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    Phenolic Composition, Antibacterial And Antioxidant Activities Of Brazilian Red Propolis [composição Fenólica, Atividade Antibacteriana E Antioxidante Da Própolis Vermelha Brasileira]

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    Propolis is a resinous hive product collected by honeybees from various plant sources. It has a complex chemical composition, constituted by various phenolic compounds. Extracts of increasing polarity (n-hexane, chloroform, and ethanol) were obtained from a sample of red propolis from the state of Alagoas. Assays were carried out for determination of contents of phenolics, along with antibacterial and antioxidant activities. The EEP, fractions and sub-fractions showed strong biological activities and were related with phenolic the content compounds contents. The sub-fractions were more bioactive than the EEP and fractions, demonstrating that the antioxidant and antibacterial activities are not a result of synergistic effect between the various chemical compounds in propolis.32615231527Ghisalberti, E.L., (1979) Bee World, 60, p. 59Park, Y.K., Ikegaki, M., Alencar, S.M., Moura, F.F., (2000) Honeybee Sci., 21, p. 85Castro, M.L., Cury, J.A., Rosalen, P.L., Alencar, S.M., Ikegaki, M., Duarte, S., Koo, H., (2007) Quim.Nova, 30, p. 1512Soares, S.E., (2002) Rev. Nutr., 15, p. 71Alencar, S.M., Oldoni, T.L.C., Castro, M.L., Cabrai, I.S.R., Costaneto, C.M., Cury, J.A., Rosalen, P.L., Ikegaki, M., (2007) J. Ethnopharmacol, 113, p. 278Trusheva, B., Popova, B., Bankova, V., Simova, S., Marcucci, M.C., Miorin, P.L., Pasin, R.F., (2006) Evid-Based Complement. Altern., 3, p. 249Li, F., Awale, S., Tezuka, Y., Kadota, S., (2008) Bioorg. Medic. Chem., 1, p. 181Salatino, A., Teixeira, E.W., Negri, G., Message, D., (2005) Evid-Based Complement. Altern., 2, p. 33Teixeira, E.W., Message, D., Negri, G., Salatino, A., (2006) Quim. Nova, 29, p. 245Sforcin, J.L., Fernandes, J., Lopes, C.A.M., Bankova, V., Funari, S.R.C., (2000) J. Ethnopharmacol., 73, p. 243Menezes, H., (2005) Arq. Inst. Biol., 72, p. 405Bankova, V.S., Castro, S.L., Marcucci, M.C., (2000) Apidologie, 31, p. 3Fernandes, A., Lopes, M.M.R., Colombari, V., Monteiro, A.C.M., Vieira, E.P., (2006) Cienc. Rural, 36, p. 294Basim, E., Baim, H., Zcan, M., (2006) J. Food. Eng., 77, p. 992Latif, M.M.M.A., Windle, H.J., Homasany, B.S., Sabra, K., (2005) Braz. J. Pharmacol., 146, p. 1139Duarte, S., Koo, H., Bowen, W.H., Hayacibara, M.F., Cury, J.A., Ikegaki, M., Park, Y.K., Rosalen, P.L., (2003) Biol Pharm. Bull., 26, p. 527Hayacibara, M., Koo, H., Rosalen, P.L., Duarte, S., Franco, E.M., Bowen, W.H., Ikegaki, M., Cury, J.A., (2005) J. Ethnopharmacol., 101, p. 371Chen, C.N., Wu, C.L., Shy, H.S., Lin, J.K., (2003) J. Nat. Prod., 66, p. 503Choi, Y.M., Nohb, D.O., Choc, S.Y., Suhd, H.J., Kimd, K.M., Kim, J.M., (2006) LWT- Food Sci.Technol., 39, p. 756Awale, S., Li, F., Onozuka, H., Esumi, H., Tekuza, Y., Kadota, S., (2008) Bioorg. Medic. Chem., 16, p. 181Paulino, N., Dantas, A.P., Bankova, V., Longhi, D.T., Scremin, A., Castro, S.L., Calixto, J.B., (2003) J. Pharmacol. Sci., 93, p. 307Park, J.H., Lee, J.K., Kim, H.S., Chung, S.T., Eom, J.H., Kim, K.A., Chung, S.J., Oh, H.Y., (2004) Int. Immunopharmacol., 4, p. 429Sforcin, J.M., Orsi, R.O., Banková, V., (2005) J. Ethnopharmacol., 98, p. 310Nagai, T., Inoue, R., Inoue, H., Suzuki, N., (2003) Food Chem., 80, p. 29Kumazawa, S., Hamasaka, T., Nakayama, T., (2004) Food Chem., 84, p. 329Aso, K., Kanno, S.I., Tadano, T., Satoh, S., Ishikawa, M., (2004) Biol. Pharm. Bull., 27, p. 727Bankova, V., (2005) J. Ethnopharmacol., 100, p. 114Silva, B.B., Rosalen, P.L., Cury, J.A., Ikegaki, M., Souza, V.C., Esteves, A., Alencar, S.M., (2008) Evid-Based Complement. Altem., 5, p. 313Singleton, V.L., Orthofer, R., Lamuela-Raventos, R.M., (1999) Meth. Enzymol., 299, p. 152Brand, W., Cuvelier, M.E., Berset, C., (1995) LWT- Food Sci. Technol., 28, p. 25Ahn, M.R., Kumazawa, S., Hamasaka, T., Bang, K.S., Nakayama, T., (2004) J. Agric. Food Chem., 52, p. 7286Cabrai, I.S.R., (2008) Dissertação de Mestrado, , Universidade de São Paulo, BrasilWoisky, R.G., Salatino, A., (1998) J. Apicultural Res., 37, p. 99Halliwell, B., Gutteridge, J.M.C., (2007) Free Radicals in Biology and Medicine, 4th Ed., , Oxford: UKWang, B.J., Lien, Y.H., Yu, Z.R., (2004) Food Chem., 86, p. 237Moraes-de-Souza, R.A., Oldoni, T.L.C., Regitano-D'Arce, M., Alencar, S.M., (2008) Cienc. Tecnol Aliment., 6, p. 41Vasco, C., Ruales, J., Kamal-Eldin, A., (2008) Food Chem., 111, p. 816Lim, Y.Y., Lim, T.T., Tee, J.J., (2007) Food Chem., 103, p. 1003Han, J., Weng, X., Bi, K., (2008) Food Chem., 106, p. 2Atmani, D., Chaher, N., Berboucha, M., Ayouni, K., Lounis, H., Boudaoud, H., Debbache, N., Atmani, D., (2009) Food Chem., 112, p. 303Arnao, M.B., (2000) Trends Food Sci. Technol., 11, p. 419Blois, M.S., (1958) Nature, 181, p. 1199Marco, G.J., (1968) J. Am. Oil Chem. Soc., 45, p. 594Moure, A., Cruz, J.M., Franco, D., Dominguez, J.M., Sineiro, J., Dominguez, H., Nunez, M.J., Parajo, J.C., (2001) Food Chem, 72, p. 145Koleva, T.A., Van Beek, T.A., Linssen, J.P.H., De Groot, A., Evstatieva, L.N., (2002) Phytochem. Anal., 13, p. 8Oldoni, T.L.C., (2007) Dissertação de Mestrado, , Universidade de São Paulo, BrasilRice-Evans, C.A., Nicholas, J.M., Paganga, G., (1996) Free Radical Biol. Med, 20, p. 93

    Atividade biológica do extrato hidroalcoólico de Bauhinia forficata Link sobre Herpetomonas samuelpessoai (Galvão.) Roitman

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    Inúmeros esforços têm sido dirigidos para conferir às plantas seu real papel e valor na terapia. Este estudo teve como objetivo avaliar a atividade antimicrobiana, mutagênica, toxicidade, e os efeitos no crescimento e diferenciação de Herpetomonas samuelpessoai, do extrato hidroalcoólico de Bauhinia forficata. Para avaliar a atividade antimicrobiana foi realizado o teste de difusão em ágar, bem como a determinação das concentrações inibitória (CIM) e microbicida mínimas (CMM). O potencial clastogênico e/ou aneugênico, in vivo, foi avaliado usando o teste do micronúcleo em medula óssea de camundongos Swiss albinus. Foi determinada também a dose letal média (DL50). O extrato inibiu o crescimento de oito bactérias, mostrando-se mais ativo para Gram-positivas e não foi eficiente para os fungos, tendo sido ativo nas concentrações de 2000, 1000, 500 e 250 mg/mL contra os microrganismos testados. Os resultados mostraram que nas concentrações administradas (500, 1000 e 2000 mg/Kg), não houve aumento estatisticamente significativo de micronúcleos. Não houve ação no crescimento e diferenciação de Herpetomonas samuelpessoai nas concentrações testadas. Com relação a DL50, o extrato não apresentou toxicidade
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