Irrigations and Dialysis Solutions

Irrigations are sterile solutions that are used in many ways, such as flushing a catheter, the bladder, the urethra, wounds, body cavities, and the operation area or for drenching a bandage. A special form of irrigation are solutions for dialysis that are necessary for the different types of dialysis such as haemodialysis (HD), haemo(dia)filtration (HDF) and peritoneal dialysis (PD). Because irrigations are used in or on body areas that are usually sterile or have a low degree of microbial contamination, there are strict requirements for their production and quality control. In this chapter the use, the design of formulation and preparation method as well as the on site preparation of irrigations will be discussed. With regard to solutions for various types of dialysis, the use of concentrates, the quality of the water to dilute these concentrates, including the requirements for bacterial endotoxins are fully discussed. Irrigations have various uses, and therefore various users. Not only the one who prepares and dispenses them should know their purpose, but also the patient or the professional caregiver. Solutions for the different types of dialysis form a separate category. Surveillance and monitoring of the whole process, but especially the quality management of the installation for the production of water for the dilution of concentrated solutions, are often more difficult than the preparation of the concentrates themselves.</p

La dialyse péritonéale

AIX-MARSEILLE2-BU Pharmacie (130552105) / SudocSudocFranceF

Réflexion sur la stérilisation hospitalière des dispositifs médicaux (exemple de l'Assistance publique-hôpitaux de Marseille)

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Procédure d'achat de stérilisateur à vapeur d'eau (un exemple sur l'assistance publique hôpitaux de Marseille)

LIMOGES-BU Médecine pharmacie (870852108) / SudocLYON1-BU Santé (693882101) / SudocSudocFranceF

Gestion des non-conformités au sein de la stérilisation centrale de l'hôpital de la Conception

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High gas pressure survival/reactivation of soil microorganisms

International audienceDeep sea sediments constitute a considerable reserve of microorganisms belonging to different microbial communities. Our researches aimed to better understand cellular mechanisms related to cellular plasticity involved in resistance of such microbial communities to extreme conditions and more particularly to high level of pressure (> 50 MPa). Obviously, the first step is to isolate microorganisms present in deep sea sediments and then cultivate. The comparison of the cultivation of such microorganisms under atmospheric conditions and under pressure conditions will afford a possible reactivation of specific piezotolerants and/or piezophiles organisms from dormancy. The aim of the present study is to validate the use of original processes of culture under high gaseous pressures (50 MPa). (1) « Blind » chambers, of about 100 cm3, are designed to maintain microorganisms spread on solid medium contained in 3 small Petri Dishes (4 cm diameter) at 25-200 MPa. Observation in real time of colonies is not possible. (2) « Optical » or microscopic chambers are designed to resist up to 400 MPa and to visualize the microbial growth during hyperbaric treatment in real time. They can be used to cultivate and visualize microorganisms under gaseous isostatic pressure on solid medium or under hydrostatic pressure in liquid medium. The yeast Saccharomyces cerevisiae was used as a model of microorganism. Results show that its growth rate, measured between 1 and 50 MPa, decreased when the pressure level increased. The “optical” chamber is more adapted to the follow-up of the microbial growth because the growth rate can be calculated without decompression of the chamber and cells can be followed-up individually. The “blind” chamber is more adapted to cultivate samples in order to isolate piezotolerants and/or piezophiles microorganisms. Thus, they will be used to cultivate and isolate microorganisms present in deep sea sediments (-5000 m under Indian Ocean surface)

Survie et/ou réactivation de microorganismes du sol sous hautes pressions gazeuses

National audienceLe sol constitue une réserve considérable de microorganismes représentatifs de nombreuses communautés cellulaires. Les recherches reposent sur l’hypothèse qu’il existe, dans les échantillons de sol, des communautés microbiennes adaptées à des conditions physiques (pression, température) très différentes de celles rencontrées dans nos laboratoires : soit parce que les conditions de milieu ont changé (sol), soit parce que les conditions de prélèvement sont très différentes des conditions de culture (grands fonds marins). Dans cette optique, l’utilisation des hautes pressions gazeuses (200-1000 bars dans un premier temps) est envisagée afin d’essayer de réactiver des microorganismes dormants que l’on ne sait pas cultiver. La découverte et la culture de ces microorganismes pourrait permettre de découvrir des formes microbiennes avec des adaptations qu’il serait possible d’utiliser à des fins de connaissance sur la plasticité cellulaire ou d’exploiter industriellement certains éléments spécifiques du métabolisme (enzymes, produits). L’objectif de la présente étude est de valider l’utilisation de procédés originaux de culture sous Hautes Pressions. La maîtrise de ces procédés devrait permettre d’approcher les conditions optimales de culture par l’utilisation d’enceintes Hautes Pressions spécifiques : (1) Enceintes « aveugles » : elles permettent de placer des échantillons sous pression et de maintenir cette pression constante au cours de l’incubation mais ne permettent pas de visualiser la croissance des microorganismes lors du traitement hyperbare. Elles possèdent un volume utile d’environ 100 cm3 permettant l’introduction de 3 petites boîtes de Petri (4 cm de diamètre) et résistent à des pressions allant de 250 à 2000 bars selon le modèle de l’enceinte. (2) Enceintes « optiques » ou cellules de visualisation : elles permettent de visualiser les échantillons et de suivre, en temps réel, la croissance microbienne au cours du traitement hyperbare. Elles peuvent être utilisées pour réaliser des cultures sous pression gazeuse isostatique en milieu solide ou sous pression hydrostatique en milieu liquide. La présence d’une double enveloppe permet de réguler la température d’incubation. Cette cellule de visualisation peut résister à des pressions allant jusqu’à 4000 bars. Dans un premier temps, la levure Saccharomyces cerevisiae a été utilisée comme microorganisme modèle. Son taux de croissance a été mesuré entre 1 et 500 bars dans ces deux types d’enceintes. Une étude comparative a été menée afin de retenir l’enceinte la plus adaptée au suivi de la croissance microbienne. Dans un second temps, des échantillons de différents sols (terrestre et marin) ont été récupérés afin d’identifier les populations microbiennes piézotolérantes et/ou piézophiles éventuelles. Les échantillons de sol terrestre proviennent du domaine de Bretenières (I.N.R.A., Dijon) et les échantillons de sol marin ont été prélevés dans deux carottes profondes du Bassin Indien Central (Océan Indien) à plus de 5000 m de profondeur et ont été gracieusement fournis par la carothèque océanique du Muséum National d’Histoire Naturelle