Examination of molecular mechanism for metabolism of lactose and D-galactose in the filamentous fungus Aspergillus nidulans

A bgaD/lacpA génpár élettani induktora a D-galaktóz, és nem a D-galaktóz lebontás valamelyik köztese. A LacpA és a LacpB transzporterek együttesen felelősek a laktóz sejtbe juttatásáért. A lacpA és lacpB gének laktózzal és D-galaktózzal indukálhatók, de a cellobióz és a szoforóz csak a lacpB gént indukálják. A lacpB géntermék élettani szerepe a laktóz és a cellobióz transzportja.Our experiments showed that D-galactose catabolism – either via the canonical Leloir pathway or the alternative oxido-reductive pathway – was not necessery for the induction of the bgaD-lacpA gene cluster to occur in the presence of D-glalctose. The LacpA and LacpB transporters appear to be jointly responsible for lactose uptake in A. nidulans under physiological conditions. The lacpA and lacpB are strongly induced by lactose and D-galactose but just the lacpB gene is induced by cellobiose and sophorose. The physiological role of the lacpB gene product are the transport of lactose and cellobiose.N

Tévút az ukrán nyelvpolitikában

Ukrajna Legfelsőbb Tanácsa 2019. április 25-én fogadta el „Az ukrán mint államnyelv működésének biztosításáról” című törvényt. A jogszabály kötelezően előírja az államnyelv használatát a társadalmi élet minden területén. A 2014–2019 között az országot kormányzó politikai tábor akkor fogadott el törvényt az államnyelv védelméről, amikor (egy vesztes elnökválasztás után) át kellett adniuk a hatalmat. A törvény nem oldja fel a nyelvi kérdés körül kialakult társadalmi feszültséget. Ellenkezőleg: a jogszabály további konfliktusok forrása. Ez az elemzés azt mutatja be, hogy a törvényben foglalt rendelkezések nem egyeztethetők össze Ukrajna nemzetközi kötelezettségvállalásaival. A törvény tévút az ukrán nyelvpolitikában

Study on the glutathione metabolism of the filamentous fungus Aspergillus nidulans

Yeast protein sequence-based homology search for glutathione (GSH) metabolic enzymes and GSH transporters demonstrated that Aspergillus nidulans has a robust GSH uptake and metabolic system with several paralogous genes. In wet laboratory experiments, two key genes of GSH metabolism, gcsA, and glrA, encoding γ-l-glutamyl-l-cysteine synthetase and glutathione reductase, respectively, were deleted. The gene gcsA was essential, and the ΔgcsA mutant required GSH supplementation at considerably higher concentration than the Saccharomyces cerevisiae gsh1 mutant (8–10 mmol l−1 vs. 0.5 μmol l−1). In addition to some functions known previously, both genes were important in the germination of conidiospores, and both gene deletion strains required the addition of extra GSH to reach wild-type germination rates in liquid cultures. Nevertheless, the supplementation of cultures with 10 mmol l−1 GSH was toxic for the control and ΔglrA strains especially during vegetative growth, which should be considered in future development of high GSH-producer fungal strains. Importantly, the ΔglrA strain was characterized by increased sensitivity toward a wide spectrum of osmotic, cell wall integrity and antimycotic stress conditions in addition to previously reported temperature and oxidative stress sensitivities. These novel phenotypes underline the distinguished functions of GSH and GSH metabolic enzymes in the stress responses of fungi