Eclosão de Branchonetas Dendrocephalus brasiliensisem condições de laboratório.

TCC (graduação) - Universidade Federal de Santa Catarina, Centro de Ciências Agrárias, Curso de Engenharia de Aquicultura.Na aquicultura praticada na atualidade, um dos maiores problemas enfrentados na larvicultura é a demanda por alimentos atrativos que apresentem forma, tamanho e qualidade nutricional adequado, sendo o uso de alimentos vivos o mais indicado. A busca por alimentos vivos que atendam as características citadas tornou-se necessária para manter as larviculturas e garantir que a aquicultura continue em crescimento. O microcrustáceo de água doce Dendrocephalus brasiliensis, popularmente conhecido como branchoneta, possui um ciclo reprodutivo bastante curto, é de fácil obtenção, forma cistos, apresenta grande atratividade e atende aos requerimentos nutricionais de espécies de peixes carnívoros, donde se vislumbra sua grande importância como alimento natural. Assim, este estudo visa avaliar diferentes métodos de eclosão de cistos de D. brasiliensis em condições de laboratório, visando obter uma alternativa de alimento vivo em larviculturas de organismos de água doce. Para tanto, foram avaliados três diferentes tratamentos com seis repetições para eclosão dos cistos. Um tratamento sem pré-hidratação dos cistos (NH) e outros dois com 18 horas de pré-hidratação, com um deles posteriormente mantido a sombra em placa de petri (HP) e outro mantido igualmente na sombra e sobre tela com fundo úmido (HT). Cada unidade experimental consistiu de 0,15 g de cistos estocados em provetas de 100 mL com aeração. O experimento teve duração de seis dias e foram realizadas contagens diárias dos náuplios. Não houve diferença em relação à produção de náuplios e taxa de eclosão entre os tratamentos (p>0,05), sendo observadas baixas taxas de eclosão. O tratamento afetou o tempo de eclosão do maior número de branchonetas (p<0,05). Enquanto o tratamento NH apresentou seu pico de eclosão somente após o terceiro dia de incubação, os tratamentos com cistos hidratados (HT e HP) mostraram esse pico logo após completar um dia de incubação. Considerando as observações realizadas neste trabalho, é possível concluir que a D. brasiliensis, apesar de apresentar excelentes características para ser utilizada como alimento vivo, no atual estado do conhecimento, quando demonstra pequena sincronia na eclosão dos cistos e possui baixas taxas de eclosão, ainda torna a espécie pouco atraente como alternativa de alimento vivo para manter larviculturas intensivas de água doce

Criopreservação do sêmen do dourado, Salminus brasiliensis (Cuvier, 1816, CHARACIDAE)

Dissertação (mestrado) - Universidade Federal de Santa Catarina, Centro de Ciências Agrárias, Programa de Pós-Graduação em Aquicultura, Florianópolis, 2013O dourado Salminus brasiliensis é um peixe migrador que desperta interesse para piscicultura. Os procedimentos para a reprodução induzida são dominados, contudo, o uso de sêmen criopreservado continua apresentando uso restrito. Apesar da criopreservação ser eficiente para manter a motilidade espermática, as taxas de fertilização obtidas com sêmen criopreservado são inferiores às do sêmen fresco. Este trabalho visa contribuir para o conhecimento no uso de sêmen criopreservado na reprodução induzida do dourado. Os gametas foram obtidos da primeira geração de dourados provenientes do cruzamento de reprodutores selvagens. Foram realizados experimentos de descongelamento (ambiente x água), soluções ativadoras (água destilada, NaCl 0,45% ou NaHCO3 1%), motilidade espermática e fertilização com sêmen criopreservado de dourado comparando a solução crioprotetora ACP®-104 350 mOsm e metilglicol com a solução comumente utilizada para dourado, que consiste na mistura de dimetilsulfóxido, glicose, gema de ovo e água destilada. Para ambas as soluções foi avaliada a diluição do sêmen, sendo testadas diferentes proporções de sêmen:solução crioprotetora. O maior tempo de motilidade foi obtido com NaCl 0,45% e o descongelamento com água possibilitou maiores taxas de fertilização, sendo que a solução crioprotetora à base de glicose propiciou os melhores resultados. A motilidade e a taxa de fertilização do sêmen criopreservado com a solução à base de glicose não foram alteradas pela diluição sêmen:crioprotetor, porém, com o uso do ACP®-104 a motilidade espermática e a fertilização foram maiores com o aumento da diluição

<b>Induced reproduction of dourado (<i>Salminus brasiliensis</i>): fertilization with sperm cryopreserved in ACP^®-104

Experiments were conducted to improve the fertilization rate of cryopreserved semen of dourado, Salminus brasiliensis. The experiment tested two cryoprotectant solutions at different semen: cryoprotectant ratios (1:5, 1:15, 1:25 and 1:50). The standard solution for the species (mixture of dimethyl sulfoxide, glucose, egg yolk and distilled water) was compared to a 350 mOsm ACP®-104 solution, which is composed of powdered coconut water diluted in distilled water and methylglycol. Differences between the dilutions tested were significant only for ACP®. The fertilization potential by using the standard solution at the lowest dilution (1:5) is equated when the sperm is diluted in ACP® at 1:25 or 1:50. These results show that the standard solution is the most suitable for the cryopreservation of dourado sperm, since the dilution did not alter the fertilization rate, requiring smaller storage space

Cryopreserved sperm for oocyte fertilization of dourado Salminus brasiliensis

Salminus brasiliensis is a migratory fish that has attracted considerable interest for aquaculture. Several procedures for induced spawning are known; however, there is a lack of protocol which enables the use of cryopreserved semen. Therefore, this study was conducted to investigate the use of cryopreserved semen using different volumes of cryopreserved semen relative to oocytes, different activators solutions and different maintenance time during the fertilization of dourado to evaluate the impact of these parameters on the fertilization rate. The semen was collected, cryopreserved in 0.5mL straws and stored in a dry shipper. Oocytes samples were fertilized according to each treatment. The different activator solutions and the contact times of the gametes with activators affected significantly the fertilization rates, which ranged between 13.4 and 27.8%, while fresh semen fertility rate was 80.8%. The relationship between oocyte and cryopreserved semen was significant, being the best ratio 0.05mL of cryopreserved semen per 10g of oocytes, while upper or lower volumes promoted a reduction in fertilization. The use of cryopreserved semen was effective to fertilize S. brasiliensis oocytes, however produced lower fertility rate than fresh seme