Structural Insights into the Ligand Binding Domain of the Glucocorticoid Receptor: A Molecular Dynamics Study

The glucocorticoid receptor (GR) is a ligand-binding dependent transcription factor that ultimately regulates vital biological processes and inflammation response through specific gene expression control, thus representing a notable drug target to explore. Structurally, its ligand binding domain (LBD) harbors the region for the ligand-dependent transcriptional activation function 2 (AF-2), a majorly hydrophobic groove formed by residues from helices H3, H4, and H12, where the H12 position plays a critical role in AF-2 spatial conformation and GR function as a whole. However, the exact mechanisms underlying how regulatory ligands control the H12 structure and dynamics are yet to be elucidated. In this work, we have explored the correlation between ligand identity and GR LBD H12 behavior through different molecular dynamics (MD) simulations. After building diverse GR LBD systems in agonist and nonagonist states, we studied each system?s response in the absence or the presence of an agonist ligand (dexamethasone) or an antagonist ligand (RU486) using classical MD simulations. We complemented them with steered MD for assessing the transition between those states and with the Umbrella Sampling method for free-energy evaluation. On the one hand, successfully obtaining fully folded nonagonist GR LBD states from the partially unfolded crystal GR LBD/RU486 underlines the role of the H1 in the GR LBD folding pathway. On the other hand, our results describe the H12 as a dynamic ensemble of conformations whose relative population is in the end determined by the interacting ligand: while dexamethasone privileges only a few poses (determined by a potential energy surface with a deep minimum), RU486 favors a wider H12 conformational amplitude, as indicated by a flatter potential landscape. By characterizing the H12 conformation in different conditions, we provide novel GR LBD models that represent potential targets for rational glucocorticoid drugs design, with the aim of accurately modulating GR activity.Fil: Alves, Norma Roxana Carina. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Departamento de Química Biológica; Argentina. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas; ArgentinaFil: Pecci, Adali. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Ciudad Universitaria. Instituto de Fisiología, Biología Molecular y Neurociencias. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Instituto de Fisiología, Biología Molecular y Neurociencias; Argentina. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Departamento de Química Biológica; ArgentinaFil: Alvarez, Lautaro Damian. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Departamento de Química Biológica; Argentina. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Ciudad Universitaria. Unidad de Microanálisis y Métodos Físicos en Química Orgánica. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Unidad de Microanálisis y Métodos Físicos en Química Orgánica; Argentin

Live Cell Imaging Unveils Multiple Domain Requirements for In Vivo Dimerization of the Glucocorticoid Receptor

Glucocorticoids are essential for life, but are also implicated in disease pathogenesis and may produce unwanted effects when given in high doses. Glucocorticoid receptor (GR) transcriptional activity and clinical outcome have been linked to its oligomerization state. Although a point mutation within the GR DNA-binding domain (GRdim mutant) has been reported as crucial for receptor dimerization and DNA binding, this assumption has recently been challenged. Here we have analyzed the GR oligomerization state in vivo using the number and brightness assay. Our results suggest a complete, reversible, and DNA-independent ligand-induced model for GR dimerization. We demonstrate that the GRdim forms dimers in vivo whereas adding another mutation in the ligand-binding domain (I634A) severely compromises homodimer formation. Contrary to dogma, no correlation between the GR monomeric/dimeric state and transcriptional activity was observed. Finally, the state of dimerization affected DNA binding only to a subset of GR binding sites. These results have major implications on future searches for therapeutic glucocorticoids with reduced side effects.Fil: Presman, Diego Martin. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Ciudad Universitaria. Instituto de Fisiología, Biología Molecular y Neurociencias. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Instituto de Fisiología, Biología Molecular y Neurociencias; Argentina. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Departamento de Química Biológica; ArgentinaFil: Ogara, Maria Florencia. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Ciudad Universitaria. Instituto de Fisiología, Biología Molecular y Neurociencias. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Instituto de Fisiología, Biología Molecular y Neurociencias; Argentina. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Departamento de Química Biológica; ArgentinaFil: Stortz, Martin Dario. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Ciudad Universitaria. Instituto de Fisiología, Biología Molecular y Neurociencias. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Instituto de Fisiología, Biología Molecular y Neurociencias; Argentina. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Departamento de Química Biológica; ArgentinaFil: Alvarez, Lautaro Damian. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Ciudad Universitaria. Unidad de Microanálisis y Métodos Físicos en Química Orgánica. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Unidad de Microanálisis y Métodos Físicos en Química Orgánica; Argentina. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Departamento de Química Orgánica; ArgentinaFil: Pooley, John R.. National Cancer Institute. Laboratory of Receptor Biology and Gene Expression; Estados Unidos. University of Bristol; Reino UnidoFil: Schiltz, R. Louis. National Cancer Institute. Laboratory of Receptor Biology and Gene Expression; Estados UnidosFil: Grøntved, Lars. National Cancer Institute. Laboratory of Receptor Biology and Gene Expression; Estados UnidosFil: Johnson, Thomas A.. National Cancer Institute. Laboratory of Receptor Biology and Gene Expression; Estados UnidosFil: Mittelstadt, Paul R.. National Cancer Institute. Laboratory of Immune Cell Biology; Estados UnidosFil: Ashwell, Jonathan D.. National Cancer Institute. Laboratory of Immune Cell Biology; Estados UnidosFil: Ganesan, Sundar. National Cancer Institute. Laboratory of Receptor Biology and Gene Expression; Estados Unidos. National Institute of Allergy and Infectious Diseases; Estados UnidosFil: Burton, Gerardo. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Ciudad Universitaria. Unidad de Microanálisis y Métodos Físicos en Química Orgánica. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Unidad de Microanálisis y Métodos Físicos en Química Orgánica; Argentina. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Departamento de Química Orgánica; ArgentinaFil: Levi, Valeria. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Ciudad Universitaria. Instituto de Química Biológica de la Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Instituto de Química Biológica de la Facultad de Ciencias Exactas y Naturales; Argentina. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Departamento de Química Biológica; ArgentinaFil: Hager, Gordon L.. National Cancer Institute. Laboratory of Receptor Biology and Gene Expression; Estados UnidosFil: Pecci, Adali. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Ciudad Universitaria. Instituto de Fisiología, Biología Molecular y Neurociencias. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Instituto de Fisiología, Biología Molecular y Neurociencias; Argentina. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Departamento de Química Biológica; Argentin

Synthesis and biological evaluation of novel substituted pyrrolo[1,2-a]quinoxaline derivatives as inhibitors of the human protein kinase CK2

Herein we describe the synthesis and properties of substituted phenylaminopyrrolo[1,2-a]quinoxaline-carboxylic acid derivatives as a novel class of potent inhibitors of the human protein kinase CK2. A set of 15 compounds was designed and synthesized using convenient and straightforward synthesis protocols. The compounds were tested for inhibition of human protein kinase CK2, which is a potential drug target for many diseases including inflammatory disorders and cancer. New inhibitors with IC50 in the micro- and sub-micromolar range were identified. The most promising compound, the 4-[(3-chlorophenyl)amino]pyrrolo[1,2-a]quinoxaline-3-carboxylic acid 1c inhibited human CK2 with an IC50 of 49 nM. Our findings indicate that pyrrolo[1,2-a]quinoxalines are a promising starting scaffold for further development and optimization of human protein kinase CK2 inhibitorsFil: Guillon, Jean. Universite de Bordeaux; Francia;Fil: Le Borgne, Marc. Université de Lyon; Francia;Fil: Rimbault, Charlotte. Universite de Bordeaux; Francia;Fil: Moreau, Stéphane. Universite de Bordeaux; Francia;Fil: Savrimoutou, Solène. Universite de Bordeaux; Francia;Fil: Pinaud, Noël. Universite de Bordeaux; Francia;Fil: Baratin, Sophie. Universite de Bordeaux; Francia;Fil: Marchivie, Mathieu. Universite de Bordeaux; Francia;Fil: Roche, Séverine. Universite de Bordeaux; Francia;Fil: Bollacke, Andre. Institut für Pharmazeutische und Medizinische Chemie. Westfälische Wilhelms-Universität Münster; Alemania;Fil: Pecci, Adali. Consejo Nacional de Invest.cientif.y Tecnicas. Oficina de Coordinacion Administrativa Ciudad Universitaria. Instituto de Fisiol., Biol.molecular y Neurociencias; Argentina;Fil: Alvarez, Lautaro Damian. Consejo Nacional de Invest.cientif.y Tecnicas. Oficina de Coordinacion Administrativa Ciudad Universitaria. Unid.microanal.y Met.fisicos En Quim.org.(i); Universidad de Buenos Aires. Facultad de Cs.exactas y Naturales. Departamento de Quimica Organica;Fil: Desplat, Vanessa. Universite de Bordeaux; Francia;Fil: Joachim, Jose. Institut für Pharmazeutische und Medizinische Chemie. Westfälische Wilhelms-Universität Münster; Alemania

Structure and dynamics of neurosteroid binding to the α1β2γ2 GABAA receptor

Neurosteroids are the principal endogenous modulators of the γ-Aminobutyric acid receptors (GABAARs), pentameric membrane-bound proteins that can be assembled from at least 19 subunits. In the most abundant GABAAR arrangement (α1β2γ2), neurosteroids can potentiate the GABA action as well as produce a direct activation of the channel. The recent crystal structures of neurosteroids bound to α homopentameric GABAAR reveal binding to five equivalent sites. However, these results have been obtained using receptors that are not physiologically relevant, suggesting a need to investigate neurosteroid binding to heteropentameric receptors that exist in the central nervous system. In a previous work, we predicted the neurosteroid binding site by applying molecular modeling methods on the β3 homopentamer. Here we construct a homology model of the transmembrane domain of the heteropentameric α1β2γ2 receptor and then, by combining docking and molecular dynamics simulations, we analyzed neurosteroid binding. Results show that the five neurosteroid cavities are conserved in the α1β2γ2 receptor and all of them are able to bind neurosteroids. Two different binding modes were detected depending on the identity of the residue at position 241 in the transmembrane helix 1. These theoretical findings provide microscopic insights into neurosteroid binding at the heteropentameric GABAAR. The existence of two classes of sites may be associated with how neurosteroids modulate GABAAR. Our finding would represent the essential first step to reach a comprehensive understanding of how these endogenous molecules regulate the central nervous system.Fil: Alvarez, Lautaro Damian. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Departamento de Química Biológica; Argentina. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Ciudad Universitaria. Unidad de Microanálisis y Métodos Físicos en Química Orgánica. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Unidad de Microanálisis y Métodos Físicos en Química Orgánica; ArgentinaFil: Pecci, Adali. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Ciudad Universitaria. Instituto de Fisiología, Biología Molecular y Neurociencias. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Instituto de Fisiología, Biología Molecular y Neurociencias; Argentina. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Departamento de Química Biológica; Argentin

Mapping the neurosteroid binding sites on glycine receptors

Glycine is a major inhibitory neurotransmitter in the CNS, where it modulates both sensory and motor transduction throughout its binding to glycine receptors (GlyRs), pentameric chloride channels that share structural and functional properties with type A γ-aminobutyric acid receptors (GABAAR). A large number of structurally diverse organic compounds have been identified as GlyR and GABAAR allosteric modulators, making these receptors attractive pharmacological targets. Taking into account the recent resolved crystal structures of GABAAR/neurosteroid complexes, and due to the high sequence identity between the GABAAR and GlyR transmembrane domains, in this work we applied molecular modeling methods to explore the neurosteroid binding to GlyR. Our results indicated that neurosteroid binding sites of GABAARs are also conserved in the GlyRs. Furthermore, docking and molecular dynamics simulations predicted that neurosteroids are stably recognized at these sites, providing precise information on the molecular basis of the neurosteroid binding mode to GlyR. The comparison of how allopregnanolone and pregnanolone 3−OH moieties are recognized by the GlyR binding pocket revealed significant differences that may be associated to opposite effects of these isomers on the GlyR response.Fil: Alvarez, Lautaro Damian. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Ciudad Universitaria. Unidad de Microanálisis y Métodos Físicos en Química Orgánica. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Unidad de Microanálisis y Métodos Físicos en Química Orgánica; ArgentinaFil: Pecci, Adali. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Ciudad Universitaria. Instituto de Fisiología, Biología Molecular y Neurociencias. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Instituto de Fisiología, Biología Molecular y Neurociencias; Argentin

Exploring the molecular basis of neurosteroid binding to the β3 homopentameric GABAA receptor

Neurosteroids are the principal endogenous modulators of GABAA receptors (GABAARs), which are pentameric membrane-bound proteins that regulate the passage of chloride ions from the extracellular to the intracellular compartment. As consequence of their ability to modify inhibitory functions in the brain, neurosteroids have high physiological and clinical importance and may act as anesthetic, anticonvulsant and anxiolytic drugs. Despite their relevance, essential issues regarding neurosteroid action on GABAARs are still unsettled. In particular, residues taking part of the steroid recognition are not definitely identified. Taking as starting point the first reported crystal structure of a human GABAA receptor (a β3 homopentamer), we have explored through a combination of computational methods (a cavity-detection algorithm, docking and molecular dynamics simulations) the binding mode of two structurally different representative neurosteroids, pregnanolone and allopregnanolone. We have identified a neurosteroid binding site between the TM3 of one subunit and TM1 and TM4 of the adjacent subunit that is consistent with the set of experimental data reported for the action of neurosteroids on β3 homopentamers. These sites are able to properly accommodate both overall torsioned and flat steroidal structures and they specifically recognize the 3-OH group, explaining the requirement of a 3α-configuration for the activity. We believe that this work provides for first time convincing information about the molecular interaction between neurosteroids and a GABAAR. This information largely increases our understanding of this fundamental ligand-receptor system.Fil: Alvarez, Lautaro Damian. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Ciudad Universitaria. Unidad de Microanálisis y Métodos Físicos en Química Orgánica. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Unidad de Microanálisis y Métodos Físicos en Química Orgánica; ArgentinaFil: Estrin, Dario Ariel. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Ciudad Universitaria. Instituto de Química, Física de los Materiales, Medioambiente y Energía. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Instituto de Química, Física de los Materiales, Medioambiente y Energía; Argentin

21-Hydroxy-6,19-epoxyprogesterone: A promising therapeutic agent and a molecular tool for deciphering glucocorticoid action

Glucocorticoids are steroid hormones that exert most of their effects through their binding to the glucocorticoid receptor (GR), a ligand regulated transcription factor. Although glucocorticoids are widely used in the clinic, their usage in chronic therapies provokes severe adverse reactions. In the quest for safer glucocorticoids a dissociated model was established that proposes a disconnection between GR activated pathways responsible of desired pharmacological effects and pathways involved in adverse GR reactions. Under this model, a myriad of steroidal and non-steroidal compounds has been characterized, with most of them still producing side effects. X-ray crystallographic studies followed by molecular dynamics analysis led research to insights on the receptor Ligand Binding Domain (LBD), which undergoes specific ligand dependent conformational changes that influence receptor activities. In this sense, the flexibility of the ligand structure would contribute to the final GR outcome. Here, we review different data of 21-hydroxy-6,19-epoxyprogesterone (21OH-6,19OP), a rigid steroid with potential pharmaceutical interest due to its anti-inflammatory and immunosuppressive activities, lacking several GR adverse reactions. The rigid structure endows this compound with an enhanced selectivity towards GR. Molecular characterization of the GR/21OH-6,19OP complex revealed specific intermediate conformations adopted by the receptor that would explain the influence on GR dimerization and the recruitment of a specific set of GR transcription modulators. We summarize recent data that will contribute to understand the complexity of glucocorticoid responseFil: Pecci, Adali. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Ciudad Universitaria. Instituto de Fisiología, Biología Molecular y Neurociencias. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Instituto de Fisiología, Biología Molecular y Neurociencias; ArgentinaFil: Alvarez, Lautaro Damian. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Ciudad Universitaria. Unidad de Microanálisis y Métodos Físicos en Química Orgánica. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Unidad de Microanálisis y Métodos Físicos en Química Orgánica; ArgentinaFil: Presman, Diego Martin. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Ciudad Universitaria. Instituto de Fisiología, Biología Molecular y Neurociencias. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Instituto de Fisiología, Biología Molecular y Neurociencias; Argentina. National Cancer Institute; Estados UnidosFil: Burton, Gerardo. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Ciudad Universitaria. Unidad de Microanálisis y Métodos Físicos en Química Orgánica. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Unidad de Microanálisis y Métodos Físicos en Química Orgánica; Argentin

The Caenorhabditis elegans DAF-12 nuclear receptor: Structure, dynamics, and interaction with ligands

A structure for the ligand binding domain (LBD) of the DAF-12 receptor from Caenorhabditis elegans was obtained from the X-ray crystal structure of the receptor LBD from Strongyloides stercoralis bound to (25R)-Δ7-dafachronic acid (DA) (pdb:3GYU). The model was constructed in the presence of the ligand using a combination of Modeller, Autodock, and molecular dynamics (MD) programs, and then its dynamical behavior was studied by MD. A strong ligand binding mode (LBM) was found, with the three arginines in the ligand binding pocket (LBP) contacting the C-26 carboxylate group of the DA. The quality of the ceDAF-12 model was then evaluated by constructing several ligand systems for which the experimental activity is known. Thus, the dynamical behavior of the ceDAF-12 complex with the more active (25S)-Δ7-DA showed two distinct binding modes, one of them being energetically more favorable compared with the 25R isomer. Then the effect of the Arg564Cys and Arg598Met mutations on the (25R)-Δ7-DA binding was analyzed. The MD simulations showed that in the first case the complex was unstable, consistent with the lack of transactivation activity of (25R)-Δ7-DA in this mutant. Instead, in the case of the Arg598Met mutant, known to produce a partial loss of activity, our model predicted smaller effects on the LBM with a more stable MD trajectory. The model also showed that removal of the C-25 methyl does not impede the simultaneous strong interaction of the carboxylate with the three arginines, predicting that 27-nor-DAs are putative ceDAF-12 ligands. © 2012 Wiley Periodicals, Inc.Fil: Alvarez, Lautaro Damian. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Ciudad Universitaria. Unidad de Microanálisis y Métodos Físicos en Química Orgánica. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Unidad de Microanálisis y Métodos Físicos en Química Orgánica; Argentina. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Departamento de Química Orgánica; Argentina. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Ciudad Universitaria. Instituto de Fisiología, Biología Molecular y Neurociencias. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Instituto de Fisiología, Biología Molecular y Neurociencias; ArgentinaFil: Arroyo Mañez, Pau. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Ciudad Universitaria. Unidad de Microanálisis y Métodos Físicos en Química Orgánica. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Unidad de Microanálisis y Métodos Físicos en Química Orgánica; Argentina. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Departamento de Química Orgánica; ArgentinaFil: Estrin, Dario Ariel. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Ciudad Universitaria. Instituto de Química, Física de los Materiales, Medioambiente y Energía. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Instituto de Química, Física de los Materiales, Medioambiente y Energía; Argentina. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Departamento de Química Orgánica; ArgentinaFil: Burton, Gerardo. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Ciudad Universitaria. Unidad de Microanálisis y Métodos Físicos en Química Orgánica. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Unidad de Microanálisis y Métodos Físicos en Química Orgánica; Argentina. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Departamento de Química Orgánica; Argentin

Microwave assisted preparation of C(1)?C(11) oxygen-bridged pregnanes

A procedure for the synthesis of 6,19-cyclopregnanes is described involving an intramolecular alkylation reaction of Δ4-3-keto steroids with a 19-mesylate in the presence of KOH in isopropanol. Three 6,19-cyclopregnanes were prepared (4, 5, 9); in the rat, 6,19-cycloprogesterone (4) and its 21-hydroxy derivative 5 displaced [3H]-dexamethasone from glucocorticoid receptors, the former compound being more active. Both compounds did not compete with [3H]-aldosterone for kidney mineralocorticoid receptors nor with [3H]-R5020 for uterus progesterone receptors. © The Royal Society of Chemistry.Fil: Alvarez, Lautaro Damian. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Ciudad Universitaria. Unidad de Microanálisis y Métodos Físicos en Química Orgánica. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Unidad de Microanálisis y Métodos Físicos en Química Orgánica; Argentina. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Departamento de Química Orgánica; ArgentinaFil: Sonego, Juan Manuel. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Ciudad Universitaria. Unidad de Microanálisis y Métodos Físicos en Química Orgánica. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Unidad de Microanálisis y Métodos Físicos en Química Orgánica; Argentina. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Departamento de Química Orgánica; ArgentinaFil: Veleiro, Adriana Silvia. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Ciudad Universitaria. Unidad de Microanálisis y Métodos Físicos en Química Orgánica. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Unidad de Microanálisis y Métodos Físicos en Química Orgánica; Argentina. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Departamento de Química Orgánica; ArgentinaFil: Burton, Gerardo. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Ciudad Universitaria. Unidad de Microanálisis y Métodos Físicos en Química Orgánica. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Unidad de Microanálisis y Métodos Físicos en Química Orgánica; Argentina. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Departamento de Química Orgánica; Argentin

Synthesis of C(1)-C(11) oxygen-bridged pregnanes

A general procedure for the synthesis of 1α,11α- and 1β,11α-epoxysteroids is described, using an intramolecular remote functionalization reaction involving the photolysis of 11α-hydroxysteroids in the presence of diacetoxyiodobenzene and iodine. Three 1,11-epoxypregnanes were prepared, two of them (compounds 10 and 14) are conformationally constrained analogues of steroidal hormones, compound 13 is a synthetic precursor of neurosteroids.Fil: Veleiro, Adriana Silvia. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Ciudad Universitaria. Unidad de Microanálisis y Métodos Físicos en Química Orgánica. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Unidad de Microanálisis y Métodos Físicos en Química Orgánica; Argentina. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Departamento de Química Orgánica; ArgentinaFil: Taich, Paula Juliana. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Ciudad Universitaria. Unidad de Microanálisis y Métodos Físicos en Química Orgánica. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Unidad de Microanálisis y Métodos Físicos en Química Orgánica; Argentina. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Departamento de Química Orgánica; ArgentinaFil: Alvarez, Lautaro Damian. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Ciudad Universitaria. Unidad de Microanálisis y Métodos Físicos en Química Orgánica. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Unidad de Microanálisis y Métodos Físicos en Química Orgánica; Argentina. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Departamento de Química Orgánica; ArgentinaFil: Di Chenna, Pablo Hector. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Ciudad Universitaria. Unidad de Microanálisis y Métodos Físicos en Química Orgánica. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Unidad de Microanálisis y Métodos Físicos en Química Orgánica; Argentina. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Departamento de Química Orgánica; ArgentinaFil: Burton, Gerardo. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Ciudad Universitaria. Unidad de Microanálisis y Métodos Físicos en Química Orgánica. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Unidad de Microanálisis y Métodos Físicos en Química Orgánica; Argentina. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Departamento de Química Orgánica; Argentin