ANDRADE, P. J. M.

ASMUS, G. L.

Infoteca-e

Tiragem: 1.500 exemplaresNº 28, jan./98, p.1-51Guilherme Lafourcade Asmus2Paulino José Melo AndradeCOMUNICADOTÉCNICOEmpresa Brasileira de Pesquisa AgropecuáriaCentro de Pesquisa Agropecuária do OesteMinistério da Agricultura e do AbastecimentoRod. Dourados-Caarapó km 5  Caixa Postal 661  79804-970 Dourados MSFone (067) 422-5122 Fax (067) 421-0811ISSN 0104-5164REPRODUÇÃO DO NEMATÓIDE DE GALHAS EM PLANTAS FORRAGEIRAS UTILIZADAS EM SISTEMAS INTEGRADOS DE PRODUÇÃO AGROPECUÁRIAApós décadas de exploração agrícola embasada no preparo convencional do solo e no monocultivo da soja e, devido ao avançado estado de degradação das pastagens, Mato Grosso do Sul tem experimentado, recentemente, um novo modelo, econômico e ambientalmente mais sustentado, de integração da produção agropecuária. Comumente chamado de "Integração Agricultura-Pecuária", o  sistema baseia-se na rotação de culturas (principalmente soja) com forrageiras perenes. A soja é implantada em semeadura direta sobre a palhada dessecada da forrageira, beneficiando-se da melhoria das propriedades físicas, químicas e biológicas do solo. As forrageiras, especialmente Brachiaria decumbens, B. brizantha, Panicum maximum cv. Tanzânia e P. maximum cv. Mombaça, são implantadas em sucessão à soja, havendo, por conseqüência, uma rápida recuperação da fertilidade, especialmente pela alta quantidade de nitrogênio disponibilizado após o cultivo da soja (cerca de 100 kg/ha), o qual é indispensável para a produção de forragem (Broch et al., 1997).A prevalência até então, na Região Oeste do Brasil, do monocultivo da soja, tem favorecido a disseminação e o agravamento dos danos causados por nematóides de galhas. Dentre esses, Meloidogyne javanica (Treub) Chitwood tem sido a espécie mais freqüente (Ferreira et al., 1979; Sonego, 1983; Embrapa, 1994).A rotação de culturas é uma prática reconhecidamente eficiente para o controle de nematóides de galhas (Lordello, 1981; Raymundo, 1985). Um dos primeiros relatos utilizando gramíneas para o controle de Meloidogyne spp. foi realizado por Winchester & Hayslar (1960), citados por Brito & Ferraz (1987). Sendo assim, o sistema integrado de agricultura (soja) com pecuária (forrageiras) poderá se constituir num excelente modelo de exploração para áreas infestadas por M. javanica. Para tanto, é necessário que se conheça a reprodução desse nematóide nas forrageiras mais utilizadas ou passíveis de serem utilizadas na integração agricultura-pecuária.Alguns trabalhos já foram desenvolvidos avaliando o comportamento de forrageiras a espécies de Meloidogyne (Almeida & Campos, 1991a, Almeida & Campos 1991b, Charchar, 1995; Johnson & Burton, 1977; Silva, 1992). Especificamente relacionados com a reprodução de M. javanica, Sharma (1984b, 1987) relatou que as espécies Stylosanthes guyanensis sub. sp. guyanensis cv. Bandeirante, S. capitata cv. CPAC 704 e S. macrocephala cv. Pioneiro mostraram-se imunes.Eng. Agr., M.Sc., CREA nº 25016/D-MG, Visto 2685/MS, EMBRAPA-CPAO, Caixa Postal 661, 79804-970 - Doura-dos, MS. Eng.-Agr., M.Sc., CREA nº 4488/D-MS, EMBRAPA-CPAO.12ADE D  EIV   I QT UU AD LO IDR ADEPÉRT IOSI  DNI AMAG AR RI UC TULCT/28, CPAO, jan./98, p.2Brito & Ferraz (1987) observaram que a aveia preta comum (Avena strigosa) e o capim setária (Setaria sphacelata cv. Kazangula) foram suscetíveis a M. javanica. No mesmo trabalho, destacaram a baixa reprodução desse nematóide em B. brizantha e P. maximum cv. Guiné. Em trabalho realizado por  Sharma  (1984a), a  aveia preta  comum também mostrou-se suscetível a M. javanica.O milheto (Pennisetum americanum) tem-se destacado como uma importante alternativa para cobertura do solo e alimentação animal na região (Salton & Kichel, 1997). Esta cultura mostrou, em trabalho realizado por Santos & Ruano (1987), ser bastante favorável para uso em áreas infestadas por M. javanica e M. incognita (raça 3).Para permitir que se façam recomendações mais adequadas da escolha de forrageiras para uso em sistemas integrados de produção em áreas infestadas por M. javanica, conduziu-se um trabalho em casa de vegetação, na  EMBRAPA-CPAO, em Dourados, MS.Sementes  de   brizantão  (B. brizantha  (Hochst.  Ex.   A.  Rich)  Stapf.),  milheto  comum  (P. americanum  Schum.), milheto BN-2  (P. americanum Schum. cv. BN-2), tanzânia (P. maximum Jacq. cv. Tanzânia), mombaça (P. maximum Jacq. cv. Mombaça, aveia preta comum (Avena strigosa Schreb), aveia branca FMS-1 (A. sativa L. cv. FMS-1), mineirão (S. guyanensis (Aubl.) Swartz. var. vulgaris cv. Mineirão e teosinto (Euchalaena mexicana) foram semeadas em vasos de polietileno, com capacidade de 3,0 litros, contendo uma mistura 1:1 (v/v) de solo + 3areia lavada, desinfestada  com brometo de metila  (150 cc/m ). Após 28 dias, as plantas foram inoculadas com 5 ml de uma suspensão contendo 1.000 ovos/ml de M. javanica, multiplicados durante 60 dias em sistema radicular de tomateiro "Rutgers" e extraídos pela técnica descrita por Boneti & Ferraz (1981). O inóculo foi depositado em dois orifícios de aproximadamente 3 cm de profundidade, distantes 1 cm do caule das plantas, que, após a inoculação, foram cobertos com areia desinfestada.Sempre que necessário, o solo foi irrigado durante o período de condução do experimento.Sessenta dias após a inoculação, as raízes das plantas foram retiradas dos vasos, lavadas cuidadosamente em água corrente para tirar o excesso de substrato, e avaliadas quanto à presença de ovos de M. javanica, de acordo com Boneti & Ferraz (1981). A partir dos dados do número de ovos obtidos e do peso de cada sistema radicular, determinou-se o número de ovos/grama de raiz e calculou-se o fator de reprodução (FR) de M. javanica, através da seguinte equação: O delineamento experimental foi o inteiramente casualizado com oito repetições, onde cada vaso, contendo uma planta, constituiu-se numa parcela. Utilizou-se o tomateiro "Rutgers" e a soja "Paiaguás" como padrões suscetíveis. Durante a condução do experimento a temperatura média no interior da casa de vegetação foi de 24,4ºC, com extremos de 17,5ºC e 33,0ºC.Os dados apresentados na Tabela 1 mostram que M. javanica multiplicou-se eficientemente, além das testemunhas suscetíveis, apenas na cultura da aveia preta comum, onde houve um aumento médio no número de ovos superior a nove vezes (FR = 9,41). Dessa forma, em áreas infestadas, não se recomenda o cultivo da aveia preta comum em sucessão com a soja, quer seja como forrageira ou cobertura do solo, pois o problema com nematóide de galhas poderá ser agravado, causando danos de grande monta no próximo ciclo da soja.Por outro lado, a aveia FMS-1, as duas variedades de milheto (comum e BN-2), o brizantão, as duas variedades de P. maximum (mombaça e tanzânia), o mineirão e o teosinto mostraram uma alta resistência ao M. javanica, sendo, assim, indicados para uso em sistemas integrados de produção agropecuária em áreas infestadas por esse nematóide.COMUNICADO TÉCNICONúmero de ovos obtidos por sistema radicularFR = Número de ovos usados na inoculaçãoCT/28, CPAO, jan./98, p.3A alta reprodução de M. javanica em aveia preta já havia sido anteriormente descrita por Sharma (1984a) e Brito & Ferraz (1987). Os resultados obtidos neste trabalho evidenciam, no entanto, haver uma resposta diferenciada entre espécies de aveia, onde os valores do FR variaram entre 0,21 (branca FMS-1) e 9,41 (preta comum). Trabalhando com as raças 1, 2, 3 e 4 de M. incognita, Silva (1992) detectou uma grande variabilidade entre a reação de dez cultivares de aveia preta, sendo que apenas a SI 90056 foi resistente a todas as raças.  Os resultados obtidos permitem que se faça uma recomendação mais adequada de forrageiras para uso em rotação com a soja em sistemas integrados de produção agropecuária, implantados em áreas infestadas por M. javanica. REFERÊNCIAS BIBLIOGRÁFICASALMEIDA, V.F. de; CAMPOS, V.P.  Alternância de culturas e sobrevivência de Meloidogyne exigua em áreas de cafezal infestado e erradicado.  Nematologia Brasileira, Piracicaba, v.15, n.1, p.30-42, jul. 1991a.ALMEIDA, V.F. de; CAMPOS, V.P.  Reprodutividade de Meloidogyne exigua em plantas antagonistas e em culturas de interesse econômico.  Nematologia Brasileira, Piracicaba, v.15, n.1, p.24-29, jul. 1991b.BONETI, J.I.S.; FERRAZ, S. Modificação do método de Hussey & Barker para extração de ovos de Meloidogyne exigua de raízes de cafeeiro. Fitopatologia Brasileira, Brasília, v.6, n.3, p.553, out. 1981.  Resumo.BRITO, J.A.; FERRAZ, S.  Seleção de gramíneas antagonistas a Meloidogyne javanica.  Nematologia Brasileira, Piracicaba, v.11, p.260-269, 1987.BROCH, D.L.; PITOL, C.; BORGES, E.P.  Integração agricultura-pecuária: plantio da soja sobre pastagem na integração agropecuária.  Maracaju: FUNDAÇÃO MS para Pesquisa e Difusão de Tecnologias Agropecuárias, 1997. 24p.  (FUNDAÇÃO MS. Informativo Técnico, 1).CHARCHAR, J.M. Meloidogyne em hortaliças.  In: CONGRESSO INTERNACIONAL DE NEMATOLOGIA TROPICAL, 1995, Rio Quente, GO.  Programa e anais. [S.l.], SBN/ONTA,  [1995?].  p.149-153. EMBRAPA. Centro Nacional de Pesquisa de Soja (Londrina, PR).    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Folder.SANTOS, M.A. dos; RUANO, O.  Reação de plantas usadas como adubos verdes a Meloidogyne incognita raça 3 e M. javanica.  Nematologia Brasileira, Piracicaba, v.11, p.184-197, 1987.SHARMA, R.D.  Reaction of some oat genotypes to Meloidogyne javanica.  Nematologia Brasileira, Piracicaba, v.8, p.125-133, 1984a. SHARMA, R.D.  Seleção de genótipos de diversas culturas resistentes ou tolerantes ao nematóide formador de galhas das raízes, Meloidogyne javanica (Treub) Chitwood, sob condições de casa de vegetação. In: EMBRAPA. Centro de Pesquisa Agropecuária dos Cerrados (Planaltina, DF).  Relatório técnico anual do Centro de Pesquisa Agropecuária dos Cerrados 1982/1985.  Planaltina: EMBRAPA-CPAC, 1987. p.427-429.  SHARMA, R.D.  Species of Stylosanthes (Leguminosae) immune to the root-knot nematode, Meloidogyne javanica.  Nematologia Brasileira, Piracicaba, v.8, p.141-148, 1984b.SILVA, J.F.V.  Reação de genótipos de aveia preta (Avena strigosa L.) às raças 1, 2, 3 e 4 de Meloidogyne incognita.  Nematologia Brasileira, Piracicaba, v.16, n.1/2, p.6-10, 1992.SONEGO, O.R.  Doenças identificadas em lavouras de soja da região da Grande Dourados, MS.  Dourados: EMBRAPA-UEPAE Dourados,   1983.  50p. (EMBRAPA-UEPAE DOURADOS. Circular Técnica, 10).AGRADECIMENTOSOs autores agradecem ao laboratorista do Setor de Nematologia, Sr. Sadoc Aleixo de Sales, pelo auxílio prestado durante todas as fases da condução do experimento, e aos colegas Luís Armando Zago Machado (EMBRAPA-CPAO) e Carlos Pitol (FUNDAÇÃO MS), pelo fornecimento das sementes e pelas sugestões apresentadas. COMUNICADO TÉCNICOCT/28, CPAO, jan./98, p.5Fator de reprodução de Meloidogyne javanica em plantas forrageiras utilizadas em sistemas integrados de produção agropecuária. EMBRAPA-CPAO, Dourados, MS, 1997.TABELA 1.COMUNICADO TÉCNICOForrageiraFator de reproduçãoNome comumNome científicoAveia preta comumAvena strigosaAveia branca FMS-1Avena sativa cv. FMS-1Milheto comumPennisetum americanumMilheto BN-2Pennisetum americanum cv. BN-2TanzâniaPanicum maximum cv. TanzâniaMombaçaPanicum maximum cv. MombaçaBrizantãoBrachiaria brizanthaTeosintoEuchalaena mexicanaMineirãoStylosanthes guyanensis var. vulgaris cv. MineirãoTomate*Lycopersicum esculentum cv. RutgersSoja (Paiaguás)*Glycine max cv. PaiaguásC.V. (%)9,41 c0,21 d0,77 d0,51 d0,30 d0,16 d0,10 d0,43 d0,12 d116,19 a57,87  b30,25* Utilizados como controle da inoculação e viabilidade do inóculo.Para efeito de análise estatística, os dados foram transformados em x + 0,5.Médias seguidas de mesma letra não diferem entre si pelo teste de Duncan, 5%.DEVOLUÇÃOGARANTIDAISR116/82DR/MSIMPRESSOPORTE PAGODR/MSISR - 57 - 116/82

Reprodução do nematoide de galhas em plantas forrageiras utilizadas em sistemas integrados de produção agropecuária.

http://www.infoteca.cnptia.embrapa.br/infoteca/bitstream/doc/241553/1/Cot2898.pdf

Reprodução do nematoide de galhas em plantas forrageiras utilizadas em sistemas integrados de produção agropecuária.

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