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MELO, M. B. de

SANHUEZA, R. M. V.

Portuguese

Infoteca-e

1317 C PATC 1997 FL-13217 MEMORrÀ—t CPATC 	 na Pcsu.And. 31L2 Empresa Brasileira de Pesquisa Agropecuória Centro de Pesquisa Agropecuéria dos Tabuleiros Cesteiros Ministério da Agricultura e do Abastecimento Ai. Beira-Mar 3.250, CP 44, CEP 49001-970 Ara caiu SE Fone (0791277 1300 Fax (079) 2319145 Telex 792318E8PA E-mail postn,aster©cpatc.embrepa.br  0 ir 31, CPATC, agosto/97. p.i-6 CONTROLE INTEGRADO DA PODRIDÃO DAS RAÍZES DO MARACUJAZEIRa. Passifiora edulis Simmonds f. flavicarpa Deg Marcelo Brito de Meio 1 Rosa Maria Valdebenito Sanhueza 2 A podridão das raízes do maracujazeiro Passiflora edulis Simmonds f. flavicarpa Deg. causada por Phyrophthora sp. é uma séria doença que ocorre nas áreas onde se cultiva esta passifloraceae em Sergipe (Souza Filho et aL. 1978 ). Sua ocorrência reduz significativamente a longevidade dos plantios e, conseqüentemente a receita do produtor e, em alguns casos, limita inteiramente a cultura em determinadas áreas. Os poucos trabalhos realizados em campo visando o controle químico do Phytophthora sp. utilizando os produtos metalaxil e fosetil AI, em aplicações no solo e via foliar, sendo a primeira no início do plantio, com intervalo mínimo de 60 dias, não foram eficientes no controle preventivo da doença. Não ocorreu também o efeito significativo da matéria orgânica (estercos de galinha e de gado) fazendo incorporação no solo 45 dias antes do plantio e percorrendo o intervalo de 120 dias para completar o total de três aplicações, na relação patógeno/antagonista (Meio, et aL, 1990; Meio, 1993). Valdebenito Sanhueza (1986, 1991), recomenda o uso do fungo Trichocierma vinde para o controle da podridão das raízes da macieira, no solo do local de replantio onde as plantas foram mortas, exercendo antagonismo contra Phytophthora sp. destruindo seu micélio. Dentre muitos agentes potenciais de biocontrole. Tnichoderma spp. tem sido o mais estudado. São encontrados parasitando uma série de fungos patogênicos, inclusive aqueles formados de esclerócios, cujas estruturas são difíceis de serem parasitadas. Também tem-se sugerido que Trichocierma spp. podem induzir um aumento no crescimento das plantas através de um fator que regula o crescimento e a germinação de sementes (MeIo. 1991). Controle integrado da podridàc 1997 	 FL-13217 UIfl IIHIIlD II lIIIl IIIhlI DHIID IIhhIlD Ifll IDhI 43553-1 'Eng.-Agr.. M.Sc.. Contrato Embrapa/Emdagro. Caixa Postal 44. CEP 49001-970, Aracaju, SE. .2  Eng.-Agr., Ph.D., Embrapa Uva e Vinho. Caixa Postal 130, CEP 95700.000, Bento Gonçalves. RS. PA n° 31 CPATC, agosto/97, p.2-6 Baker & Cook (1974), descrevem a possibilidade do controle biológico através de ensaios com transferência em massa de uma microflora completa do solo no campo, onde a doença causada pelo patógeno não ocorre ou não tenha sido desenvolvida, apesar da presença do hospedeiro susceptível. Ico (1982) mostrou que P. palmivora ataca somente plantas jovens de mamoeiro, sendo possível controlar a doença pela proteção das raízes no estádio primário de crescimento colocando-se solo "virgem" na cova antes do plantio, permitindo que as plântulas permaneçam sadias após suas raízes se estabelecerem no solo infectado. Nesse trabalho procurou-se introduzir o controle biológico da podridão das raízes do maracujazeiro através do estabelecimento do fungo Trichoderrna e pela manipulação de solo supressivo da doença. Os experimentos foram realizados na Área Experimental de Umbaúba (SE). Neste local, em anos anteriores ocorreu morte de plantas de maracujá 'amarelo' (Passif!ora edu!is Simmonds f. flavicarpa Deg.). causada por Phytophthora sp. As mudas de maracujazeiro foram produzidas a partir de sementes obtidas em frutos de plantas sadias no município de Lagarto (SE). Utilizaram-se bolsas plásticas de 9.5cm x 18.0cm contendo terra vegetal, sendo em seguida tratadas com formaldeido 3%. Após 10 dias de molhação diária foi realizada a semeadura, distribuindo-se 3 sementes por bolsa. Aos 26 dias depois da germinação foi realizado um desbaste nas mudinhas, deixando-se uma planta por bolsa. Para a produção de inóculo do Trichoderma foram realizados isolamentos dos tecidos de raízes sadias de maracujazeiro 'amarelo', coletadas em pomares da região produtora onde não ocorre a podridão das raízes. Utilizou-se o meio de cultura de Martin, modificado, para Trichoderma spp.: KH 2 PO4 (1 .Og); MgSO4 .7H 20 (0.5g); Peptona (5,0g); Dextrose (10,0g); Rosa Bengala (0,033g); Tetraciclina (0.18g); PCNB-Brassicol 75% (0.20g); Ágar (20.0g); água destilada (1 .000ml) e pH ajustado para 6.0. A tetraciclina foi adicionada após autoclavagem (Tuite, 1969 ). Após o isolamento foi selecionado o isolado de Trichoderma denominado (TP), que mostrou rápido crescimento a 26°C, em placas de Petri com 90mm de diâmetro, contendo meio (batata-dextrose-ágar), com velocidade média de 50mm por dia. T. vinde (Ti 5) foi originado do Campo Experimental de Vacaria (195). do Centro Nacional de Pesquisa de Uva e Vinho da Embrapa. Foi também testado o isolado de Trichoderma denominado (TC). oriundo de folíolo de coqueiro. Foram mantidos em BDA e transferidos em discos (6mm de diâmetro) para sacos plásticos (1 6,0cm x 18,0cm) contendo meio de cultura de arroz (2009 de arroz em SOmI de água destilada) e incubados a 26°C. Uso de Trichoderma spp. no controle da podridão das raízes do maracujazeiro Neste ensaio adotou-se o delineamento experimental em blocos ao acaso com 5 tratamentos e 4 repetições. Utilizou-se o espaçamento de 5.0m x 3.Om entre plantas. Os tratamentos foram os seguintes; Tnichoderma sp. (TP); T. vinde (Ti 5); Trichoderrna sp. (TC); Formol 3% e Testemunha (solo naturalmente infectado). Para aplicação de Trichoderma spp. foi utilizada metodologia semelhante à de Valdebenito Sanhueza (1990, 1991). As covas para o plantio do maracujazeiro mediram 40cm x 40cm x 40cm de comprimento, onde o solo foi desinfestado por encharcamento com formaldeído 3%, com exceção da testemunha. Aos 15 dias após o tratamento do solo das covas foi realizado o plantio das mudas, onde é feita a adubação de fósforo na forma de supenriplo (267g/planta), adicionando-se o Tnichoderma spp. na  concentração de 10 ° conidios/mi, junto às raízes das plantas. Os tratamentos foram realizados no mês de julho, época da estação chuvosa, para assegurar a umïdade do PA n° Si . CPATC, agosto/97. p2-6 solo e ajudar o desenvolvimento do fungo. A avaliação dos tratamentos foi efetuada até 19 meses através dos seguintes parâmetros: número de plantas mortas mensalmente; número de frutos e produção total (kg). Utilização de solo supressivo da doença "SS" no controle da podridão das raízes O delineamento experimental e espaçamento entre plantas foram os mesmos utilizados no ensaio anterior. Foram estudados os seguintes tratamentos: solo supressivo da doença "SS" (60kg/cova); "SE' + areia lavada (1:1) (60kg/cova) + formaldeldo 3% (desinfestação na cova antes do tratamento); "SS"+ areia lavada (1:1) (60kg/cova); areia lavada (60k91cova) e testemunha (solo naturalmente infectado). O solo supressivo da doença "SS" foi obtido na Colônia Retiro em Umbaúba (SE), em local onde não ocorre a doença ou não tenha condições para o seu desenvolvimento. O solo foi retirado em pomar de maracujazeiro com três anos de idade, a uma profundidade de O a 20cm, sendo em seguida depositado em sacos de polietileno de 60k9 e transferidos para área experimental. A avaliação dos tratamentos foi realizada com parâmetros idênticos ao ensaio anterior. Durante dezenove meses as médias dos tratamentos da produção dos frutos foram avaliadas através de coleta semanal. Não houve diferença significativa. mostrando que todos os parâmetros de Trichoderma sp. (TP) e T. vinde (Ti 5) foram iguais à testemunha. Os tratamentos com Tnichoderma sp. (TC) e formol 3%, foram mais susceptíveis (Tabela 1). Quando se tentou reproduzir o efeito antagonista que ocorria em maracujazeiro numa localidade, quando transferiu-se o solo para o local do ensaio, houve uma indicação que passou de solo supressivo para solo indutor da doença (Tabela 2). O número de plantas mortas pela podridão das raízes após inoculação do T. vinde, promoveu pare que se mantivesse baixo durante os cinco primeiros meses no campo. Com  o inicio do período das chuvas (junho/julho), verificou-se que ocorreu um aumento de morte das plantas nos meses posteriores (agosto/setembro/outubro). (Figura 1). PA n° 31 . CPATC, agosto/97. p.4-6 Tabela 1. Produção total, número de frutos e percentual de plantas monas utilizando Trichoderma spp. no controle da podridão das raízes do maracujazeiro. Tratamentos: 	 1 ' 	 'Produãototal III 	II 	1 	 1 {kg) N de fruto 	 ::plantas 1 	 II rnorças Trichoderma sp. (TP) 31,25a 	 * 271 ,25a 	 * 60,00a 	 * T. koningii (Ti 5) 30.00a 230,25ab 50,00a Trichoderma sp. (TC) 22,50 b 176,50 b 70,00a Formol 3% 22,00 b 209,25ab 70,00a Testemunha 29,60a 216,25ab 75,00a D.M.S. (5%) 2,58 80,44 29,68 C.V. (%) 4,24 16.17 20,25 Médias seguidas pelas mesmas letras não diferem estatisticamente entre si, pelo teste Tukey. ao nível de 5% de probabilidade. Tabela 2. Produção total, número de frutos e percentual de plantas monas utilizando solo supressivo à doença no controle da podridão das raízes do maracujazeiro. 'Tratmenos • Prbduçãd tdt& £ 1 	 N6 dó frÀ:o. 	 Plarita !jnorta's Solo Supressivo (SS) 5.50 	 c * 	 50.00 	 d * 80,00a 	 * SS + Areia Lavada (AL) + Formol 3% 9.75a 99,50a 75,00a AL 10.00a 89.00 b 85,00a SS + AL 7.50 b 72,00 	 c 80,00a Testemunha ii .25a 96,25a 60,00a D.M.S. (5%) 1,52 6,71 40,96 C.V. (%) 7,69 3,11 23.90 Médias seguidas pelas mesmas letras não diferem estatisticamen -te entre si, pelo teste Tukey, ao nível de 5% de probabilidade. PA n° 31 , CPATC, agosto/97, p.S-O FE J 	 1 	 A 	 $ 	 O 	 N Ia Fig. 1 - Número de plantas mortas pela podridão das raízes após a inoculação do Triclrnderma vinde (Tl5) e TP em maracujazeiro 'Amarelo', e testemunha(T). PA n°31 . CPATC. agosto/97. p. 6-6 REFERÊNCLAS BIBLIOGRÁFICAS BAKER, K.F.; COOK, R.J. Biological control plant pathogens. Freeman & Company. 1974. 433p. KO, W.H. Biological control of Phytophrhora root rot aí papaya wity virgin sou. Plant. Disease, v.66, p. 446-448, 1982. MELO, I.S. Potencialidade da utilização de Trichoderma spp. no controle biológico de doenças de plantas. In: BETTIOL. W., org. Controle biológico de doenças de plantas. Jaguariúna: Embrapa/CNPDA, 1991. p.135-156. MELO, M.B. Podridão das raízes do maracujazeiro. Passiflora eciulis f. flavicarpe Deg. Fitopatologia Brasileira, v. 18, p. 256-257. 1993. MELO, M.B.; BATISTA, F.A.S.; SILVA. L.M.S. & TRINDADE, J. Controle da podridão das raízes do maracujazeiro. Revista. 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Controle integrado da podridão das raízes do maracujazeiro Passiflora edulis Simmonds f. flavicarpa Deg.

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