Estudio del zooplancton de la plataforma costera de Vizcaya (Punta Endata)

60 pages, 23 figures, tablesDentro del estudio del ecosistema marino, el zooplancton constituye el "eslabón" más importante, por el que forzosamente ha de pasar buena parte de la energía que ha incorporado el plancton vegetal mediante la función clorofílica. Un determinado número de especies de animales plantónicos (notablemente elevado en las aguas poco profundas de la plataforma costera), son prácticamente herbívoros; encargados de transformar en carne el alimento vegetal constituído por los diminutos organismos (diatomeas, dinoflagelados, etc.) del fitoplancton. [...] Holoplancton, Meroplancton, Aulacantha scolymantha, Globigerina sp., Acantharia, Lychnaspis undulata, Litholopus H. biformis, Acrosphaera spinosa, Sarsia sp., Dipurena ophiogaster, Podocoryne hartlaubi, Lizzia blondina, Mitrocomella brownei, Phialidium hemisphaericum, Obelia ssp., Helgicirrha shulzei, Proboscidactyla stellata, Liriope tetrahylla, Persa incolorata, Muggiaea kochi, Muggiaea atlantica, Sphaeronectes kollikeri, Sagitta tasmanica, Sagitta friderici, Eukronia hamata, Eukronia fowleri, Tomopteris sp., Spionidae, Terebelidae, Adroditidae, Halocypridae, Conchoecia elegans, Conchoecia parthenoda, Conchoecia curta, Conchoecia discophora, Conchoecia rotundata, Conchoecia daphnoides, Evadne spinifera, Evadne nordmanni, Podon intermedius, Paracalanus parvus, Clausocalanus sp., Temora longicornis, Centropges tipicus, Acartia clausi, Aetideus armatus, Gaidius tenuispinus, Euchaeta hebes, Pleuromamma gracilis, Pleuromamma borealis, Heterorhabdus spinifrons, Balanus sp., Leptomysis, Anchialina, Gammaroides, Euprimmo macropus, Parathemisto sp., Nyctiphanes couchii, Macropipus sp., Atelecyclus, Eurynone, Processa ssp, Philocheras sculptus, Munida rugosa, Galathea dispersa, Anapagurus laevis, Anapagurus chiroacanthus, echinopluteus, ophiopluteus, auricularia, Oikopleura dioica, Fritillaria pellucida, Sardina pilchardus, Engraulis encrasicholus, Scomber scomber, Trachurus trachurus, Gadus luscus, Merluccius merluccius, Onos mustela, Oblada melanura, Pagellus centrodontus, Callionymus lyra, Trachyurus sp., Solea vulgaris, Microchirus variegatus, Solea lutea, Arnoglosus laterna, Solea lascaris, Maurolicus pennanti, Sparidae, Thunnus, Pleuronectidae, Gobiidae, Trigla sp. [...]Peer reviewe

Estudio del zooplancton de la plataforma costera de Vizcaya (Punta Endata)

Capítulo para el Informe final del Estudio ecológico de la plataforma costera del cantábrico frente a Punta Endata.-- 246 pages, figures, tablesDentro del estudio del ecosistema marino, el zooplancton constituye el "eslabón" más importante, por el que forzosamente ha de pasar buena parte de la energía que ha incorporado el plancton vegetal mediante la función clorofílica. Un determinado número de especies de animales plantónicos (notablemente elevado en las aguas poco profundas de la plataforma costera), son prácticamente herbívoros; encargados de transformar en carne el alimento vegetal constituído por los diminutos organismos del fitoplancton(diatomeas, dinoflagelados, etc.). [...] Aulacantha scolymantha, Acrosphaera spinosa, Spongodiscus mediterraneus, Coelodendrum sp., Globigerina sp., Lychnaspis undulata, Litholopus H. biformis, Sarsia sp., Dipurena ophiogaster, Euphysa aurata, Podocoryne hartlaubi, Lizzia blondina, Annatiara affinis, Amphinema dinema, Laodicea undulata, Mitrocomella brownei, Cosmetira pilosella, Phialidium hemisphaericum, Obelia ssp., Helgicirrha shulzei, Proboscidactyla stellata, Liriope tetrahylla, Persa incolorata, Muggiaea kochi, Muggiaea atlantica, Sagitta tasmanica, Sagitta friderici, Eukronia hamata, Sagitta lyra, Tomopteris sp., Halocypridae, Conchoecia elegans, Conchoecia parthenoda, Conchoecia curta, Conchoecia discophora, Conchoecia rotundata, Conchoecia daphnoides, Conchoecia subarcuata, Conchoecia spinirrostris, Sidiidae, Penilia avirrostris, Polyphemidae, Evadne spinifera, Evadne nordmanni, Podon intermedius, Doliolum nationalis, calanoida, harpactiocoida, cyclopoida, Calanus helgolandicus, Calanus carinatus, Paracalanus parvus, Clausocalanus sp., Ctenoacalanus vanus, Pseudocalanus elongatus, Diaxis sp., Temora longicornis, Metridia lucens, Centropages typicus, Cardacia sp., Cardacia armata, Acartia clausi, Oithona nana, Oithona helgolandica, Oithona plumifera, Euterpina acutifrons, Oncaea media, Corycaeus anglicus, Nannocalanus minor, Calocalanus styliremis, Ichnocalanus equalicauda, Mecynocera clausi, Euchaeta hebesi, Euchaeta acuta, Pleuromamma gracilis, Calanus tenuicornis, Eucalanus elogatus, Calocalanus pavo, Calocalanus contractus, Aetideus armatus, Euaetideus giesbrechti, Gaidius tenuispinus, Undinopsis bradyi, Scaphocalanus echinatus, Xanthocalanus minor, Xanthocalanus sp., Scolecithricella dentata, Centropages violaceus, Centropages chierchiae, Pleuromamma borealis, Heterorhabdus papilliger, Heterorhabdus spinifrons, Lucicutia gemina, Anomabocera patersoni, Pontella sp., Pontella Lo Biancoi, Labidocera wollastonii, Microsetella rosea, Microsetella norvegica, Clytemnestra rostrata, Vetoria granulosa, Oncaea conifera, Oncaea subtilis, Oncaea curta, Conaea rapax, Corycaeus giesbrechti, Corycaeus furcifer, Corycaeus brehmi, Cymbasoma sp., Paracalanus pygmaeus, Euchaeta hebes, Lucicutia flavicornis, Catapaguroides sp., Catapaguroides timidus ?,Balanus sp., Parathemisto oblivia, Caprella sp., Nyctiphanes couchi, Squilla mantis, Pandalina brevirrostris, Philocheras, Macropipus sp., Callianassa sp., Macrura reptantia, Anomura, Brachiura, Macrura nantatia, Alpheus glaber, Processa sp., Philocheras bispinosus, Anapagurus laevis, Anapagurus chiroacanthus, Ebalia tuberosa, Atelecyclus rotundatus, Pontophilus spinosus, Pagurus pubescens, Pagurus bernhardus, Pagurus prideauxi, Galathea dispersa, Galathea squamifera, Galathea intermedia, Munida perarmata, Corystes cassivelaunus, Carcinus maenas, Cancer pagurus, Athanas nitescens, Palaemon sp., Lysmata seticaudata, Jaxea nocturna, Upogebia sp., Diogenes pugilator, Porcellana longicornis, Thia scutellata, Pillumnus hiertellus, Xantho sp., Majar squinado, Clibanarius erythropus, Solenocera membranacea, Gennadas elegans, Segestes robustus, Pontophilus spinosus, Pandalina brevirrostris, Plesionika sp., P. martia ?, Caridion steveni, Caridion gordoni, Lysmata seticaudata, Lysmata uncicornis, Lysmata nilita, Thoralus cranchii, Eualus pusiolus, Latreutes sp., Alpheus macrocheles, Processa caniliculata, Palaemon serratus, Palaemon longirrostris, Palaemon adspersus, Palaemon elegans, Crangon crangon, Pilocheras bispinosus, Pilocheras trispinosus, Pilocheras factiatus, Nephropsidae, Scyllaridae, Scyllarus arctus, Axiidae, Axius stirhynchus, Laomediidae, Callinassidae, Callinassa sp., Callinassa subterranea, Diogenidae, Anapagurus hyndmanni, Galatheidae, Munida intermedia, Munida rugosa, Munida (tenuimana, Pesta) perarmata, Porcellanidae, Pisidia longicornis, Porcellana platycheles, Brachyura, Leucosiidae, Ebalia nux, Ebalia granulosa, Ebalia tumefacta, Corystidae, Atelecyclidae, Thiidae, Canceridae, Pirimelidae, Pirimela denticulata, Portunidae, Macropipus puber, Macropipus corrugatus, Macropipus tuberculatus, Polibius helnslowi, Macropipus arcuatus, Macropipus pusillus, Macropipus marmoreus, Xanthidae, Pilumnus sp., Goneplacidae, Goneplax rhomboides, Majidae, Maja squinado, Eurynome aspera, Inachus sp., Inachus dorsettensis, Inachus phalangium, Macropodia rostrata ?, Equinidos, Brissopsis atlantica, Paracentrotus, Sphaerechinus granularis, Echinopluteus, Ofiuridos, Ophiothrix fragilis, Ephioderma logicauda, Asteroideos, Astropecten irregularis, Marthasterias glacialis, Holoturidos, Holoturida tubulosa, Stichopus tremulus, Taliaceos, Salpidos, Salpa fusiformis, Doliolidos, Dolioletta gegenbauri, Penilla avirostris, Oikopleura dioica, Oikopleura fusiformis, Oikopleura longicauda, Fritillaria sp., Fritillaria pellucida, Fritillaria borealix ?, Sardina pilchardus, Engraulis encrasicolus, Scomber scombrus, Trachurus trachurus, Callyonimus lira, Maurolicus pennanti, Argentina sphyraena, Myctophum punctatum, Paralepis rissoi kroyeri, Merluccius merluccius, Gadus luscus, Onos mustela, Capros aper, serranus cabrilla, Mullus sp., Diplodus annularis, Oblada melanura, Pagellus centrodontus, Coris sp., Trachinus sp., Lepidopus caudatus, Pneumatophorus colias, Thunnus, Ophidion barbatum, Trigla sp., Trigla gurnardus, Trigla obscura, Arnoglosus laterna, Microchirus variegatus, Solea vulgaris, Solea lutea, Solea lascaris [...]Peer reviewe

Effect of the environment in DNA leaf extraction for the early identification of Prunus interspecific hybrids through PCR paternity tests

[ES] Se ha observado la conveniencia de realizar una selección precoz mediante tests de paternidad basados en la PCR (Reacción en Cadena de la Polimerasa), en plantas micropropagadas derivadas de cultivo in vitro de embriones inmaduros en un programa de mejora de patrones basado en cruzamientos interespecíficos. Los tests de paternidad nos han permitido cribar los clones no híbridos durante la fase inicial de propagación y reducir la incidencia de las polinizaciones accidentales. En este trabajo se estudia la eficiencia de la extracción de ADN, para la realización de los test de paternidad, de tejidos foliares de plantas crecidas en diferentes ambientes y medios de cultivo. Las hojas de las plantas in vitro se han visto afectadas tanto por el ambiente como por la composición del medio de cultivo, modificando la relación PS/PF (peso seco/peso fresco) y la extracción de ADN. Las plantas de campo mostraron el mayor PF por unidad de superficie y la mayor relación PS/PF, sin embargo, las plantas sombreadas crecidas en invernadero proporcionaron la mayor concentración de ADN extraído. Las plantas cultivadas in vitro en un medio con BAP (bencilaminopurina) mostraron menor concentración de ADN extraído que las plantas ex vitro, pero mayor que las plantas cultivadas en medio con ZEA (zeatina) que mostraron la menor cantidad de PF por superficie. Estos resultados se discuten en términos de la optimización de la extracción de ADN y del efecto del ambiente y del medio de cultivo en los tejidos foliares de las plantas.[EN] Effect of the environment in DNA leaf extraction for the early identification of Prunus interspecific hybrids through PCR paternity tests Early selection in a breeding program has been performed applying PCR (Polymerase Chain Reaction) paternity tests to micropropagated plants derived from in vitro germinated embryos. Paternity tests allowed us to screen out non-hybrid clones during the initial propagation phase and thus reducing the incidence of accidental pollinations. In this work the efficiency of DNA extraction for paternity tests from foliar tissues of plants grown under different environments and culture media is studied. In vitro plant leaves have been affected by both the environment and the culture media composition, modifying the ratio DW/FW (dry weight/fresh weight) and the DNA extraction performance. The highest FW per cm-2 and the highest DW/FW ratio were found in field plants, however, shaded plants grown in a greenhouse yielded the highest extracted DNA concentration. In vitro plants cultured on BAPcontaining medium showed lower extracted DNA concentration than ex vitro plants, but higher than that of plants cultured on ZEA-containing medium that showed the lowest FW per cm-2. These results are discussed in terms of the optimization of the DNA extraction for PCR analysis and of the effects of both the environment and the cytokinin type used in vitro on plant leaf tissues.Este trabajo se ha financiado en parte por los proyectos CONSID-DGA P012/2001 y CICYT AGL2001-2414-C04-01 y AGL2002-03231-AGR-FOR.Peer reviewe