An industrial scale process for the enzymatic removal of steryl glucosides from biodiesel

Background: Biodiesels produced from transesterification of vegetable oils have a major quality problem due to thepresence of precipitates, which need to be removed to avoid clogging of filters and engine failures. These precipitateshave been reported to be mostly composed of steryl glucosides (SGs), but so far industrial cost-effective methods toremove these compounds are not available. Here we describe a novel method for the efficient removal of SGs frombiodiesel, based on the hydrolytic activity of a thermostable β-glycosidase obtained from Thermococcus litoralis.Results: A steryl glucosidase (SGase) enzyme from T. litoralis was produced and purified from Escherichia coli culturesexpressing a synthetic gene, and used to treat soybean-derived biodiesel. Several optimization steps allowed for theselection of optimal reaction conditions to finally provide a simple and efficient process for the removal of SGs fromcrude biodiesel. The resulting biodiesel displayed filterability properties similar to distilled biodiesel according to thetotal contamination (TC), the cold soak filtration test (CSFT), filter blocking tendency (FBT), and cold soak filter blockingtendency (CSFBT) tests. The process was successfully scaled up to a 20 ton reactor, confirming its adaptability toindustrial settings.Conclusions: The results presented in this work provide a novel path for the removal of steryl glucosides from biodieselusing a cost-effective, environmentally friendly and scalable enzymatic process, contributing to the adoption ofthis renewable fuel.Fil: Peirú, Salvador. Universidad Nacional de Rosario. Facultad de Ciencias Bioquímicas y Farmacéuticas; Argentina. Keclon; Argentina. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas; ArgentinaFil: Aguirre, Andres. Universidad Nacional de Rosario. Facultad de Ciencias Bioquímicas y Farmacéuticas; Argentina. Keclon; Argentina. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas; ArgentinaFil: Eberhardt, Maria Florencia. Universidad Nacional de Rosario. Facultad de Ciencias Bioquímicas y Farmacéuticas; Argentina. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas; ArgentinaFil: Braia, Mauricio Javier. Universidad Nacional de Rosario. Facultad de Ciencias Bioquímicas y Farmacéuticas; Argentina. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas; ArgentinaFil: Cabrera, Rodolfo Ariel. Unitec Bio; ArgentinaFil: Menzella, Hugo Gabriel. Universidad Nacional de Rosario. Facultad de Ciencias Bioquímicas y Farmacéuticas; Argentina. Keclon; Argentina. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas; Argentin

Design and Synthesis of Pathway Genes for Polyketide Biosynthesis

In this chapter we describe novel methods for the design and assembly of synthetic pathways for the synthesis of polyketides and tailoring sugars. First, a generic design for type I polyketide synthase genes is presented that allows their facile assembly for the expression of chimeric enzymes in an engineered Escherichia coli host. The sequences of the synthetic genes are based on naturally occurring polyketide synthase genes but they are redesigned by custom-made software to optimize codon usage to maximize expression in E. coli and to provide a standard set of restriction sites to allow combinatorial assembly into unnatural enzymes. The methodology has been validated by building a large number of bimodular mini-PKSs that make easily assayed triketide products. Learning from the successful bimodules, a conceptual advance was made by assembling genes encoding functional trimodular enzymes, capable of making tetraketide products. Second, methods for the rapid assembly and exchange of sugar pathway genes into functional operons are described. The approach was validated by the assembly of the 15 genes for the synthesis of mycarose and desosamine in two operons, which yielded erythromycin C when coexpressed with the corresponding PKS genes. These methods are important enabling steps toward the goals of making designer drugs by polyketide synthase and sugar pathway engineering and, in the shorter term, producing by fermentation advanced intermediates for the synthesis of compounds that otherwise require large numbers of chemical steps.Fil: Peirú, Salvador. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Centro Científico Tecnológico Conicet - Rosario. Instituto de Biología Molecular y Celular de Rosario. Universidad Nacional de Rosario. Facultad de Ciencias Bioquímicas y Farmacéuticas. Instituto de Biología Molecular y Celular de Rosario; ArgentinaFil: Gramajo, Hugo Cesar. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Centro Científico Tecnológico Conicet - Rosario. Instituto de Biología Molecular y Celular de Rosario. Universidad Nacional de Rosario. Facultad de Ciencias Bioquímicas y Farmacéuticas. Instituto de Biología Molecular y Celular de Rosario; ArgentinaFil: Menzella, Hugo Gabriel. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Centro Científico Tecnológico Conicet - Rosario. Instituto de Biología Molecular y Celular de Rosario. Universidad Nacional de Rosario. Facultad de Ciencias Bioquímicas y Farmacéuticas. Instituto de Biología Molecular y Celular de Rosario; Argentin

Heterologous Production of Polyketides in Bacteria

Polyketide natural products are among the most important microbial metabolites in human medicine and are widely used to treat both acute and degenerative diseases. The need to develop new drugs has prompted the idea of using heterologous systems for the expression of polyketide biosynthetic pathways. The basic idea behind this approach is to use heterologous bacterial systems with better growth and genetic characteristics that could support better production of a certain compound than the original host or that could allow the generation of novel analogues through combinatorial biosynthesis. Moreover, these hosts could be used to express "cryptic" secondary metabolic pathways or serve as surrogate hosts in metagenomics experiments in order to find potential new bioactive compounds. In this chapter we discuss recent advances in the heterologous production of polyketides in bacteria and describe some methodological improvements of the systems.Fil: Rodriguez, Eduardo Jose. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Centro Científico Tecnológico Conicet - Rosario. Instituto de Biología Molecular y Celular de Rosario. Universidad Nacional de Rosario. Facultad de Ciencias Bioquímicas y Farmacéuticas. Instituto de Biología Molecular y Celular de Rosario; ArgentinaFil: Menzella, Hugo Gabriel. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Centro Científico Tecnológico Conicet - Rosario. Instituto de Biología Molecular y Celular de Rosario. Universidad Nacional de Rosario. Facultad de Ciencias Bioquímicas y Farmacéuticas. Instituto de Biología Molecular y Celular de Rosario; ArgentinaFil: Gramajo, Hugo Cesar. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Centro Científico Tecnológico Conicet - Rosario. Instituto de Biología Molecular y Celular de Rosario. Universidad Nacional de Rosario. Facultad de Ciencias Bioquímicas y Farmacéuticas. Instituto de Biología Molecular y Celular de Rosario; Argentin

Strain engineering and process optimization for enhancing the production of a thermostable steryl glucosidase in Escherichia coli

Biodiesels produced from transesterification of vegetable oils have a major problem in quality due to the presence of precipitates, which are mostly composed of steryl glucosides (SGs). We have recently described an enzymatic method for the efficient removal of SGs from biodiesel, based on the activity of a thermostable β-glycosidase from Thermococcus litoralis. In the present work, we describe the development of an Escherichia coli-based expression system and a high cell density fermentation process. Strain and process engineering include the assessment of different promoters to drive the expression of a codon-optimized gene, the co-expression of molecular chaperones and the development of a high cell density fermentation process. A 200-fold increase in the production titers was achieved, which directly impacts on the costs of the industrial process for treating biodiesel.Fil: Eberhardt, Maria Florencia. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Centro Científico Tecnológico Conicet - Rosario. Instituto de Procesos Biotecnológicos y Químicos Rosario. Universidad Nacional de Rosario. Facultad de Ciencias Bioquímicas y Farmacéuticas. Instituto de Procesos Biotecnológicos y Químicos Rosario; ArgentinaFil: Aguirre, Andres. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Centro Científico Tecnológico Conicet - Rosario. Instituto de Procesos Biotecnológicos y Químicos Rosario. Universidad Nacional de Rosario. Facultad de Ciencias Bioquímicas y Farmacéuticas. Instituto de Procesos Biotecnológicos y Químicos Rosario; Argentina. Keclon S.A.; ArgentinaFil: Menzella, Hugo Gabriel. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Centro Científico Tecnológico Conicet - Rosario. Instituto de Procesos Biotecnológicos y Químicos Rosario. Universidad Nacional de Rosario. Facultad de Ciencias Bioquímicas y Farmacéuticas. Instituto de Procesos Biotecnológicos y Químicos Rosario; ArgentinaFil: Peirú, Salvador. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Centro Científico Tecnológico Conicet - Rosario. Instituto de Procesos Biotecnológicos y Químicos Rosario. Universidad Nacional de Rosario. Facultad de Ciencias Bioquímicas y Farmacéuticas. Instituto de Procesos Biotecnológicos y Químicos Rosario; Argentin

Expression of codon optimized genes in microbial systems: current industrial applications and perspectives

The efficient production of functional proteins in heterologous hosts is one of the major bases of modern biotechnology. Unfortunately, many genes are difficult to express outside their original context. Due to their apparent “silent” nature, synonymous codon substitutions have long been thought to be trivial. In recent years, this dogma has been refuted by evidence that codon replacement can have a significant impact on gene expression levels and protein folding. In the past decade, considerable advances in the speed and cost of gene synthesis have facilitated the complete redesign of entire gene sequences, dramatically improving the likelihood of high protein expression. This technology significantly impacts the economic feasibility of microbial-based biotechnological processes by, for example, increasing the volumetric productivities of recombinant proteins or facilitating the redesign of novel biosynthetic routes for the production of metabolites. This review discusses the current applications of this technology, particularly those regarding the production of small molecules and industrially relevant recombinant enzymes. Suggestions for future research and potential uses are provided as well.Fil: Elena, Claudia Edicht. Universidad Nacional de Rosario. Facultad de Ciencias Bioquímicas y Farmacéuticas; Argentina. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas; ArgentinaFil: Ravasi, Pablo. Universidad Nacional de Rosario. Facultad de Ciencias Bioquímicas y Farmacéuticas; Argentina. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas; ArgentinaFil: Castelli, Maria Eugenia. Universidad Nacional de Rosario. Facultad de Ciencias Bioquímicas y Farmacéuticas; Argentina. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas; ArgentinaFil: Peirú, Salvador. Universidad Nacional de Rosario. Facultad de Ciencias Bioquímicas y Farmacéuticas; Argentina. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas; ArgentinaFil: Menzella, Hugo Gabriel. Universidad Nacional de Rosario. Facultad de Ciencias Bioquímicas y Farmacéuticas; Argentina. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas; Argentin

The βγ-crystallin domain of Lysinibacillus sphaericus phosphatidylinositol phospholipase C plays a central role in protein stability

βγ-crystallin has emerged as a superfamily of structurally homologous proteins with representatives across all domains of life. A major portion of this superfamily is constituted by microbial members. This superfamily has also been recognized as a novel group of Ca 2+ -binding proteins with a large diversity and variable properties in Ca 2+ binding and stability. We have recently described a new phosphatidylinositol phospholipase C from Lysinibacillus sphaericus (LS-PIPLC) which was shown to efficiently remove phosphatidylinositol from crude vegetable oil. Here, the role of the C-terminal βγ-crystallin domain of LS-PIPLC was analyzed in the context of the whole protein. A truncated protein in which the C-terminal βγ-crystallin domain was deleted (LS-PIPLC ΔCRY ) is catalytically as efficient as the full-length protein (LS-PIPLC). However, the thermal and chemical stability of LS-PIPLC ΔCRY are highly affected, demonstrating a stabilizing role for this domain. It is also shown that the presence of Ca 2+ increases the thermal and chemical stability of the protein both in aqueous media and in oil, making LS-PIPLC an excellent candidate for use in industrial soybean oil degumming.Fil: Cerminati, Sebastián. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Centro Científico Tecnológico Conicet - Rosario. Instituto de Procesos Biotecnológicos y Químicos Rosario. Universidad Nacional de Rosario. Facultad de Ciencias Bioquímicas y Farmacéuticas. Instituto de Procesos Biotecnológicos y Químicos Rosario; ArgentinaFil: Paoletti, Luciana Elisa. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Centro Científico Tecnológico Conicet - Rosario. Instituto de Procesos Biotecnológicos y Químicos Rosario. Universidad Nacional de Rosario. Facultad de Ciencias Bioquímicas y Farmacéuticas. Instituto de Procesos Biotecnológicos y Químicos Rosario; ArgentinaFil: Peirú, Salvador. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Centro Científico Tecnológico Conicet - Rosario. Instituto de Procesos Biotecnológicos y Químicos Rosario. Universidad Nacional de Rosario. Facultad de Ciencias Bioquímicas y Farmacéuticas. Instituto de Procesos Biotecnológicos y Químicos Rosario; ArgentinaFil: Menzella, Hugo Gabriel. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Centro Científico Tecnológico Conicet - Rosario. Instituto de Procesos Biotecnológicos y Químicos Rosario. Universidad Nacional de Rosario. Facultad de Ciencias Bioquímicas y Farmacéuticas. Instituto de Procesos Biotecnológicos y Químicos Rosario; ArgentinaFil: Castelli, Maria Eugenia. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Centro Científico Tecnológico Conicet - Rosario. Instituto de Procesos Biotecnológicos y Químicos Rosario. Universidad Nacional de Rosario. Facultad de Ciencias Bioquímicas y Farmacéuticas. Instituto de Procesos Biotecnológicos y Químicos Rosario; Argentin

Enzymatic hydrolysis of steryl glucosides, major contaminants of vegetable oil-derived biodiesel

Biodiesels are mostly produced from lipid transesterification of vegetable oils, including those from soybean, jatropha, palm, rapeseed, sunflower, and others. Unfortunately, transesterification of oil produces various unwanted side products, including steryl glucosides (SG), which precipitate and need to be removed to avoid clogging of filters and engine failures. So far, efficient and cost-effective methods to remove SGs from biodiesel are not available. Here we describe for the first time the identification, characterization and heterologous production of an enzyme capable of hydrolyzing SGs. A synthetic codon-optimized version of the lacS gene from Sulfolobus solfataricus was efficiently expressed and purified from Escherichia coli, and used to treat soybean derived biodiesel containing 100 ppm of SGs. After optimizing different variables, we found that at pH 5.5 and 87 °C, and in the presence of 0.9 % of the emulsifier polyglycerol polyricinoleate, 81 % of the total amount of SGs present in biodiesel were hydrolyzed by the enzyme. This remarkable reduction in SGs suggests a path for the removal of these contaminants from biodiesel on industrial scale using an environmentally friendly enzymatic process.Fil: Aguirre, Andres. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Centro Científico Tecnológico Conicet - Rosario. Instituto de Biología Molecular y Celular de Rosario. Universidad Nacional de Rosario. Facultad de Ciencias Bioquímicas y Farmacéuticas. Instituto de Biología Molecular y Celular de Rosario; ArgentinaFil: Peirú, Salvador. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Centro Científico Tecnológico Conicet - Rosario. Instituto de Biología Molecular y Celular de Rosario. Universidad Nacional de Rosario. Facultad de Ciencias Bioquímicas y Farmacéuticas. Instituto de Biología Molecular y Celular de Rosario; ArgentinaFil: Eberhardt, Maria Florencia. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Centro Científico Tecnológico Conicet - Rosario. Instituto de Biología Molecular y Celular de Rosario. Universidad Nacional de Rosario. Facultad de Ciencias Bioquímicas y Farmacéuticas. Instituto de Biología Molecular y Celular de Rosario; ArgentinaFil: Vetcher, Leandro. Keclon; ArgentinaFil: Cabrera, Rodolfo Ariel. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas; Argentina. Unitec Bio; ArgentinaFil: Menzella, Hugo Gabriel. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Centro Científico Tecnológico Conicet - Rosario. Instituto de Biología Molecular y Celular de Rosario. Universidad Nacional de Rosario. Facultad de Ciencias Bioquímicas y Farmacéuticas. Instituto de Biología Molecular y Celular de Rosario; Argentin

Pichia pastoris engineering for the production of a modified phospholipase C

Crude vegetable oils are refined to remove impurities that adversely impact in their stability, color and flavor. In recent years, enzymatic degumming methods using phospholipase C (PLC) enzymes provide an environmentally friendly process for phospholipids removal with improved oil recovery yields. In this study, Pichia pastoris was used as the expression system for the production of PLC-Y, a modified PLC enzyme derived from Bacillus cereus. Production of secreted PLC-Y driven by the methanol inducible AOX1 promoter was optimized by genetic strain engineering which included gene codon optimization, generation of multi-copy chromosomal integrations and the co-expression of helper factors supporting protein folding, processing and secretion processes. In addition, tunable promoters directing helper factor expression were tested. In batch cultures, a strain harboring seven integrated copies of the PLC-Y expression cassette and co-expressing the HAC1 transcription factor under an attenuated AOX1 promoter showed a 6.2 fold increase in the production titers compared to the strain harboring a single gene copy. A fed-batch fermentation process developed using this engineered strain produced 4.5 g/l of this enzyme. The results presented in this work show the viability of using PLC-Y for oil degumming and provide a manufacturing process for its cost effective production.Fil: Elena, Claudia Edicht. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Centro Científico Tecnológico Conicet - Rosario. Instituto de Procesos Biotecnológicos y Químicos Rosario. Universidad Nacional de Rosario. Facultad de Ciencias Bioquímicas y Farmacéuticas. Instituto de Procesos Biotecnológicos y Químicos Rosario; ArgentinaFil: Ravasi, Pablo. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Centro Científico Tecnológico Conicet - Rosario. Instituto de Procesos Biotecnológicos y Químicos Rosario. Universidad Nacional de Rosario. Facultad de Ciencias Bioquímicas y Farmacéuticas. Instituto de Procesos Biotecnológicos y Químicos Rosario; ArgentinaFil: Cerminati, Sebastián. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Centro Científico Tecnológico Conicet - Rosario. Instituto de Procesos Biotecnológicos y Químicos Rosario. Universidad Nacional de Rosario. Facultad de Ciencias Bioquímicas y Farmacéuticas. Instituto de Procesos Biotecnológicos y Químicos Rosario; ArgentinaFil: Peirú, Salvador. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Centro Científico Tecnológico Conicet - Rosario. Instituto de Procesos Biotecnológicos y Químicos Rosario. Universidad Nacional de Rosario. Facultad de Ciencias Bioquímicas y Farmacéuticas. Instituto de Procesos Biotecnológicos y Químicos Rosario; ArgentinaFil: Castelli, Maria Eugenia. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Centro Científico Tecnológico Conicet - Rosario. Instituto de Procesos Biotecnológicos y Químicos Rosario. Universidad Nacional de Rosario. Facultad de Ciencias Bioquímicas y Farmacéuticas. Instituto de Procesos Biotecnológicos y Químicos Rosario; ArgentinaFil: Menzella, Hugo Gabriel. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Centro Científico Tecnológico Conicet - Rosario. Instituto de Procesos Biotecnológicos y Químicos Rosario. Universidad Nacional de Rosario. Facultad de Ciencias Bioquímicas y Farmacéuticas. Instituto de Procesos Biotecnológicos y Químicos Rosario; Argentin

Industrial uses of phospholipases: current state and future applications

Phospholipids play a central role in all living organisms. Phospholipases, the enzymes aimed at modifying phospholipids, are consequently widespread in nature and play diverse roles, from lipid metabolism and cellular signaling in eukaryotes to virulence and nutrient acquisition in microbes. Phospholipases catalyze the hydrolysis of one or more ester or phosphodiester bonds of glycerophospholipids. The use of phospholipases with industrial purposes has constantly increased over the last 30 years. This demand is rapidly growing given the ongoing improvements in protein engineering and the reduction of enzymes manufacturing costs, making them suitable for industrial use. Here, a general overview of phopholipases A, B, C, and D and their industrial application is presented along with potential new uses for these enzymes. We draw attention to commercial phospholipases used to improve the emulsifying properties of products in the baking, egg, and dairy industries. On the other hand, the improvement of oil degumming by phospholipases is thoroughly analyzed. Moreover, recent developments in enzymatic biodiesel production and the use of phospholipases for the synthesis of phospholipids with pharmaceutical or nutritional value are reviewed.Fil: Cerminati, Sebastián. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Centro Científico Tecnológico Conicet - Rosario. Instituto de Procesos Biotecnológicos y Químicos Rosario. Universidad Nacional de Rosario. Facultad de Ciencias Bioquímicas y Farmacéuticas. Instituto de Procesos Biotecnológicos y Químicos Rosario; ArgentinaFil: Paoletti, Luciana Elisa. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Centro Científico Tecnológico Conicet - Rosario. Instituto de Procesos Biotecnológicos y Químicos Rosario. Universidad Nacional de Rosario. Facultad de Ciencias Bioquímicas y Farmacéuticas. Instituto de Procesos Biotecnológicos y Químicos Rosario; ArgentinaFil: Aguirre, Andres. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Centro Científico Tecnológico Conicet - Rosario. Instituto de Procesos Biotecnológicos y Químicos Rosario. Universidad Nacional de Rosario. Facultad de Ciencias Bioquímicas y Farmacéuticas. Instituto de Procesos Biotecnológicos y Químicos Rosario; ArgentinaFil: Peirú, Salvador. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Centro Científico Tecnológico Conicet - Rosario. Instituto de Procesos Biotecnológicos y Químicos Rosario. Universidad Nacional de Rosario. Facultad de Ciencias Bioquímicas y Farmacéuticas. Instituto de Procesos Biotecnológicos y Químicos Rosario; ArgentinaFil: Menzella, Hugo Gabriel. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Centro Científico Tecnológico Conicet - Rosario. Instituto de Procesos Biotecnológicos y Químicos Rosario. Universidad Nacional de Rosario. Facultad de Ciencias Bioquímicas y Farmacéuticas. Instituto de Procesos Biotecnológicos y Químicos Rosario; ArgentinaFil: Castelli, Maria Eugenia. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Centro Científico Tecnológico Conicet - Rosario. Instituto de Procesos Biotecnológicos y Químicos Rosario. Universidad Nacional de Rosario. Facultad de Ciencias Bioquímicas y Farmacéuticas. Instituto de Procesos Biotecnológicos y Químicos Rosario; Argentin

Development of a highly efficient oil degumming process using a novel phosphatidylinositol-specific phospholipase C enzyme

Enzymatic degumming using phospholipase C (PLC) enzymes may be used in environmentally friendly processes with improved oil recovery yields. In this work, phosphatidylinositol-specific phospholipase C (PIPLC) candidates obtained from an in silico analysis were evaluated for oil degumming. A PIPLC from Lysinibacillus sphaericus was shown to efficiently remove phosphatidylinositol from crude oil, and when combined with a second phosphatidylcholine and phosphatidylethanolamine-specific phospholipase C, the three major phospholipids were completely hydrolyzed, providing an extra yield of oil greater than 2.1%, compared to standard methods. A remarkably efficient fed-batch Escherichia coli fermentation process producing ∼14 g/L of the recombinant PIPLC enzyme was developed, which may facilitate the adoption of this cost-effective oil-refining process.Fil: Cerminati, Sebastián. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Centro Científico Tecnológico Conicet - Rosario. Instituto de Procesos Biotecnológicos y Químicos Rosario. Universidad Nacional de Rosario. Facultad de Ciencias Bioquímicas y Farmacéuticas. Instituto de Procesos Biotecnológicos y Químicos Rosario; ArgentinaFil: Eberhardt, Maria Florencia. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Centro Científico Tecnológico Conicet - Rosario. Instituto de Procesos Biotecnológicos y Químicos Rosario. Universidad Nacional de Rosario. Facultad de Ciencias Bioquímicas y Farmacéuticas. Instituto de Procesos Biotecnológicos y Químicos Rosario; ArgentinaFil: Elena, Claudia E.. Keclon S.A.; ArgentinaFil: Peirú, Salvador. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Centro Científico Tecnológico Conicet - Rosario. Instituto de Procesos Biotecnológicos y Químicos Rosario. Universidad Nacional de Rosario. Facultad de Ciencias Bioquímicas y Farmacéuticas. Instituto de Procesos Biotecnológicos y Químicos Rosario; Argentina. Keclon S.A.; ArgentinaFil: Castelli, Maria Eugenia. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Centro Científico Tecnológico Conicet - Rosario. Instituto de Procesos Biotecnológicos y Químicos Rosario. Universidad Nacional de Rosario. Facultad de Ciencias Bioquímicas y Farmacéuticas. Instituto de Procesos Biotecnológicos y Químicos Rosario; Argentina. Keclon S.A.; ArgentinaFil: Menzella, Hugo Gabriel. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Centro Científico Tecnológico Conicet - Rosario. Instituto de Procesos Biotecnológicos y Químicos Rosario. Universidad Nacional de Rosario. Facultad de Ciencias Bioquímicas y Farmacéuticas. Instituto de Procesos Biotecnológicos y Químicos Rosario; Argentina. Keclon S.A.; Argentin