Taking advantage of the potential of mesenchymal stromal cells in liver regeneration: Cells and extracellular vesicles as therapeutic strategies

Cell-based therapies for acute and chronic liver diseases are under continuous progress. Mesenchymal stem/stromal cells (MSCs) are multipotent cells able to migrate selectively to damaged tissue and contribute to its healing and regeneration. The MSC pro-regenerative effect occurs due to their immunomodulatory capacity and their ability to produce factors that promote cell protection and survival. Likewise, it has been observed that part of their paracrine effect is mediated by MSC-derived extracellular vesicles (EVs). EVs contain proteins, lipids and nucleic acids (DNA, mRNA, miRNA, lncRNA) from the cell of origin, allowing for intercellular communication. Recently, different studies have demonstrated that MSC-derived EVs could reproduce, at least in part, the biological effects obtained by MSC-based therapies. Moreover, due to EVs’ stability for long periods of time and easy isolation methods they have become a therapeutic option to MSCs treatments. This review summarizes the latest results achieved in clinical trials using MSCs as cell therapy for liver regeneration, the role of EVs in liver physiopathology and the potential of MSC-derived EVs as intercellular mediators and therapeutic tools in liver diseases.Fil: Fiore, Esteban Juan. Universidad Austral. Facultad de Ciencias Biomédicas. Instituto de Investigaciones en Medicina Traslacional. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Parque Centenario. Instituto de Investigaciones en Medicina Traslacional; ArgentinaFil: Domínguez, Luciana María. Universidad Austral. Facultad de Ciencias Biomédicas. Instituto de Investigaciones en Medicina Traslacional. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Parque Centenario. Instituto de Investigaciones en Medicina Traslacional; ArgentinaFil: Bayo Fina, Juan Miguel. Universidad Austral. Facultad de Ciencias Biomédicas. Instituto de Investigaciones en Medicina Traslacional. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Parque Centenario. Instituto de Investigaciones en Medicina Traslacional; ArgentinaFil: García, Mariana Gabriela. Universidad Austral. Facultad de Ciencias Biomédicas. Instituto de Investigaciones en Medicina Traslacional. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Parque Centenario. Instituto de Investigaciones en Medicina Traslacional; ArgentinaFil: Mazzolini Rizzo, Guillermo Daniel. Universidad Austral. Facultad de Ciencias Biomédicas. Instituto de Investigaciones en Medicina Traslacional. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Parque Centenario. Instituto de Investigaciones en Medicina Traslacional; Argentin

The ARF tumor suppressor targets PPM1G/PP2Cγ to counteract NF-κB transcription tuning cell survival and the inflammatory response

Inducible transcriptional programs mediate the regulation of key biological processes and organismal functions. Despite their complexity, cells have evolved mechanisms to precisely control gene programs in response to environmental cues to regulate cell fate and maintain normal homeostasis. Upon stimulation with proinflammatory cytokines such as tumor necrosis factor-α (TNF), the master transcriptional regulator nuclear factor (NF)-κB utilizes the PPM1G/PP2Cγ phosphatase as a coactivator to normally induce inflammatory and cell survival programs. However, how PPM1G activity is precisely regulated to control NF-κB transcription magnitude and kinetics remains unknown. Here, we describe a mechanism by which the ARF tumor suppressor binds PPM1G to negatively regulate its coactivator function in the NF-κB circuit thereby promoting insult resolution. ARF becomes stabilized upon binding to PPM1G and forms a ternary protein complex with PPM1G and NF-κB at target gene promoters in a stimulidependent manner to provide tunable control of the NF-κB transcriptional program. Consistently, loss of ARF in colon epithelial cells leads to up-regulation of NF-κB antiapoptotic genes upon TNF stimulation and renders cells partially resistant to TNFinduced apoptosis in the presence of agents blocking the antiapoptotic program. Notably, patient tumor data analysis validates these findings by revealing that loss of ARF strongly correlates with sustained expression of inflammatory and cell survival programs. Collectively, we propose that PPM1G emerges as a therapeutic target in a variety of cancers arising from ARF epigenetic silencing, to loss of ARF function, as well as tumors bearing oncogenic NF-κB activation.Fil: Hyder, Usman. University of Texas; Estados UnidosFil: McCann, Jennifer L.. University of Texas; Estados UnidosFil: Wang, Jinli. University of Texas; Estados UnidosFil: Fung, Victor. University of Texas; Estados UnidosFil: Bayo Fina, Juan Miguel. Universidad Austral. Facultad de Ciencias Biomédicas. Instituto de Investigaciones en Medicina Traslacional. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Parque Centenario. Instituto de Investigaciones en Medicina Traslacional; ArgentinaFil: D'Orso, Iván. University of Texas; Estados Unido

Single low-dose cyclophosphamide combined with interleukin-12 gene therapy is superior to a metronomic schedule in inducing immunity against colorectal carcinoma in mice

The use of conventional cytotoxic agents at metronomic schedules, alone or in combination with targeted agents or immunotherapy, is being explored as a promising anticancer strategy. We previously reported a potent antitumor effect of a single low-dose cyclophosphamide and interleukin-12 (IL-12) gene therapy against advanced gastrointestinal carcinoma, in mice. Here, we assessed whether the delivery of IL-12 by gene therapy together with metronomic cyclophosphamide exerts antitumor effects in a murine model of colorectal carcinoma. This combination therapy was able, at least in part, to reverse immunosuppression, by decreasing the number of regulatory T cells (Tregs) as well as of splenic myeloid-derived suppressor cells (MDSC s). However, metronomic cyclophosphamide plus IL-12 gene therapy failed to increase the number of tumor-infiltrating T lymphocytes and, more importantly, to induce a specific antitumor immune response. With respect to this, cyclophosphamide at a single low dose displayed a superior anticancer profile than the same drug given at a metronomic schedule. Our results may have important implications in the design of new therapeutic strategies against colorectal carcinoma using cyclophosphamide in combination with immunotherapy.Fil: Malvicini, Mariana. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas; Argentina. Universidad Austral; ArgentinaFil: Alaniz, Laura Daniela. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas; Argentina. Universidad Austral; ArgentinaFil: Bayo Fina, Juan Miguel. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas; Argentina. Universidad Austral; ArgentinaFil: García, Mariana Gabriela. Universidad Austral; Argentina. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas; ArgentinaFil: Piccioni, Flavia Valeria. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas; Argentina. Universidad Austral; ArgentinaFil: Fiore, Esteban Juan. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas; Argentina. Universidad Austral; ArgentinaFil: Atorrasagasti, María Catalina. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas; Argentina. Universidad Austral; ArgentinaFil: Aquino, Jorge Benjamin. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas; Argentina. Universidad Austral; ArgentinaFil: Matar, Pablo. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas; Argentina. Universidad Nacional de Rosario. Facultad de Ciencias Medicas. Instituto de Genetica Experimental; ArgentinaFil: Mazzolini Rizzo, Guillermo Daniel. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas; Argentina. Universidad Austral; Argentin

SPARC is required for the maintenance of glucose homeostasis and insulin secretion in mice

Obesity, metabolic syndrome, and type 2 diabetes, three strongly interrelated diseases, are associated to increased morbidity and mortality worldwide. The pathogenesis of obesity-associated disorders is still under study. Secreted protein acidic and rich in cysteine (SPARC) is a matricellular glycoprotein expressed in many cell types including adipocytes, parenchymal, and non-parenchymal hepatic cells and pancreatic cells. Studies have demonstrated that SPARC inhibits adipogenesis and promotes insulin resistance; in addition, circulating SPARC levels were positively correlated with body mass index in obese individuals. Therefore, SPARC is being proposed as a key factor in the pathogenesis of obesity-associated disorders. The aim of this study is to elucidate the role of SPARC in glucose homeostasis. We show here that SPARC null (SPARC −/− ) mice displayed an abnormal insulin-regulated glucose metabolism. SPARC −/− mice presented an increased adipose tissue deposition and an impaired glucose homeostasis as animals aged. In addition, the absence of SPARC worsens high-fat diet-induced diabetes in mice. Interestingly, although SPARC −/− mice on high-fat diet were sensitive to insulin they showed an impaired insulin secretion capacity. Of note, the expression of glucose transporter 2 in islets of SPARC −/− mice was dramatically reduced. The present study provides the first evidence that deleted SPARC expression causes diabetes in mice. Thus, SPARC deficient mice constitute a valuable model for studies concerning obesity and its related metabolic complications, including diabetes.Fil: Atorrasagasti, María Catalina. Universidad Austral. Facultad de Ciencias Biomédicas. Instituto de Investigaciones en Medicina Traslacional. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Parque Centenario. Instituto de Investigaciones en Medicina Traslacional; ArgentinaFil: Onorato, Agostina Mariana. Universidad Austral. Facultad de Ciencias Biomédicas. Instituto de Investigaciones en Medicina Traslacional. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Parque Centenario. Instituto de Investigaciones en Medicina Traslacional; ArgentinaFil: Gimeno, Maria Laura. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Parque Centenario. Instituto de Investigación en Biomedicina de Buenos Aires - Instituto Partner de la Sociedad Max Planck; ArgentinaFil: Andreone, Luz. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Parque Centenario. Instituto de Investigación en Biomedicina de Buenos Aires - Instituto Partner de la Sociedad Max Planck; ArgentinaFil: García, Mariana Gabriela. Universidad Austral. Facultad de Ciencias Biomédicas. Instituto de Investigaciones en Medicina Traslacional. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Parque Centenario. Instituto de Investigaciones en Medicina Traslacional; ArgentinaFil: Malvicini, Mariana. Universidad Austral. Facultad de Ciencias Biomédicas. Instituto de Investigaciones en Medicina Traslacional. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Parque Centenario. Instituto de Investigaciones en Medicina Traslacional; ArgentinaFil: Fiore, Esteban Juan. Universidad Austral. Facultad de Ciencias Biomédicas. Instituto de Investigaciones en Medicina Traslacional. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Parque Centenario. Instituto de Investigaciones en Medicina Traslacional; ArgentinaFil: Bayo Fina, Juan Miguel. Universidad Austral. Facultad de Ciencias Biomédicas. Instituto de Investigaciones en Medicina Traslacional. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Parque Centenario. Instituto de Investigaciones en Medicina Traslacional; ArgentinaFil: Perone, Marcelo Javier. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Parque Centenario. Instituto de Investigación en Biomedicina de Buenos Aires - Instituto Partner de la Sociedad Max Planck; ArgentinaFil: Mazzolini Rizzo, Guillermo Daniel. Universidad Austral. Facultad de Ciencias Biomédicas. Instituto de Investigaciones en Medicina Traslacional. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Parque Centenario. Instituto de Investigaciones en Medicina Traslacional; Argentin

La modulación de la expresión de ácido hialurónico reduce la resistencia a la quimioterapia de células iniciadoras de tumor en cáncer de pulmón experimental

La mayoría de los pacientes con cáncer de pulmón de células no pequeñas (NSCLC) progresan o recaen luego del tratamiento con taxanos-platinos. En el microambiente tumoral (TME) las cancer stem cells (CSCs), que expresan CD133, están involucradas en la recurrencia. El ácido hialurónico (HA) del TME regula, en parte, la función de las CSCs. Analizamos HA en el TME y si su modulación con la cumarina 4-Methylumbelliferona (4Mu) modifica las propiedades de las CSCs. Utilizamos líneas murinas (Lewis Lung Carcinoma; LLC) y humanas (A549) para evaluar viabilidad luego de la exposición al paclitaxel, pemetrexed o cisplatino, o combinados con 4Mu. Analizamos sintasas HAS y hialuronidasas HYAL y factores de transcripción de CSCs a partir de datos de pacientes (TCGA) y por qPCR. Aislamos células CD133+ y estudiamos la expresión de HA y la capacidad clonogénica y tumorigénica. Observamos que los tumores de LLC producen HA, generado en parte por estas células. El 8.53 ± 0.35% de LLC son CD133+, y expresan más HA y CD44 en comparación a las CD133- (p<0,05). El análisis de TCGA mostró que HAS3 se correlaciona positivamente con los niveles de KLF4 y SOX2, pero HYAL2 se correlaciona inversamente con la expresión de SOX2. La viabilidad de las CD133+ tratadas con 4Mu+quimioterapia (Qx) y la expresión génica de HAS, CD44, CD47 y SOX2 disminuyeron significativamente (p<0.05). A partir de estos hallazgos, sugerimos que la inhibición de HA podría aumentar la susceptibilidad de las CSCs a la Qx, mejorando su eficacia y/o previniendo la recurrencia del tumor.Many patients with non-small cell lung cancer (NSCLC) will progress or relapse after treatment with platinum-taxanes. Tumors are composed by a bulk of cells including cancer stem cells (CSCs), which express CD133, and are involved in recurrence. Hyaluronic acid (HA) a glycosaminoglycan of tumor microenvironment (TME) regulates, in part, the function of the CSCs. The aim of this work was to analyze HA in TME and if its modulation using coumarin 4-Methylumbelliferone (4Mu) modifies the properties of the CSCs. We used murine (Lewis Lung Carcinoma; LLC) and human (A549) lines to evaluate cell viability after exposure to paclitaxel, pemetrexed or cisplatin, alone or combined with 4Mu. Expression of HA synthases (HAS), hyaluronidase HYAL and CSC transcription factors were analyzed from patient data (TCGA) and by qPCR. We isolated CD133+ cells and studied the expression of HA before and after the treatments. We evaluated clonogenic and tumorigenic capacity. We observed that LLC tumors produce HA, generated in part by these cells. The 8.53 ± 0.35% of LLC are CD133+, and express more HA and CD44 compared to CD133- (p<0.05). The TCGA analysis showed that HAS3 is positively correlated with the levels of KLF4 and SOX2, while HYAL2 is inversely correlated with the expression of SOX2. The viability of CD133+ treated with 4Mu+chemotherapy (Qx) and the gene expression of HAS, CD44, CD47 and SOX2 decreased significantly (p<0.05). Based on this evidence, we suggest that inhibition of HA could increase the susceptibility of CSCs to Qx, improving their effectiveness and/or preventing tumor recurrence.Fil: Gayet Preiss, Fernando. Universidad Austral. Hospital Universitario Austral; ArgentinaFil: Piccioni, Flavia Valeria. Universidad Austral. Facultad de Ciencias Biomédicas. Instituto de Investigaciones en Medicina Traslacional. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Parque Centenario. Instituto de Investigaciones en Medicina Traslacional; ArgentinaFil: Fusco, Mariel Alejandra. Universidad Austral. Facultad de Ciencias Biomédicas. Instituto de Investigaciones en Medicina Traslacional. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Parque Centenario. Instituto de Investigaciones en Medicina Traslacional; ArgentinaFil: Díaz Gutierrez, Marco Aurelio. Universidad Austral. Facultad de Ciencias Biomédicas. Instituto de Investigaciones en Medicina Traslacional. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Parque Centenario. Instituto de Investigaciones en Medicina Traslacional; ArgentinaFil: Ribatto, Pamela. Universidad Austral. Facultad de Ciencias Biomédicas. Instituto de Investigaciones en Medicina Traslacional. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Parque Centenario. Instituto de Investigaciones en Medicina Traslacional; ArgentinaFil: Bayo Fina, Juan Miguel. Universidad Austral. Facultad de Ciencias Biomédicas. Instituto de Investigaciones en Medicina Traslacional. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Parque Centenario. Instituto de Investigaciones en Medicina Traslacional; ArgentinaFil: Rizzo, Manglio Miguel. Universidad Austral. Facultad de Ciencias Biomédicas. Instituto de Investigaciones en Medicina Traslacional. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Parque Centenario. Instituto de Investigaciones en Medicina Traslacional; Argentina. Universidad Austral. Hospital Universitario Austral; ArgentinaFil: Malvicini, Mariana. Universidad Austral. Facultad de Ciencias Biomédicas. Instituto de Investigaciones en Medicina Traslacional. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Parque Centenario. Instituto de Investigaciones en Medicina Traslacional; Argentin

Development of a New and Improved Guanidine-based Rac1 Inhibitor with in Vivo Activity against Non-Small Cell Lung Cancer

Rac1 (Ras-related C3 botulinum toxin substrate 1), is a member of the family of Rho GTPases involved in the dynamic control of cytoskeleton reorganization and other fundamental cellular functions including growth, motility and survival. Aberrant activity of Rac1 and its regulators is common in human cancer. In particular, deregulated expression/activity of Rac Guanine nucleotide Exchange Factors (GEFs), responsible for Rac activation, has been largely associated to a metastatic phenotype and drug resistance. Thus, the development of novel Rac1-GEF interaction inhibitors is a promising strategy for finding new preclinical candidates. In this work, we have studied structure-activity relationships within a new family of N,N’-disubstituted guanidine as Rac1-GEF protein-protein interaction inhibitors, starting from our first developed member 1A-116. We found that new analogue 1D-142, bearing a pyridine ring instead of benzene ring, presents improved antiproliferative activity in human cancer cell lines and higher potency as Rac1-GEF interaction inhibitor in vitro. In addition, 1D-142 reduces TNFα-induced NF-κB nuclear translocation, a mechanisms mediated by Rac1 during cell proliferation and migration in NSCLC. Notably, 1D-142 was used to show for the first time the application of a Rac1 inhibitor in a lung cancer animal model.Fil: Ciarlantini, Matias Sebastián. Instituto Nacional de Tecnología Industrial; ArgentinaFil: Barquero, Andrea Alejandra. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Ciudad Universitaria. Instituto de Química Biológica de la Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Instituto de Química Biológica de la Facultad de Ciencias Exactas y Naturales; Argentina. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Departamento de Química Biológica; ArgentinaFil: Wetzler, Diana Elena. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Ciudad Universitaria. Instituto de Química Biológica de la Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Instituto de Química Biológica de la Facultad de Ciencias Exactas y Naturales; Argentina. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Departamento de Química Biológica; ArgentinaFil: Bayo Fina, Juan Miguel. Universidad Austral. Facultad de Ciencias Biomédicas; Argentina. Universidad Austral. Facultad de Ciencias Biomédicas. Instituto de Investigaciones en Medicina Traslacional. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Parque Centenario. Instituto de Investigaciones en Medicina Traslacional; ArgentinaFil: Dodes Traian, Martín Miguel. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Ciudad Universitaria. Instituto de Química Biológica de la Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Instituto de Química Biológica de la Facultad de Ciencias Exactas y Naturales; Argentina. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Departamento de Química Biológica; ArgentinaFil: Bucci, Hernán Andrés. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Ciudad Universitaria. Instituto de Química Biológica de la Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Instituto de Química Biológica de la Facultad de Ciencias Exactas y Naturales; Argentina. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Departamento de Química Biológica; ArgentinaFil: Fiore, Esteban Juan. Universidad Austral. Facultad de Ciencias Biomédicas. Instituto de Investigaciones en Medicina Traslacional. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Parque Centenario. Instituto de Investigaciones en Medicina Traslacional; Argentina. Universidad Austral. Facultad de Ciencias Biomédicas; ArgentinaFil: Gandolfi Donadío, Lucía. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Ciudad Universitaria. Instituto de Química Biológica de la Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Instituto de Química Biológica de la Facultad de Ciencias Exactas y Naturales; Argentina. Instituto Nacional de Tecnología Industrial; ArgentinaFil: Defelipe, Lucas Alfredo. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Ciudad Universitaria. Instituto de Química Biológica de la Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Instituto de Química Biológica de la Facultad de Ciencias Exactas y Naturales; Argentina. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Departamento de Química Biológica; ArgentinaFil: Turjanski, Adrian. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Ciudad Universitaria. Instituto de Química Biológica de la Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Instituto de Química Biológica de la Facultad de Ciencias Exactas y Naturales; Argentina. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Departamento de Química Biológica; ArgentinaFil: Ramirez, Javier Alberto. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Ciudad Universitaria. Unidad de Microanálisis y Métodos Físicos en Química Orgánica. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Unidad de Microanálisis y Métodos Físicos en Química Orgánica; Argentina. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Departamento de Química Orgánica; ArgentinaFil: Mazzolini Rizzo, Guillermo Daniel. Universidad Austral. Facultad de Ciencias Biomédicas. Instituto de Investigaciones en Medicina Traslacional. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Parque Centenario. Instituto de Investigaciones en Medicina Traslacional; Argentina. Universidad Austral. Hospital Universitario Austral; ArgentinaFil: Comin, Maria Julieta. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Ciudad Universitaria. Instituto de Química Biológica de la Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Instituto de Química Biológica de la Facultad de Ciencias Exactas y Naturales; Argentina. Instituto Nacional de Tecnología Industrial; Argentin

SPARC inhibition accelerates NAFLD-associated hepatocellular carcinoma development by dysregulating hepatic lipid metabolism

Background and aims: Non-alcoholic fatty liver (NAFLD) and its more serious form non-alcoholic steatohepatitis increase risk of hepatocellular carcinoma (HCC). Lipid metabolic alterations and its role in HCC development remain unclear. SPARC (Secreted Protein, Acidic and Rich in Cysteine) is involved in lipid metabolism, NAFLD and diabetes, but the effects on hepatic lipid metabolism and HCC development is unknown. The aim of this study was to evaluate the role of SPARC in HCC development in the context of NAFLD. Methods: Primary hepatocyte cultures from knockout (SPARC−/−) or wild-type (SPARC+/+) mice, and HepG2 cells were used to assess the effects of free fatty acids on lipid accumulation, expression of lipogenic genes and de novo triglyceride (TG) synthesis. A NAFLD-HCC model was stabilized on SPARC−/− or SPARC+/+ mice. Correlations among SPARC, lipid metabolism-related gene expression patterns and clinical prognosis were studied using HCC gene expression dataset. Results: SPARC−/− mice increases hepatic lipid deposits over time. Hepatocytes from SPARC−/− mice or inhibition of SPARC by an antisense adenovirus in HepG2 cells resulted in increased TG deposit, expression of lipid-related genes and nuclear translocation of SREBP1c. Human HCC database analysis revealed that SPARC negatively correlated with genes involved in lipid metabolism, and with poor survival. In NAFLD-HCC murine model, the absence of SPARC accelerates HCC development. RNA-seq study revealed that pathways related to lipid metabolism, cellular detoxification and proliferation were upregulated in SPARC−/− tumour-bearing mice. Conclusions: The absence of SPARC is associated with an altered hepatic lipid metabolism, and an accelerated NAFLD-related HCC development.Fil: Onorato, Agostina Mariana. Universidad Austral. Facultad de Ciencias Biomédicas. Instituto de Investigaciones en Medicina Traslacional. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Parque Centenario. Instituto de Investigaciones en Medicina Traslacional; ArgentinaFil: Fiore, Esteban Juan. Universidad Austral. Facultad de Ciencias Biomédicas. Instituto de Investigaciones en Medicina Traslacional. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Parque Centenario. Instituto de Investigaciones en Medicina Traslacional; ArgentinaFil: Bayo Fina, Juan Miguel. Universidad Austral. Facultad de Ciencias Biomédicas. Instituto de Investigaciones en Medicina Traslacional. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Parque Centenario. Instituto de Investigaciones en Medicina Traslacional; ArgentinaFil: Casali, Cecilia Irene. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Houssay. Instituto de Química y Físico-Química Biológicas "Prof. Alejandro C. Paladini". Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Instituto de Química y Físico-Química Biológicas; ArgentinaFil: Fernandez, Maria del Carmen. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Houssay. Instituto de Química y Físico-Química Biológicas "Prof. Alejandro C. Paladini". Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Instituto de Química y Físico-Química Biológicas; ArgentinaFil: Rodriguez, Marcelo Maximiliano. Universidad Austral. Facultad de Ciencias Biomédicas. Instituto de Investigaciones en Medicina Traslacional. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Parque Centenario. Instituto de Investigaciones en Medicina Traslacional; ArgentinaFil: Domínguez, Luciana María. Universidad Austral. Facultad de Ciencias Biomédicas. Instituto de Investigaciones en Medicina Traslacional. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Parque Centenario. Instituto de Investigaciones en Medicina Traslacional; ArgentinaFil: Argemi, Josepmaría. Universidad de Navarra; EspañaFil: Hidalgo, Florencia. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas; ArgentinaFil: Favre, Cristian. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas; ArgentinaFil: García, Mariana. Universidad Austral. Facultad de Ciencias Biomédicas. Instituto de Investigaciones en Medicina Traslacional. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Parque Centenario. Instituto de Investigaciones en Medicina Traslacional; ArgentinaFil: Atorrasagasti, María Catalina. Universidad Austral. Facultad de Ciencias Biomédicas. Instituto de Investigaciones en Medicina Traslacional. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Parque Centenario. Instituto de Investigaciones en Medicina Traslacional; ArgentinaFil: Mazzolini Rizzo, Guillermo Daniel. Universidad Austral. Facultad de Ciencias Biomédicas. Instituto de Investigaciones en Medicina Traslacional. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Parque Centenario. Instituto de Investigaciones en Medicina Traslacional; Argentin

Acceleration of TAA-Induced liver fibrosis by stress exposure is associated with upregulation of nerve growth factor and glycopattern deviations

Liver fibrosis results from many chronic injuries and may often progress to cirrhosis andhepatocellular carcinoma (HCC). In fact, up to 90% of HCC arise in a cirrhotic liver. Conversely,stress is implicated in liver damage, worsening disease outcome. Hence, stress could play a role indisrupting liver homeostasis, a concept that has not been fully explored. Here, in a murine modelof TAA-induced liver fibrosis we identified nerve growth factor (NGF) to be a crucial regulatorof the stress-induced fibrogenesis signaling pathway as it activates its receptor p75 neurotrophinreceptor (p75NTR), increasing liver damage. Additionally, blocking the NGF decreased liver fibrosiswhereas treatment with recombinant NGF accelerated the fibrotic process to a similar extent thanstress challenge. We further show that the fibrogenesis induced by stress is characterized by specificchanges in the hepatoglycocode (increased β1,6GlcNAc-branched complex N-glycans and decreasedcore 1 O-glycans expression) which are also observed in patients with advanced fibrosis compared topatients with a low level of fibrosis. Our study facilitates an understanding of stress-induced liverinjury and identify NGF signaling pathway in early stages of the disease, which contributes to theestablished fibrogenesis.Fil: Atorrasagasti, María Catalina. Universidad Austral. Facultad de Ciencias Biomédicas. Instituto de Investigaciones en Medicina Traslacional. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Parque Centenario. Instituto de Investigaciones en Medicina Traslacional; ArgentinaFil: Piccioni, Flavia Valeria. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Instituto de Biología y Medicina Experimental. Fundación de Instituto de Biología y Medicina Experimental. Instituto de Biología y Medicina Experimental; ArgentinaFil: Borowski, Sophia. Universitat Hamburg; Alemania. Max Delbruk Center For Molecular Medicine In The Helmholtz Association (mdc); Alemania. Charité Universitätsmedizin Berlin; AlemaniaFil: Tirado González, Irene. Charité Universitätsmedizin Berlin; Alemania. Max Delbruk Center For Molecular Medicine In The Helmholtz Association (mdc); Alemania. Institute for Tumor Biology and Experimental Therapy; AlemaniaFil: Freitag, Nancy. Universitat Hamburg; Alemania. Max Delbruk Center For Molecular Medicine In The Helmholtz Association (mdc); Alemania. Charité Universitätsmedizin Berlin; AlemaniaFil: Cantero, María José. Universidad Austral. Facultad de Ciencias Biomédicas. Instituto de Investigaciones en Medicina Traslacional. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Parque Centenario. Instituto de Investigaciones en Medicina Traslacional; ArgentinaFil: Bayo Fina, Juan Miguel. Universidad Austral. Facultad de Ciencias Biomédicas. Instituto de Investigaciones en Medicina Traslacional. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Parque Centenario. Instituto de Investigaciones en Medicina Traslacional; ArgentinaFil: Mazzolini Rizzo, Guillermo Daniel. Universidad Austral. Facultad de Ciencias Biomédicas. Instituto de Investigaciones en Medicina Traslacional. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Parque Centenario. Instituto de Investigaciones en Medicina Traslacional; ArgentinaFil: Alaniz, Laura Daniela. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Centro de Investigaciones y Transferencia del Noroeste de la Provincia de Buenos Aires. Universidad Nacional del Noroeste de la Provincia de Buenos Aires. Centro de Investigaciones y Transferencia del Noroeste de la Provincia de Buenos Aires; ArgentinaFil: Blois, Sandra M.. Universitat Hamburg; AlemaniaFil: García, Mariana Gabriela. Universidad Austral. Facultad de Ciencias Biomédicas. Instituto de Investigaciones en Medicina Traslacional. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Parque Centenario. Instituto de Investigaciones en Medicina Traslacional; Argentin

IL-8, GRO and MCP-1 produced by hepatocellular carcinoma microenvironment determine the migratory capacity of human bone marrow-derived mesenchymal stromal cells without affecting tumor aggressiveness

New therapies are needed for advanced hepatocellular carcinoma (HCC) and the use of mesenchymal stromal cells (MSCs) carrying therapeutic genes is a promising strategy. HCC produce cytokines recruiting MSCs to the tumor milieu and modifying its biological properties. Our aim was to study changes generated on human MSCs exposed to conditioned media (CM) derived from human HCC fresh samples and xenografts. All CM shared similar cytokines expression pattern including CXCL1-2-3/GRO, CCL2/MCP- 1 and CXCL8/IL-8 being the latter with the highest concentration. Neutralizing and knockdown experiments of CCL2/MCP-1, CXCL8/IL-8, CXCR1 and CXCR2 reduced in vitro MSC migration of ≥20%. Simultaneous CXCR1 and CXCR2 neutralization resulted in 50% of MSC migration inhibition. MSC stimulated with CM (sMSC) from HuH7 or HC-PT-5 showed a 2-fold increase of migration towards the CM compared with unstimulated MSC (usMSC). Gene expression profle of sMSC showed ~500 genes differentially expressed compared with usMSC, being 46 genes related with cell migration and invasion. sMSC increased fbroblasts and endothelial cells chemotaxis. Finally, sMSC with HuH7 CM and then inoculated in HCC tumor bearing-mice did not modify tumor growth. In this work we characterized factors produced by HCC responsible for the changes in MSC chemotactic capacity with would have an impact on therapeutic use of MSCs for human HCCFil: Bayo Fina, Juan Miguel. Universidad Austral. Facultad de Ciencias Biomédicas. Instituto de Investigaciones en Medicina Traslacional. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Parque Centenario. Instituto de Investigaciones en Medicina Traslacional; ArgentinaFil: Real, Alejandrina. Universidad Austral. Facultad de Ciencias Biomédicas. Instituto de Investigaciones en Medicina Traslacional. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Parque Centenario. Instituto de Investigaciones en Medicina Traslacional; ArgentinaFil: Fiore, Esteban Juan. Universidad Austral. Facultad de Ciencias Biomédicas. Instituto de Investigaciones en Medicina Traslacional. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Parque Centenario. Instituto de Investigaciones en Medicina Traslacional; ArgentinaFil: Malvicini, Mariana. Universidad Austral. Facultad de Ciencias Biomédicas. Instituto de Investigaciones en Medicina Traslacional. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Parque Centenario. Instituto de Investigaciones en Medicina Traslacional; ArgentinaFil: Sganga, Leonardo. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Parque Centenario. Instituto de Investigaciones Bioquímicas de Buenos Aires. Fundación Instituto Leloir. Instituto de Investigaciones Bioquímicas de Buenos Aires; ArgentinaFil: Bolontrade, Marcela Fabiana. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Instituto de Biología y Medicina Experimental. Fundación de Instituto de Biología y Medicina Experimental. Instituto de Biología y Medicina Experimental; ArgentinaFil: Adriani, Oscar. Hospital Universitario Austral; ArgentinaFil: Bizama, Carolina. Universidad Católica de Chile; ChileFil: Fresno Rodríguez, Cristóbal. Universidad Católica de Córdoba; ArgentinaFil: Podhajcer, Osvaldo Luis. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Parque Centenario. Instituto de Investigaciones Bioquímicas de Buenos Aires. Fundación Instituto Leloir. Instituto de Investigaciones Bioquímicas de Buenos Aires; ArgentinaFil: Fernandez, Elmer Andres. Universidad Católica de Córdoba; ArgentinaFil: Gidekel, Manuel. Universidad de la Frontera. Núcleo Científico y Tecnológico en Recursos Naturales; Chile. Universidad Autónoma de Chile; ChileFil: Mazzolini Rizzo, Guillermo Daniel. Universidad Austral. Facultad de Ciencias Biomédicas. Instituto de Investigaciones en Medicina Traslacional. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Parque Centenario. Instituto de Investigaciones en Medicina Traslacional; Argentina. Hospital Universitario Austral; ChileFil: García, Mariana Gabriela. Universidad Austral. Facultad de Ciencias Biomédicas. Instituto de Investigaciones en Medicina Traslacional. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Parque Centenario. Instituto de Investigaciones en Medicina Traslacional; Argentin

Taxane-Platin-Resistant Lung Cancers Co-develop Hypersensitivity to JumonjiC Demethylase Inhibitors

Although non-small cell lung cancer (NSCLC) patients benefit from standard taxane-platin chemotherapy, many relapse, developing drug resistance. We established preclinical taxane-platin-chemoresistance models and identified a 35-gene resistance signature, which was associated with poor recurrence-free survival in neoadjuvant-treated NSCLC patients and included upregulation of the JumonjiC lysine demethylase KDM3B. In fact, multi-drug-resistant cells progressively increased the expression of many JumonjiC demethylases, had altered histone methylation, and, importantly, showed hypersensitivity to JumonjiC inhibitors in vitro and in vivo. Increasing taxane-platin resistance in progressive cell line series was accompanied by progressive sensitization to JIB-04 and GSK-J4. These JumonjiC inhibitors partly reversed deregulated transcriptional programs, prevented the emergence of drug-tolerant colonies from chemo-naive cells, and synergized with standard chemotherapy in vitro and in vivo. Our findings reveal JumonjiC inhibitors as promising therapies for targeting taxane-platin-chemoresistant NSCLCs.Fil: Dalvi, Maithili P.. University of Texas. Southwestern Medical Center; Estados UnidosFil: Wang, Lei. University of Texas. Southwestern Medical Center; Estados UnidosFil: Zhong, Rui. University of Texas. Southwestern Medical Center; Estados UnidosFil: Kollipara, Rahul K.. University of Texas. Southwestern Medical Center; Estados UnidosFil: Park, Hyunsil. University of Texas. Southwestern Medical Center; Estados UnidosFil: Bayo Fina, Juan Miguel. University of Texas. Southwestern Medical Center; Estados Unidos. Universidad Austral. Facultad de Ciencias Biomédicas. Instituto de Investigaciones en Medicina Traslacional. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Parque Centenario. Instituto de Investigaciones en Medicina Traslacional; ArgentinaFil: Yenerall, Paul. University of Texas. Southwestern Medical Center; Estados UnidosFil: Zhou, Yunyun. University of Texas. Southwestern Medical Center; Estados UnidosFil: Timmons, Brenda C.. University of Texas. Southwestern Medical Center; Estados UnidosFil: Rodriguez Canales, Jaime. University of Texas; Estados UnidosFil: Behrens, Carmen. Md Anderson Cancer Center; Estados UnidosFil: Mino, Barbara. University of Texas; Estados UnidosFil: Villalobos, Pamela. University of Texas; Estados UnidosFil: Parra, Edwin R.. University of Texas; Estados UnidosFil: Suraokar, Milind. University of Texas; Estados UnidosFil: Pataer, Apar. University of Texas; Estados UnidosFil: Swisher, Stephen G.. University of Texas; Estados UnidosFil: Kalhor, Neda. University of Texas; Estados UnidosFil: Bhanu, Natarajan V.. University of Pennsylvania; Estados UnidosFil: Garcia, Benjamin A.. University of Pennsylvania; Estados UnidosFil: Heymach, John V.. University of Texas; Estados UnidosFil: Coombes, Kevin. University of Texas; Estados UnidosFil: Xie, Yang. University of Texas. Southwestern Medical Center; Estados UnidosFil: Girard, Luc. University of Texas. Southwestern Medical Center; Estados UnidosFil: Gazdar, Adi F.. University of Texas. Southwestern Medical Center; Estados UnidosFil: Kittler, Ralf. University of Texas. Southwestern Medical Center; Estados UnidosFil: Wistuba, Ignacio I.. University of Texas; Estados UnidosFil: Minna, John D.. University of Texas. Southwestern Medical Center; Estados UnidosFil: Martinez, Elisabeth D.. University of Texas. Southwestern Medical Center; Estados Unido