Træningsprogram til at forebygge vejvrede

I forbindelse med forskningsprojektet RELAX har vi udviklet et træningsprogram, som har til formål at reducere forekomsten af vejvrede i Danmark. Træningsprogrammet er tiltænkt den almene befolkning og ikke personer med et diagnosticeret vredeshåndteringsproblem. Træningsprogrammet er baseret på tidligere forskning inden for kognitiv behandling, vrede og vejvrede. Målet med træningsprogrammet er at give deltagerne værktøjer til at håndtere egen og andres vrede i trafikken. Træningsprogrammet indeholder gruppeøvelser, diskussioner og præsentation af fakta om vrede og trafiksikkerhed. Det udføres med grupper på 10-20 personer og tager ca. 1,5 time at gennemføre. Træningsprogrammet er testet og har fået positiv feedback fra deltagerne. Effekten af træningsprogrammet undersøges i øjeblikket i forbindelse med RELAX-projektet. På Trafikdage vil vi præsentere de forskellige dele af træningsprogrammet i detalje samt de erfaringer, som vi på det tidspunkt vil have opnået via et antal gennemførelser af træningsprogrammet

Gene-Based Pathogen Detection: Can We Use qPCR to Predict the Outcome of Diagnostic Metagenomics?

In microbial food safety, molecular methods such as quantitative PCR (qPCR) and next-generation sequencing (NGS) of bacterial isolates can potentially be replaced by diagnostic shotgun metagenomics. However, the methods for pre-analytical sample preparation are often optimized for qPCR, and do not necessarily perform equally well for qPCR and sequencing. The present study investigates, through screening of methods, whether qPCR can be used as an indicator for the optimization of sample preparation for NGS-based shotgun metagenomics with a diagnostic focus. This was used on human fecal samples spiked with 103 or 106 colony-forming units (CFU)/g Campylobacter jejuni, as well as porcine fecal samples spiked with 103 or 106 CFU/g Salmonella typhimurium. DNA was extracted from the samples using variations of two widely used kits. The following quality parameters were measured: DNA concentration, qPCR, DNA fragmentation during library preparation, amount of DNA available for sequencing, amount of sequencing data, distribution of data between samples in a batch, and data insert size; none showed any correlation with the target ratio of the spiking organism detected in sequencing data. Surprisingly, diagnostic metagenomics can have better detection sensitivity than qPCR for samples spiked with 103 CFU/g C. jejuni. The study also showed that qPCR and sequencing results may be different due to inhibition in one of the methods. In conclusion, qPCR cannot uncritically be used as an indicator for the optimization of sample preparation for diagnostic metagenomics