Crop Updates 2006 - Lupins and Pulses

This session covers sixty six papers from different authors: 2005 LUPIN AND PULSE INDUSTRY HIGHLIGHTS 1. Lupin Peter White, Department of Agriculture 2. Pulses Mark Seymour, Department of Agriculture 3. Monthly rainfall at experimental sites in 2005 4. Acknowledgements Amelia McLarty EDITOR 5. Contributors 6. Background Peter White, Department of Agriculture 2005 REGIONAL ROUNDUP 7. Northern agricultural region Wayne Parker, Department of Agriculture 8. Central agricultural region Ian Pritchard and Bob French, Department of Agriculture 9. Great southern and lakes Rodger Beermier, Department of Agriculture 10. South east region Mark Seymour, Department of Agriculture LUPIN AND PULSE PRODUCTION AGRONOMY AND GENETIC IMPROVEMENT 11. Lupin Peter White, Department of Agriculture 12. Narrow-leafed lupin breeding Bevan Buirchell, Department of Agriculture 13. Progress in the development of pearl lupin (Lupinus mutabilis) for Australian agriculture, Mark Sweetingham1,2, Jon Clements1, Geoff Thomas2, Roger Jones1, Sofia Sipsas1, John Quealy2, Leigh Smith1 and Gordon Francis1 1CLIMA, The University of Western Australia 2Department of Agriculture 14. Molecular genetic markers and lupin breeding, Huaan Yang, Jeffrey Boersma, Bevan Buirchell, Department of Agriculture 15. Construction of a genetic linkage map using MFLP, and identification of molecular markers linked to domestication genes in narrow-leafed lupin (Lupinus augustiflolius L) Jeffrey Boersma1,2, Margaret Pallotta3, Bevan Buirchell1, Chengdao Li1, Krishnapillai Sivasithamparam2 and Huaan Yang1 1Department of Agriculture, 2The University of Western Australia, 3Australian Centre for Plant Functional Genomics, South Australia 16. The first gene-based map of narrow-leafed lupin – location of domestication genes and conserved synteny with Medicago truncatula, M. Nelson1, H. Phan2, S. Ellwood2, P. Moolhuijzen3, M. Bellgard3, J. Hane2, A. Williams2, J. Fos‑Nyarko4, B. Wolko5, M. Książkiewicz5, M. Cakir4, M. Jones4, M. Scobie4, C. O’Lone1, S.J. Barker1, R. Oliver2, and W. Cowling1 1School of Plant Biology, The University of Western Australia, 2Australian Centre for Necrotrophic Fungal Pathogens, Murdoch University, 3Centre for Bioinformatics and Biological Computing, Murdoch University, 4School of Biological Sciences and Biotechnology, SABC, Murdoch University,5Institute of Plant Genetics, Polish Academy of Sciences, Poznań, Poland 17. How does lupin optimum density change row spacing? Bob French and Laurie Maiolo, Department of Agriculture 18. Wide row spacing and seeding rate of lupins with conventional and precision seeding machines Martin Harries, Jo Walker and Murray Blyth, Department of Agriculture 19. Influence of row spacing and plant density on lupin competition with annual ryegrass, Martin Harries, Jo Walker and Murray Blyth, Department of Agriculture 20. Effect of timing and speed of inter-row cultivation on lupins, Martin Harries, Jo Walker and Steve Cosh, Department of Agriculture 21. The interaction of atrazine herbicide rate and row spacing on lupin seedling survival, Martin Harries and Jo Walker Department of Agriculture 22. The banding of herbicides on lupin row crops, Martin Harries, Jo Walker and Murray Blyth, Department of Agriculture 23. Large plot testing of herbicide tolerance of new lupin lines, Wayne Parker, Department of Agriculture 24. Effect of seed source and simazine rate of seedling emergence and growth, Peter White and Greg Shea, Department of Agriculture 25. The effect of lupin row spacing and seeding rate on a following wheat crop, Martin Harries, Jo Walker and Dirranie Kirby, Department of Agriculture 26. Response of crop lupin species to row spacing, Leigh Smith1, Kedar Adhikari1, Jon Clements2 and Patrizia Guantini3, 1Department of Agriculture, 2CLIMA, The University of Western Australia, 3University of Florence, Italy 27. Response of Lupinus mutabilis to lime application and over watering, Peter White, Leigh Smith and Mark Sweetingham, Department of Agriculture 28. Impact of anthracnose on yield of Andromeda lupins, Geoff Thomas, Kedar Adhikari and Katie Bell, Department of Agriculture 29. Survey of lupin root health (in major production areas), Geoff Thomas, Ken Adcock, Katie Bell, Ciara Beard and Anne Smith, Department of Agriculture 30. Development of a generic forecasting and decision support system for diseases in the Western Australian wheatbelt, Tim Maling1, Art Diggle1,2, Debbie Thackray1, Kadambot Siddique1 and Roger Jones1,2 1CLIMA, The University of Western Australia, 2Department of Agriculture 31.Tanjil mutants highly tolerant to metribuzin, Ping Si1, Mark Sweetingham1,2, Bevan Buirchell1,2 and Huaan Yang l,2 1CLIMA, The University of Western Australia, 2Department of Agriculture 32. Precipitation pH vs. yield and functional properties of lupin protein isolate, Vijay Jayasena1, Hui Jun Chih1 and Ken Dods2 1Curtin University of Technology, 2Chemistry Centre 33. Lupin protein isolation with the use of salts, Vijay Jayasena1, Florence Kartawinata1,Ranil Coorey1 and Ken Dods2 1Curtin University of Technology, 2Chemistry Centre 34. Field pea, Mark Seymour, Department of Agriculture 35. Breeding highlights Kerry Regan1,2, Tanveer Khan1,2, Stuart Morgan1 and Phillip Chambers1 1Department of Agriculture, 2CLIMA, The University of Western Australia 36. Variety evaluation, Kerry Regan1,2, Tanveer Khan1,2, Jenny Garlinge1 and Rod Hunter1 1Department of Agriculture, 2CLIMA, The University of Western Australia 37. Days to flowering of field pea varieties throughout WA Mark Seymour1, Ian Pritchard1, Rodger Beermier1, Pam Burgess1 and Dr Eric Armstrong2 Department of Agriculture, 2NSW Department of Primary Industries, Wagga Wagga 38. Semi-leafless field peas yield more, with less ryegrass seed set, in narrow rows, Glen Riethmuller, Department of Agriculture 39. Swathing, stripping and other innovative ways to harvest field peas, Mark Seymour, Ian Pritchard, Rodger Beermier and Pam Burgess, Department of Agriculture 40. Pulse demonstrations, Ian Pritchard, Wayne Parker, Greg Shea, Department of Agriculture 41. Field pea extension – focus on field peas 2005, Ian Pritchard, Department of Agriculture 42. Field pea blackspot disease in 2005: Prediction versus reality, Moin Salam, Jean Galloway, Pip Payne, Bill MacLeod and Art Diggle, Department of Agriculture 43. Pea seed-borne mosaic virus in pulses: Screening for seed quality defects and virus resistance, Rohan Prince, Brenda Coutts and Roger Jones, Department of Agriculture, and CLIMA, The University of Western Australia 44. Yield losses from sowing field peas infected with pea seed-borne mosaic virus, Rohan Prince, Brenda Coutts and Roger Jones, Department of Agriculture, and CLIMA, The University of Western Australia 45. Desi chickpea, Wayne Parker, Department of Agriculture 46. Breeding highlights, Tanveer Khan 1,2, Pooran Gaur3, Kadambot Siddique2, Heather Clarke2, Stuart Morgan1and Alan Harris1, 1Department of Agriculture2CLIMA, The University of Western Australia, 3International Crop Research Institute for Semi Arid Tropics (ICRISAT), India 47. National chickpea improvement program, Kerry Regan1, Ted Knights2 and Kristy Hobson3,1Department of Agriculture, 2Agriculture New South Wales 3Department of Primary Industries, Victoria 48. Chickpea breeding lines in CVT exhibit excellent ascochyta blight resistance, Tanveer Khan1,2, Alan Harris1, Stuart Morgan1 and Kerry Regan1,2, 1Department of Agriculture, 2CLIMA, The University of Western Australia 49. Variety evaluation, Kerry Regan1,2, Tanveer Khan1,2, Jenny Garlinge2 and Rod Hunter2, 1CLIMA, The University of Western Australia 2Department of Agriculture 50. Desi chickpeas for the wheatbelt, Wayne Parker and Ian Pritchard, Department of Agriculture 51. Large scale demonstration of new chickpea varieties, Wayne Parker, MurrayBlyth, Steve Cosh, Dirranie Kirby and Chris Matthews, Department of Agriculture 52. Ascochyta management with new chickpeas, Martin Harries, Bill MacLeod, Murray Blyth and Jo Walker, Department of Agriculture 53. Management of ascochyta blight in improved chickpea varieties, Bill MacLeod1, Colin Hanbury2, Pip Payne1, Martin Harries1, Murray Blyth1, Tanveer Khan1,2, Kadambot Siddique2, 1Department of Agriculture, 2CLIMA, The University of Western Australia 54. Botrytis grey mould of chickpea, Bill MacLeod, Department of Agriculture 55. Kabuli chickpea, Kerry Regan, Department of Agriculture, and CLIMA, The University of Western Australia 56. New ascochyta blight resistant, high quality kabuli chickpea varieties, Kerry Regan1,2, Kadambot Siddique2, Tim Pope2 and Mike Baker1, 1Department of Agriculture, 2CLIMA, The University of Western Australia 57. Crop production and disease management of Almaz and Nafice, Kerry Regan and Bill MacLeod, Department of Agriculture, and CLIMA, The University of Western Australia 58. Faba bean,Mark Seymour, Department of Agriculture 59. Germplasm evaluation – faba bean, Mark Seymour1, Tim Pope2, Peter White1, Martin Harries1, Murray Blyth1, Rodger Beermier1, Pam Burgess1 and Leanne Young1,1Department of Agriculture, 2CLIMA, The University of Western Australia 60. Factors affecting seed coat colour of faba bean during storage, Syed Muhammad Nasar-Abbas1, Julie Plummer1, Kadambot Siddique2, Peter White 3, D. Harris4 and Ken Dods4.1The University of Western Australia, 2CLIMA, The University of Western Australia, 3Department of Agriculture, 4Chemistry Centre 61. Lentil,Kerry Regan, Department of Agriculture, and CLIMA, The University of Western Australia 62. Variety and germplasm evaluation, Kerry Regan1,2, Tim Pope2, Leanne Young1, Phill Chambers1, Alan Harris1, Wayne Parker1 and Michael Materne3, 1Department of Agriculture 2CLIMA, The University of Western Australia, 3Department of Primary Industries, Victoria Pulse species 63. Land suitability for production of different crop species in Western Australia, Peter White, Dennis van Gool, and Mike Baker, Department of Agriculture 64. Genomic synteny in legumes: Application to crop breeding, Huyen Phan1, Simon Ellwood1, J. Hane1, Angela Williams1, R. Ford2, S. Thomas3 and Richard Oliver1,1Australian Centre of Necrotrophic Plant Pathogens, Murdoch University 2BioMarka, School of Agriculture and Food Systems, ILFR, University of Melbourne 3NSW Department of Primary Industries 65. ALOSCA – Development of a dry flow legume seed inoculant, Rory Coffey and Chris Poole, ALOSCA Technologies Pty Ltd 66. Genetic dissection of resistance to fungal necrotrophs in Medicago truncatula, Simon Ellwood1, Theo Pfaff1, Judith Lichtenzveig12, Lars Kamphuis1, Nola D\u27Souza1, Angela Williams1, Emma Groves1, Karam Singh2 and Richard Oliver1 1Australian Centre of Necrotrophic Plant Pathogens, Murdoch University, 2CSIRO Plant Industry APPENDIX I: LIST OF COMMON ACRONYM

Sarkoidose des Lobulus auriculae - ein Fallbericht

Sarkoidose ist eine chronische Erkrankung, die mit Granulombildung einhergeht und diverse Gewebe betreffen kann. Im Bereich des Ohres können das äußere Ohr in Form einer Hautbeteiligung, das Mittelohr mit dem Bild einer chronischen Otitis media und auch das Innenohr und der Nervus vesibulocochlearis mit progredientem Hörverlust bis hin zur Taubheit betroffen sein.Bereits im Jahr 2010 wurde bei einer Patientin eine Raumforderung im Bereich des rechten Lobulus auriculae entfernt. Diese bestand seit zwei Jahren. Die histologische Aufarbeitung ergab das Bild einer granulomatösen Entzündung vom tuberkuloiden Typ. Differenzialdiagnostisch wurde u.a. eine Sarkoidose in Betracht gezogen. Daher empfahlen wir eine internistische Mitbeurteilung. Im April 2015 stellte sich die Patientin erneut mit einer Raumforderung an gleicher Stelle bei sonst unauffälligem Haut- und Schleimhautbefund in unserer Klinik vor. Anamnestisch war 2011 eine pulmonale Sarkoidose diagnostiziert worden. Aufgrund normaler Lungenfunktionsparameter bestand bisher keine Notwendigkeit einer medikamentösen Therapie. Im Lokalbefund zeigt sich der rechte Lobulus auriculae bis zum unteren Helixende verdickt und dunkelrot induriert. Nebenbefundlich fand sich rechts ein operationspflichtiger Trommelfelldefekt. Die Hörprüfung wies rechts eine Schallempfindungsschwerhörigkeit bis 50dB auf. Wir exzidierten die am stärksten betroffene Haut und das darunter liegende überschüssige Subkutangewebe. Histologisch ließen sich wiederum Granulome nachweisen, die nun eindeutig der Sarkoidose zugeordnet wurden. Nicht immer liegt die Erstmanifestation einer Sarkoidose im Bereich der Lunge. Bei vorliegendem Verdacht, muss auch bei selten involvierte Lokalisationen eine weitere Diagnostik erfolgen.Der Erstautor gibt keinen Interessenkonflikt an

Amyloidose der Tonsille und Rachenhinterwand - Fallbericht

Als Amyloidose werden Proteinablagerungen im Gewebe bezeichnet. Diese Ablagerungen können solitär, aber meist multipel vorkommen. Im HNO-Bereich ist vor allem der Larynx häufig befallen, aber auch Speicheldrüsen, Nebenhöhlen oder Pharynx.Ein 64-jähriger Patient wurde aufgrund einer Raumforderung am linken hinteren Gaumenbogen und linken Rachenhinterwand stationär aufgenommen. In der präoperativ durchgeführten Magnetresonanztomografie wurde eine glatt begrenzte Raumforderung ohne Anzeichen für eine Infiltration beschrieben. Wir führten eine Panendoskopie durch. In deren Rahmen erfolgte auch die Abtragung der Raumforderung, die sich intraoperativ als gelblich homogen, flächenhaft und auf dem Untergrund gut verschieblich darstellte. Die histologische Aufarbeitung des Befundes ergab massive Substanzablagerungen im Rahmen einer Amyloidose. Nachweisbar waren sowohl lambda- als auch kappa-Immunglobulinleichtketten, dabei sehr wenige polyklonale Plasmazellen ohne Anhalt für ein Plasmozytom.Es bestand weder im HNO-Bereich noch in anderen Regionen ein Anhalt für weitere Lokalisationen von Amyloidablagerungen. Um eine mögliche zugrunde liegende rheumatische Erkrankung auszuschließen erfolgte ambulant die Vorstellung des Patienten in einem rheumatologischen Fachkrankenhaus. Hier wurde eine entzündlich-rheumatische Erkrankung als Ursache für die Amyloidose ausgeschlossen.Trotz ihrer Seltenheit sollte bei solitären Raumforderungen im HNO-Bereich die Amyloidose als Differentialdiagnose in Betracht gezogen werden. Der Ausschluss einer zugrunde liegenden rheumatischen oder neoplastischen Erkrankung ist für die Prognose der Patienten essentiell.Der Erstautor gibt keinen Interessenkonflikt an

Sarkoidose des Lobulus auriculae - ein Fallbericht

Sarkoidose ist eine chronische Erkrankung, die mit Granulombildung einhergeht und diverse Gewebe betreffen kann. Im Bereich des Ohres können das äußere Ohr in Form einer Hautbeteiligung, das Mittelohr mit dem Bild einer chronischen Otitis media und auch das Innenohr und der Nervus vesibulocochlearis mit progredientem Hörverlust bis hin zur Taubheit betroffen sein.Bereits im Jahr 2010 wurde bei einer Patientin eine Raumforderung im Bereich des rechten Lobulus auriculae entfernt. Diese bestand seit zwei Jahren. Die histologische Aufarbeitung ergab das Bild einer granulomatösen Entzündung vom tuberkuloiden Typ. Differenzialdiagnostisch wurde u.a. eine Sarkoidose in Betracht gezogen. Daher empfahlen wir eine internistische Mitbeurteilung. Im April 2015 stellte sich die Patientin erneut mit einer Raumforderung an gleicher Stelle bei sonst unauffälligem Haut- und Schleimhautbefund in unserer Klinik vor. Anamnestisch war 2011 eine pulmonale Sarkoidose diagnostiziert worden. Aufgrund normaler Lungenfunktionsparameter bestand bisher keine Notwendigkeit einer medikamentösen Therapie. Im Lokalbefund zeigt sich der rechte Lobulus auriculae bis zum unteren Helixende verdickt und dunkelrot induriert. Nebenbefundlich fand sich rechts ein operationspflichtiger Trommelfelldefekt. Die Hörprüfung wies rechts eine Schallempfindungsschwerhörigkeit bis 50dB auf. Wir exzidierten die am stärksten betroffene Haut und das darunter liegende überschüssige Subkutangewebe. Histologisch ließen sich wiederum Granulome nachweisen, die nun eindeutig der Sarkoidose zugeordnet wurden. Nicht immer liegt die Erstmanifestation einer Sarkoidose im Bereich der Lunge. Bei vorliegendem Verdacht, muss auch bei selten involvierte Lokalisationen eine weitere Diagnostik erfolgen.Der Erstautor gibt keinen Interessenkonflikt an

A dense reference map of the Lupinus Angustifolius L. Genome: A foundation for building lupin genome research

A genetic map provides a foundation on which genomic research can be built, linking together otherwise disconnected studies and forming the basis on which to build physical and cytogenetic maps and conduct whole genome sequencing. As part of a wide collaborative effort, we developed a dense genetic map of the narrow-leafed lupin (Lupinus angustifolius L.) comprising 1073 molecular markers, 6 domestication trait loci and an Anthracnose resistance locus distributed across 20 major linkage groups. This map will be used to investigate the extent of genome conservation between narrow-leafed lupin and the model legume species, Medicago truncatula and Lotus japonicus. We discuss the potential applications of this reference map in lupin genetic and genomic research