the availability of a selective ligand. Short peptides are excellent ligands for affinity separations as they have higher selectivity than dyes and metals, they are more stable than antibodies to elution and cleaning conditions, and they are not likely to cause an immune response in case of leakage into the product. Furthermore, the combinatorial synthesis of peptide libraries allows obtaining millions of peptides, thus greatly facilitating the discovery of suitable affinity ligands for any given protein of interest. After screening of the library the peptides with affinity for the target protein can be identified, typically by Edman microsequencing or mass spectrometry in the case of synthetic libraries, or by DNA sequencing in the case of biological libraries. Numerous proteins have been purified in only one step with chromatographic matrices made of peptide-ligands selected from the screening of combinatorial libraries, attached to different supports.Fil: Camperi, Silvia Andrea. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Departamento de Microbiología, Inmunología y Biotecnología. Cátedra de Microbiología Industrial y Biotecnología; Argentina. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas; ArgentinaFil: Marani, Mariela Mirta. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Departamento de Microbiología, Inmunología y Biotecnología. Cátedra de Microbiología Industrial y Biotecnología; Argentina. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas; ArgentinaFil: Martínez Ceron, María Camila. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Departamento de Microbiología, Inmunología y Biotecnología. Cátedra de Microbiología Industrial y Biotecnología; Argentina. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas; ArgentinaFil: Albericio, Fernando. Universidad de Barcelona; EspañaFil: Cascone, Osvaldo. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Departamento de Microbiología, Inmunología y Biotecnología. Cátedra de Microbiología Industrial y Biotecnología; Argentina. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas; Argentin

Dyes with High Affinity for Diphtheria Toxoid as Promising Affinity Ligands for its Industrial Purification

Background: Usually, diphteria toxin concentration and purification are performed after detoxification due to its high danger. In this work, an alternative diphteria toxoid (DTx) concentration and purification method by affinity chromatography is proposed.Methods: Screening of 19 triazinic dyes for selecting the best ligand for DTx concentration and purification by affinity chromatography was performed.Results: Cibacron Blue 3GA and Reactive Green 10 showed the highest affinity for DTx. The adsorption isotherms of DTx on Cibacron Blue 3GA-Sepharose and Reactive Green 19-Sepharose showed a good fit of experimental data to a Langmuir-type isotherm and allowed the calculation of a maximum capacity (qm) of 1.21 ± 0.12 mol DTx/mL matrix and 1.44 ± 0.14 mol DTx/mL matrix, respectively and a dissociation constant (Kd) of 9.75 ± 2.90 M and 1.58 ± 0.38 M, respectively.Blue R-HE-Sepharose isotherm did not show a good fit of experimental data to a Langmuirtype isotherm due to its high Kd.Conclusion: Cibacron Blue 3GA and Reactive Green 10 are promising ligands for concentration and purification of DTx by affinity chromatography.Fil: Martínez Ceron, María Camila. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Houssay. Instituto de Nanobiotecnología. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Instituto de Nanobiotecnología; ArgentinaFil: Giudicessi, Silvana Laura. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Houssay. Instituto de Nanobiotecnología. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Instituto de Nanobiotecnología; ArgentinaFil: Dokmetjian, Jose Christian. Dirección Nacional de Instituto de Investigación. Administración Nacional de Laboratorio e Instituto de Salud “Dr. C. G. Malbrán”; ArgentinaFil: Camperi, Silvia Andrea. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Houssay. Instituto de Nanobiotecnología. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Instituto de Nanobiotecnología; ArgentinaFil: Cascone, Osvaldo. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Houssay. Instituto de Nanobiotecnología. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Instituto de Nanobiotecnología; Argentin

Péptidos con capacidad de inhibir componentes tóxicos del veneno de serpientes

Los accidentes causados por serpientes venenosas constituyen un problema de salud pública, principalmente en los países subdesarrollados. En la mayoría de ellos, hay deficiencias en la producción y distribución de antivenenos. Actualmente el único tratamiento que se utiliza ante el envenenamiento por mordedura de serpientes es la aplicación de antídotos compuestos por inmunoglobulinas obtenidas tras la inmunización de caballos u ovejas con veneno de serpientes. Éstos son de baja estabilidad, lo que dificulta su distribución hacia lugares remotos donde muchas veces son requeridos. Un antídoto basado en péptidos cortos que inhiban componentes específicos de los venenos de serpientes sería de gran utilidad ya que estos últimos son más estables que las proteínas y más fáciles de sintetizar. Además, pueden ser modificados químicamente para mejorar su estabilidad, solubilidad, afinidad y selectividad. En este artículo se resumen las diferentes estrategias elegidas para la identificación de dichos péptidos. Palabras Clave: antídotos, inhibidores, péptidos, mordedura de víboras, toxinas.Fil: Saavedra, Soledad Lorena. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Houssay. Instituto de Nanobiotecnología. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Instituto de Nanobiotecnología; Argentina. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica; ArgentinaFil: Giudicessi, Silvana Laura. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Houssay. Instituto de Nanobiotecnología. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Instituto de Nanobiotecnología; Argentina. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica; ArgentinaFil: Camperi, Silvia Andrea. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Houssay. Instituto de Nanobiotecnología. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Instituto de Nanobiotecnología; Argentina. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica; ArgentinaFil: Cascone, Osvaldo. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Houssay. Instituto de Nanobiotecnología. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Instituto de Nanobiotecnología; Argentina. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica; Argentina. Dirección Nacional de Instituto de Investigación. Administración Nacional de Laboratorio e Instituto de Salud “Dr. C. G. Malbrán”; ArgentinaFil: Martínez Ceron, María Camila. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Houssay. Instituto de Nanobiotecnología. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Instituto de Nanobiotecnología; Argentina. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica; Argentin