13 research outputs found

    Application of flow cytometry to wine microorganisms

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    International audienceFlow cytometry (FCM) is a powerful technique allowing detection and enumeration of microbial populations in food and during food process. Thanks to the fluorescent dyes used and specific probes, FCM provides information about cell physiological state and allows enumeration of a microorganism in a mixed culture. Thus, this technique is increasingly used to quantify pathogen, spoilage microorganisms and microorganisms of interest. Since one decade, FCM applications to the wine field increase greatly to determine population and physiological state of microorganisms performing alcoholic and malolactic fermentations. Wine spoilage microorganisms were also studied. In this review we briefly describe FCM principles. Next, a deep revision concerning enumeration of wine microorganisms by FCM is presented including the fluorescent dyes used and techniques allowing a yeast and bacteria species specific enumeration. Then, the last chapter is dedicated to fluorescent dyes which are used to date in fluorescent microscopy but applicable in FCM. This chapter also describes other interesting "future" techniques which could be applied to study the wine microorganisms. Thus, this review seeks to highlight the main advantages of the flow cytometry applied to wine microbiology

    La cytométrie appliquée aux mircoorganismes du vin

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    International audienceFlow cytometry (FCM) is a powerful technique allowing detection and enumeration of microbial populations in food and during food process. Thanks to the fluorescent dyes used and specific probes, FCM provides information about cell physiological state and allows enumeration of a microorganism in a mixed culture. Thus, this technique is increasingly used to quantify pathogen, spoilage microorganisms and microorganisms of interest. Since one decade, FCM applications to the wine field increase greatly to determine population and physiological state of microorganisms performing alcoholic and malolactic fermentations. We will describe FCM principles and the available techniques allowing quantification of wine microorganisms by FCM using fluorescent dyes. Different examples of FCM analysis regarding monitoring of alcoholic fermentation, malolactic fermentation (total population, viable population, physiological state), specific detection and quantification of spoilage microorganisms like Brettanomyces will be presented

    La cytométrie appliquée aux mircoorganismes du vin

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    Flow cytometry (FCM) is a powerful technique allowing detection and enumeration of microbial populations in food and during food process. Thanks to the fluorescent dyes used and specific probes, FCM provides information about cell physiological state and allows enumeration of a microorganism in a mixed culture. Thus, this technique is increasingly used to quantify pathogen, spoilage microorganisms and microorganisms of interest. Since one decade, FCM applications to the wine field increase greatly to determine population and physiological state of microorganisms performing alcoholic and malolactic fermentations. We will describe FCM principles and the available techniques allowing quantification of wine microorganisms by FCM using fluorescent dyes. Different examples of FCM analysis regarding monitoring of alcoholic fermentation, malolactic fermentation (total population, viable population, physiological state), specific detection and quantification of spoilage microorganisms like Brettanomyces will be presented

    Efficiency of population-dependent sulfite against Brettanomyces bruxellensis in red wine

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    International audienceBrettanomyces bruxellensis is considered as a spoilage yeast encountered mainly in red wine. It is able to reduce vinylphenols from phenolic acids to ethylphenols. These volatiles are responsible for the phenolic "Brett character" described as animal, farm, horse sweat and animal leather odors. Other molecules are responsible for organoleptic deviations described as "mousiness taint". SO2 is the product most often used by winemakers to prevent B. bruxellensis growth. Usually, the recommended molecular dose of SO2 (active SO2, mSO(2)) is highly variable, from 03 to 0.8 mg/L. But these doses do not take into account differences of strain resistance to sulfites or population levels. Moreover, SO2 is known as a chemical stressor inducing a viable but nonculturable (VBNC) state of B. bruxellensis. These cells, which are non-detectable by plate counting, can lead to new contamination when the amount of sulfite decreases over time. Consequently, we first assessed the effect of SO2 levels in red wine on two strains with phenotypically different sulfite resistances. Then, we studied the relationship between amounts of SO2 (0, 0.5, 0.9 and 1.1 mg/L active SO2) and population levels (10(3), 10(4) and 10(5) cells/mL) in red wine. Yeasts were enumerated by both plate counting and flow cytometry over time using viability dye. Our results showed different SO2 resistances according to the strain used. A relationship between yeast population level and SO2 resistance was demonstrated: the higher the yeast concentration, the lower the efficiency of SO2. Under certain conditions, the VBNC state of B. bruxellensis was highlighted in red wine. Yeasts in this VBNC state did not produce 4-EP. Moreover, cells became culturable again over time. All these results provide new information enabling better management of sulfite addition during wine aging

    L’efficacitĂ© du sulfite sur Brettanomyces bruxellensis dĂ©pend de la population prĂ©sente

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    International audienceBrettanomyces bruxellensis est une levure d’altĂ©ration du vin avec de faibles besoins nutritionnels, rĂ©sistante Ă  l’éthanol et aux faibles pH, lui permettant une implantation en vin durant ou aprĂšs la fermentation alcoolique (Conterno et al., 2006). B. bruxellensis est capable de produire des phĂ©nols volatils (Ă©thyl-4-phĂ©nol, Ă©thyl-4-gaĂŻacol et Ă©thyl-4-catĂ©chol) (Oelofse et al., 2008). Ces molĂ©cules volatiles odorantes amĂšnent un caractĂšre phĂ©nolĂ© et animal au vin connu sous le nom de « caractĂšre Brett ». D’autres molĂ©cules (2-acetyltetrahydropyridine and 2-ethyltetrahydropyridine) produites par B. bruxellensis sont Ă©galement responsables d’une dĂ©viation organoleptique appelĂ©e communĂ©ment « goĂ»t de souris ». C’est pourquoi, diffĂ©rents traitements sont disponibles pour prĂ©venir les contaminations par B. bruxellensis. Le sulfite reste le principal adjuvant utilisĂ© pour Ă©viter le dĂ©veloppement de B. bruxellensis. Cependant, l’évaluation de l’efficacitĂ© du sulfite est complexe car cette levure peut ĂȘtre plus ou moins tolĂ©rante Ă  ce traitement et l’efficacitĂ© est connue pour ĂȘtre souche dĂ©pendante (Barata et al., 2008)

    Quantification des Brettanomyces par qPCR : Étude de la fiabilitĂ©, rĂ©pĂ©tabilitĂ© et reproductibilitĂ© des kits

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    Article de revue professionnelleBrettanomyces bruxellensis est une levure d’altĂ©ration du vin avec de faibles besoins nutritionnels, rĂ©sistante Ă  l’éthanol et aux faibles pH, lui permettant une implantation en vin durant ou aprĂšs la fermentation alcoolique (Conterno et al., 2006). B. bruxellensis est capable de produire des phĂ©nols volatils (Ă©thyl-4-phĂ©nol, Ă©thyl-4-gaĂŻacol et Ă©thyl-4-catĂ©chol) (Oelofse et al., 2008). Ces molĂ©cules volatiles odorantes amĂšnent un caractĂšre phĂ©nolĂ© et animal au vin connu sous le nom de « caractĂšre Brett ». D’autres molĂ©cules (2-acĂ©tyltĂ©trahydropyridine et 2-Ă©thyltĂ©trahydropyridine) produites par B. bruxellensis sont Ă©galement responsables d’une dĂ©viation organoleptique appelĂ©e communĂ©ment « goĂ»t de souris ». La dĂ©tection et la quantification de cette levure sont donc nĂ©cessaires afin d’éviter l’altĂ©ration du vin. L’isolement de cette levure sur milieu gĂ©losĂ© est utilisĂ© en routine par les laboratoires spĂ©cialisĂ©s en Ɠnologie. Cette mĂ©thode nĂ©cessite un temps d’incubation trĂšs long (> 7 jours) mais ne permet pas la quantification des cellules viables non cultivables. Des cultures en milieu liquide contenant les prĂ©curseurs des phĂ©nols volatils sont parfois effectuĂ©es afin de dĂ©terminer si les vins testĂ©s contiennent ou non B. bruxellensis. L’apparition de l’odeur « Brett » plus ou moins rapide permet d’avoir une estimation sur la quantitĂ© de cellules prĂ©sentes. La cytomĂ©trie en flux est Ă©galement un outil utilisĂ© par les laboratoires afin de quantifier de maniĂšre spĂ©cifique B. bruxellensis : sonde spĂ©cifique fluorescente (Serpaggi et al., 2010), anticorps. En France comme Ă  l’étranger, la principale mĂ©thode molĂ©culaire utilisĂ©e est la PCR quantitative (qPCR). De nombreuses Ă©tudes portant sur cette derniĂšre ont permis le dĂ©veloppement de kits commerciaux afin de dĂ©nombrer spĂ©cifiquement B. bruxellensis dans le vin. Cependant, aucune Ă©tude n’a Ă©tĂ© effectuĂ©e sur la fiabilitĂ©, la rĂ©pĂ©tabilitĂ© et la reproductibilitĂ© de ces kits. C’est pourquoi, dans cette Ă©tude, nous avons comparĂ© les rĂ©sultats obtenus en utilisant trois kits qPCR commerciaux permettant d’extraire l’ADN des cellules et de quantifier B. bruxellensis en vin rouge. Les analyses ont Ă©tĂ© effectuĂ©es par trois laboratoires sĂ©lectionnĂ©s, spĂ©cialisĂ©s en analyses Ɠnologiques et sur trois vins rouges Ă©laborĂ©s dans 3 rĂ©gions diffĂ©rentes

    Quantification des Brettanomyces par qPCR

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    International audienceBrettanomyces bruxellensis est une levure d’altĂ©ration du vin avec de faibles besoins nutritionnels, rĂ©sistante Ă  l’éthanol et aux faibles pH, lui permettant une implantation en vin durant ou aprĂšs la fermentation alcoolique (Conterno et al., 2006). B. bruxellensis est capable de produire des phĂ©nols volatils (Ă©thyl-4-phĂ©nol, Ă©thyl-4-gaĂŻacol et Ă©thyl-4-catĂ©chol) (Oelofse et al., 2008). Ces molĂ©cules volatiles odorantes amĂšnent un caractĂšre phĂ©nolĂ© et animal au vin connu sous le nom de « caractĂšre Brett ». D’autres molĂ©cules (2-acĂ©tyltĂ©trahydropyridine et 2-Ă©thyltĂ©trahydropyridine) produites par B. bruxellensis sont Ă©galement responsables d’une dĂ©viation organoleptique appelĂ©e communĂ©ment « goĂ»t de souris ».La dĂ©tection et la quantification de cette levure sont donc nĂ©cessaires afin d’éviter l’altĂ©ration du vin. L’isolement de cette levure sur milieu gĂ©losĂ© est utilisĂ© en routine par les laboratoires spĂ©cialisĂ©s en Ɠnologie. Cette mĂ©thode nĂ©cessite un temps d’incubation trĂšs long (> 7 jours) mais ne permet pas la quantification des cellules viables non cultivables. Des cultures en milieu liquide contenant les prĂ©curseurs des phĂ©nols volatils sont parfois effectuĂ©es afin de dĂ©terminer si les vins testĂ©s contiennent ou non B. bruxellensis. L’apparition de l’odeur « Brett » plus ou moins rapide permet d’avoir une estimation sur la quantitĂ© de cellules prĂ©sentes. La cytomĂ©trie en flux est Ă©galement un outil utilisĂ© par les laboratoires afin de quantifier de maniĂšre spĂ©cifique B. bruxellensis : sonde spĂ©cifique fluorescente (Serpaggi et al., 2010), anticorps. En France comme Ă  l’étranger, la principale mĂ©thode molĂ©culaire utilisĂ©e est la PCR quantitative (qPCR). De nombreuses Ă©tudes portant sur cette derniĂšre ont permis le dĂ©veloppement de kits commerciaux afin de dĂ©nombrer spĂ©cifiquement B. bruxellensis dans le vin. Cependant, aucune Ă©tude n’a Ă©tĂ© effectuĂ©e sur la fiabilitĂ©, la rĂ©pĂ©tabilitĂ© et la reproductibilitĂ© de ces kits.C’est pourquoi, dans cette Ă©tude, nous avons comparĂ© les rĂ©sultats obtenus en utilisant trois kits qPCR commerciaux permettant d’extraire l’ADN des cellules et de quantifier B. bruxellensis en vin rouge. Les analyses ont Ă©tĂ© effectuĂ©es par trois laboratoires sĂ©lectionnĂ©s, spĂ©cialisĂ©s en analyses Ɠnologiques et sur trois vins rouges Ă©laborĂ©s dans 3 rĂ©gions diffĂ©rentes

    Diversité des Brettanomyces et de leur résistance au SO2. Les nouvelles avancées vers une meilleure gestion du SO2 en vinification.

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    Article de revue professionnelleDes recherches ont Ă©tĂ© menĂ©es par le Groupe National « Lutte contre Brettanomyces » et plus particuliĂšrement sur la relation SO2 et Brettanomyces bruxellensis afin d’approfondir les connaissances sur le comportement de la levure et d’apporter des donnĂ©es essentielles Ă  une bonne gestion du risque. Une grande diversitĂ© de la levure Brettanomyces a Ă©tĂ© mise en Ă©vidence (identification de diffĂ©rents groupes gĂ©nĂ©tiques) ainsi que des comportements diffĂ©rents vis-Ă -vis du SO2 : sensibles, tolĂ©rants ou rĂ©sistant. GrĂące Ă  la mise au point d’un outil prĂ©dictif (TYP \ Brett), les professionnels pourront connaĂźtre le groupe gĂ©nĂ©tique pour mieux intervenir. Ces travaux ont Ă©galement mis en Ă©vidence la nĂ©cessitĂ© d’adapter la dose de SO2 actif en fonction du niveau de population de B. bruxellensis, mais Ă©galement l’importance d’avoir des mĂ©thodes de dĂ©tection estimant les niveaux de contamination rĂ©els de population viable en s’affranchissant des faux positifs (levures mortes ou viables non-cultivables). Un outil d’aide Ă  la dĂ©cision, le modĂšle Brett permettra de prĂ©dire le risque de dĂ©veloppement de B. bruxellensis et la production de phĂ©nols en fonction des paramĂštres Ɠnologiques du vin notamment la dose de SO2 actif. Il sera d’une grande utilitĂ© aux vignerons dans la lutte du risque Brettanomyces

    New molecular evidence of wine yeast-bacteria interaction unraveled by non-targeted exometabolomic profiling

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    International audienceIntroduction Bacterial malolactic fermentation (MLF) has a considerable impact on wine quality. The yeast strain used for primary fermentation can systematically stimulate (MLF+ phenotype) or inhibit (MLF-) bacteria and the MLF process as a function of numerous winemaking practices, but the underlying molecular evidence still remains a mystery.Objectives The goal of the study was to elucidate such evidence by the direct comparison of extracellular metabolic profiles of MLF? and MLF-phenotypes.Methods We have applied a non-targeted metabolomic approach combining ultrahigh-resolution FT-ICR-MS analysis, powerful statistical tools and a comprehensive wine metabolite database.Results We discovered around 2500 unknown masses and 800 putative biomarkers involved in phenotypic distinction. For the putative biomarkers, we also developed a biomarker identification workflow and elucidated the exact structure (by UPLC-Q-ToF-MS2) and/or exact physiological impact (by in vitro tests) of several novel biomarkers, such as D-gluconic acid, citric acid, trehalose and tripeptide Pro-Phe-Val. In addition to valid biomarkers, molecular evidence was reflected by unprecedented chemical diversity (around 3000 discriminant masses) that characterized both the yeast phenotypes. While distinct chemical families such as phenolic compounds, carbohydrates, amino acids and peptides characterize the extracellular metabolic profiles of the MLF? phenotype, the MLF-phenotype is associated with sulphur-containing peptides.Conclusion The non-targeted approach used in this study played an important role in finding new and unexpected molecular evidence
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