Behavioral and neuropathological changes after Toxoplasma gondii ocular conjunctival infection in BALB/c Mice

Brazilian Research Council - CNPq Grant No. 307749/2004-5 and 471077/2007-0, Fundação Amazonia de Amparo a Estudos e Pesquisas do Para - FAPESPA, ICAAF No. 039/2017, Pro-Reitoria de Pesquisa e Pós-graduação da Universidade Federal do Para - PROPESP Edital 2021-PIAPA; Coordenação de Aperfeicoamento de Pessoal de Nivel Superior - CAPES - Pro-Amazonia, Grant No. 3311/2013; and Programa de Apoio a Publicação Qualificada - PAPQ/PROPESP/UFPA.Universidade Federal do Pará. Hospital Universitário João de Barros Barreto. Instituto de Ciências Biológicas. Laboratório de Investigações em Neurodegeneração e Infecção. Belém, PA, BrazilUniversidade Federal do Pará. Hospital Universitário João de Barros Barreto. Instituto de Ciências Biológicas. Laboratório de Investigações em Neurodegeneração e Infecção. Belém, PA, BrazilUniversidade Federal do Pará. Hospital Universitário João de Barros Barreto. Instituto de Ciências Biológicas. Laboratório de Investigações em Neurodegeneração e Infecção. Belém, PA, BrazilUniversidade Federal do Pará. Hospital Universitário João de Barros Barreto. Instituto de Ciências Biológicas. Laboratório de Investigações em Neurodegeneração e Infecção. Belém, PA, BrazilUniversidade Federal do Pará. Hospital Universitário João de Barros Barreto. Instituto de Ciências Biológicas. Laboratório de Investigações em Neurodegeneração e Infecção. Belém, PA, BrazilUniversidade Federal do Pará. Hospital Universitário João de Barros Barreto. Instituto de Ciências Biológicas. Laboratório de Investigações em Neurodegeneração e Infecção. Belém, PA, BrazilUniversidade Federal do Pará. Hospital Universitário João de Barros Barreto. Instituto de Ciências Biológicas. Laboratório de Investigações em Neurodegeneração e Infecção. Belém, PA, BrazilUniversidade Federal do Pará. Hospital Universitário João de Barros Barreto. Instituto de Ciências Biológicas. Laboratório de Investigações em Neurodegeneração e Infecção. Belém, PA, BrazilUniversidade Federal do Pará. Hospital Universitário João de Barros Barreto. Instituto de Ciências Biológicas. Laboratório de Investigações em Neurodegeneração e Infecção. Belém, PA, BrazilUniversidade Federal do Pará. Hospital Universitário João de Barros Barreto. Instituto de Ciências Biológicas. Laboratório de Investigações em Neurodegeneração e Infecção. Belém, PA, BrazilMinistério da Saúde. Secretaria de Vigilância em Saúde. Instituto Evandro Chagas. Laboratório de Microscopia Eletrônica. Ananindeua, PA, BrasilMinistério da Saúde. Secretaria de Vigilância em Saúde. Instituto Evandro Chagas. Laboratório de Microscopia Eletrônica. Ananindeua, PA, BrasilUniversidade Federal do Pará. Hospital Universitário João de Barros Barreto. Laboratório de Anatomia Patológica. Belém, PA, BrazilMinistério da Saúde. Secretaria de Vigilância em Saúde. Instituto Evandro Chagas. Laboratório de Toxoplasmose. Ananindeua, PA, BrasilMinistério da Saúde. Secretaria de Vigilância em Saúde. Instituto Evandro Chagas. Laboratório de Toxoplasmose. Ananindeua, PA, BrasilUniversidade Federal do Pará. Hospital Universitário João de Barros Barreto. Laboratório de Anatomia Patológica. Belém, PA, BrazilMinistério da Saúde. Secretaria de Vigilância em Saúde. Instituto Evandro Chagas. Laboratório de Microscopia Eletrônica. Ananindeua, PA, BrasilMinistério da Saúde. Secretaria de Vigilância em Saúde. Instituto Evandro Chagas. Ananindeua, PA, BrasilUniversity of Oxford. Department of Pharmacology. Laboratory of Experimental Neuropathology. Oxford, UKUniversidade Federal do Pará. Hospital Universitário João de Barros Barreto. Instituto de Ciências Biológicas. Laboratório de Investigações em Neurodegeneração e Infecção. Belém, PA, Brazil / Ministério da Saúde. Secretaria de Vigilância em Saúde. Instituto Evandro Chagas. Laboratório de Microscopia Eletrônica. Ananindeua, PA, BrasilUniversidade Federal do Pará. Hospital Universitário João de Barros Barreto. Instituto de Ciências Biológicas. Laboratório de Investigações em Neurodegeneração e Infecção. Belém, PA, BrazilOcular infection with Toxoplasma gondii causes toxoplasmosis in mice. However, following ocular infection with tachyzoites, the cause of the accompanying progressive changes in hippocampal-dependent tasks, and their relationship with the morphology and number of microglia, is less well understood. Here, in 6-month-old, female BALB/c mice, 5 μl of a suspension containing 48.5 × 106 tachyzoites/ml was introduced into the conjunctival sac; control received an equal volume of saline. Before and after instillation, all mice were subject to an olfactory discrimination (OD) test, using predator (cat) feces, and to an open-field (OF) task. After the behavioral tests, the animals were culled at either 22 or 44 days post-instillation (dpi), and the brains and retinas were dissected and processed for immunohistochemistry. The total number of Iba-1-immunolabeled microglia in the molecular layer of the dentate gyrus was estimated, and three-dimensional reconstructions of the cells were evaluated. Immobility was increased in the infected group at 12, 22, and 43 dpi, but the greatest immobility was observed at 22 dpi and was associated with reduced line crossing in the OF and distance traveled. In the OD test, infected animals spent more time in the compartment with feline fecal material at 14 and at 43 dpi. No OD changes were observed in the control group. The number of microglia was increased at 22 dpi but returned to control levels by 44 dpi. These changes were associated with the differentiation of T. gondii tachyzoites into bradyzoite-enclosed cysts within the brain and retina. Thus, infection of mice with T. gondii alters exploratory behavior, gives rise to a loss in predator's odor avoidance from 2 weeks after infection, increased microglia number, and altered their morphology in the molecular layer of the dentate gyrus

Microglial Morphology Across Distantly Related Species: Phylogenetic, Environmental and Age Influences on Microglia Reactivity and Surveillance States

Microglial immunosurveillance of the brain parenchyma to detect local perturbations in homeostasis, in all species, results in the adoption of a spectrum of morphological changes that reflect functional adaptations. Here, we review the contribution of these changes in microglia morphology in distantly related species, in homeostatic and non-homeostatic conditions, with three principal goals (1): to review the phylogenetic influences on the morphological diversity of microglia during homeostasis (2); to explore the impact of homeostatic perturbations (Dengue virus challenge) in distantly related species (Mus musculus and Callithrix penicillata) as a proxy for the differential immune response in small and large brains; and (3) to examine the influences of environmental enrichment and aging on the plasticity of the microglial morphological response following an immunological challenge (neurotropic arbovirus infection). Our findings reveal that the differences in microglia morphology across distantly related species under homeostatic condition cannot be attributed to the phylogenetic origin of the species. However, large and small brains, under similar non-homeostatic conditions, display differential microglial morphological responses, and we argue that age and environment interact to affect the microglia morphology after an immunological challenge; in particular, mice living in an enriched environment exhibit a more efficient immune response to the virus resulting in earlier removal of the virus and earlier return to the homeostatic morphological phenotype of microglia than it is observed in sedentary mice