Mapping of Genes Involved in Glutathione, Carbohydrate and COR14b Cold Induced Protein Accumulation during Cold Hardening in Wheat

Using some of the chromosome substitution lines developed from the crosses of the donor Cheyenne to Chinese Spring we showed that the accumulation of water soluble carbohydrates during different stages of hardening was time dependent. Moreover there was a significant correlation between the rate of carbohydrate accumulation and the frost tolerance. The expression and regulation of a wheat gene homologous to the barley cold regulated cor14b gene was compared in frost sensitive and frost tolerant wheat genotypes at different temperatures. Studies made with chromosome substitution lines showed that the threshold induction temperature polymorphism of the cor14b wheat homologous gene was controlled by loci located on chromosome 5A of wheat, while cor14b gene was mapped, in Triticum monococcum, onto the long arm of chromosome 2Am. Our study on the effect of cold hardening on glutathione (GSH) metabolism showed that chromosome 5A of wheat has an influence on the GSH accumulation and on the ratio of reduced and oxidised glutathione as part of a complex regulatory function during cold hardening. In addition, the level of increase in GSH content during hardening may indicate the degree of the frost tolerance of wheat

Superoxide dismutase activity in transgenic canola

Superoxide dismutase (SOD) activity was investigated in leaves of transgenic canola plants which expressed heterologous genes of different origin, namely 1—herbicide resistance genes (bar and simultaneously bar and epsps); 2—DesC desaturase gene (desC) of cyanobacterium Synechococcus vulcanus; 3—human interferon α2b gene (huIFN-α2b); 4—esxA::fbpBΔTMD fused gene, encoding ESAT-6 and Ag85b Mycobacterium tuberculosis proteins, inducing immune response against tuberculosis; 5—cyp11A1 gene of cytochrome P450SCC from bovine adrenal cortex mitochondria. Introduction of herbicide resistance genes as well as desaturase gene of cyanobacterium and mycobacterium’s genes did not change leaf SOD activity. At the same time it was shown that cyp11A1 and huIFN-α2b canola have increased leaf SOD activity up 58 and 33%, respectively, compared with control ones in non-stress conditions. It may be a prerequisite for improved resistance of these plants to the stressors of different origin.Исследована активность супероксиддисмутазы (СОД (в листьях трансгенных растений рапса, экспрессирующих гетерологичные гены различного происхождения, а именном: 1) гены устойчивости к гербицидам (bar и одновременно bar и epsps); 2) ген де-сатуразы DesC (desC) цианобактерии Synechococcus vulcanus; 3) ген α2b интерферона человека (huIFN-α2b); 4) слитый ген esxA::fbpBΔTMD, кодирующий белки ESAT-6 и Ag85b Mycobacterium tuberculosis, которые индуцируют иммунный ответ против туберкулеза; 5) ген cyp11A1 цитохрома P450SCC митохондрий коры надпочечников быка. Введение генов устойчивости к гербицидам, а также гена десатуразы цианобак-терии и генов микобактерии не изменяло активности СОД в листьях рапса. Вместе с тем показано, что в условиях без стресса у растений с трансгенами cyp11A1 и huIFN-α2b активность СОД повышена до 58 и 33 % соответственно в сравнении с контролем. Это может быть предпосылкой для увеличения их устойчивости к стрессорам различного происхождения.Досліджено активність супероксиддисмутази (СОД) в листках трансгенних рослин ріпаку, що експресують гетерологічні гени різного походження, а саме: 1) гени стійкості до гербіцидів (bar і одночасно bar і epsps); 2) ген десатурази DesC (desC) ціанобактерії Synechococcus vulcanus; 3) ген α2b інтерферона лю-дини (huIFN-α2b); 4) злитий ген esxA::fbpBΔTMD, що кодує білки ESAT-6 і Ag85b Mycobacterium tubercu-losis, які індукують імунну відповідь проти тубер-кульозу; 5) ген cyp11A1 цитохрома P450SCC міто-хондрій кори надниркових залоз великої рогатої худоби. Введення генів стійкості до гербіцидів, а також гена десатурази ціанобактерії та генів мікобактерії не змінювало активності СОД в листках ріпаку. Разом з тим встановлено, що у рослин з трансгенами cyp11A1 і huIFN-α2b в умовах без стресу активність СОД підвищена до 58 і 33 % відповідно в порівнянні з контролем. Це може бути передумовою для підвищення їхньої стійкості до стресорів різного походження