Cock, James H.

Lozano, J.C.

Toro, Julio C.

Wholey, D.W.

CGSpace (CGIAR)

5(;3 , 1/ ~ .("~ . ~, Serie ES·20 Junio, 1976 SISTEMA RAPIDO DE PROPAGACION DE YUCA Centro Internacional de Agricultura Tropical Apartado Aéreo 67·13. Cali, Colombia, S. A. Cables: CINATROP J. H. Cock D. Wholey J. C. Lozano J. C. Toro SISTEMA RAPIDO DE PROPAGACION DE YUC~ J. H. Cock' D. Wholey3 J. C. Lozan04 J. C. Toro' La yuca, al igual que todo cultivo propagado vegetativamen-te, tiene una tasa de multiplicación muy baja. Una planta madu-ra o adulta puede dar de 10 a 30 estacas de tamaño comercial (25 centímetros) por año; por lo tanto, la tasa anual de multi-plicación de la yuca es de sólo 10 a 30 veces, la cual se puede aumentar hasta cerca de 100, usando estacas de dos nudos; sin embargo, estas estaquitas requieren cuidados especiales de hume-dad y limpieza cuando son sembradas en campo abierto, lo que hace que el sistema sea difícil. Estas tasas de rrultiplicación no son lo suficientemente rápi-das para suministrar en corto tiempo abundante cantidad de se-millas o estacas de nuevas variedades, a la vez que no permiten El trabajo inicial sobre propagación corresponde a la tesis de Ph.D. de D. Who!cy, posteriormente, J. C. Lozano logró el enraizamiento de retoños en auga en condi-done~ de laboratorio y luego, J. H. Cock coordinó el desarrollo actual del sistema de propagación. 2 Fisiólogo. Llder del Programa de Sistema~ de Producción de Yuca, eIAT. 3 Investigador en Yuca, Instituto de Investigación Agrícola de MaJasi<l (MARDI). Snctang, Selangor, Malasia. 4 Patólogo (Bacteriólogo), Programa de Yuca, CIAT. 5 Agrónomo, Programa de Yuca, elATo 3 suministrar al agricultor material nuevo, libre de enfermedades. Con el fin de mejorar el sistema, se desarrolló un método rá· pido, sencillo y barato, el cual funciona mediante la inducción de retoños y enraizamiento de los mismos. Este material puede proporcionar aproximadamente 36.000 estacas por año, par· tiendo de una planta madura. Aunque no es el único sistema que se puede utilizar, ya que el enraizamiento en cámara nebuliza· dora, en vasos de cartón o potes de turba ha sido exitoso, sí es el más expedito. MATERIALES l. Cámara de propagación. Es un rectángulo de 2,40 x 1,20 me-tros formado por bloques de concreto con huecos anchos (0,40 x 0,15 x 0,10 metros), los cuales se sellan en la base, de manera que sirvan de almacenamiento de agua para mante-ner una humedad alta en la cámara mediante evaporación. Es· te rectángulo se debe llenar con una capa de aproximadamen-te 10 centímetros de grava para suministrar un buen drenaje interno. Encima de esta cama de grava se coloca, hasta el borde de los bloques, suelo permeable (arena y suelo lateríti· co con un pH de 6 han dado buenos resultados). Encima de la cámara se coloca un techo de madera o aluminio cubierto con plástico transparente de tal manera que los extremos de la estructura caigan en el centro de los huecos de los bloques (Figura 1). 2. Area de enraizamiento. Es una mesa cuya superficie está pin-tada de blanco y cubierta con una estructura o techo de madera y plástico, el cual evita que el agua de lluvia contami· ne los frascos de enraizamiento. El techo debe quedar a 1,50 metros de la superficie de la mesa para evitar temperaturas al· tas dentro de la estructura. . 3. Recipientes. Generalmente, se usan frascos de 25 centíme· tros cúbicos y 2 centímetros de diámetro (Figura 2).También se pueden emplear envases de inyecciones, los cuales son muy baratos. 4 Figu{8 l. Cámara de propagación en que se aprecia gran cantidad de retoños listos para cortar. Figura 2. Retoños enraindos en agua, los cuales han pasado el momento de ser sembrados. 5 4. Otros materiales. Los implementos necesarios son: cuchillas de afeitar, una olla grande para hervir agua, hipoc\orito de so-dio o potasio para esterilización de las herramientas y un es-terilizante de suelo (bromuro de metilo, terraclor, brassicol o formol). Metodología Producción de retoños Si el suelo de la cámara de propagación es de baja fertilidad, se debe agregar fertilizante hasta obtener un nivel mediano. El suelo se esteriliza utilizando bromuro de metilo u otro produc-to químico, de acuerdo con las instrucciones del fabricante. Muchos de estos productos son altamente tóxicos por lo cual se debe tener mucho cuidado en su manejo. Se toma una planta madura (de 8 meses de edad o más) y se cortan estaquitas de dos nudos, utilizando una sierra o segueta colocada en una prensa de taller. Estas estaquitas se deben su-luergir en una solución de Arasan al 5 por ciento durante cinco minutos, antes de sembrarlas en forma horizontal a 1 centímetro Figura 3, Siembra de estaquitas con dos nudos en la cámara de propagación. 6 de profundidad. Se debe mantener una humedad adecuada pe-ro no excesiva en el suelo, regando a medida que sea necesario. Los huecos de los bloques de cemento deben permanecer llenos de agua. Unas tres semanas después de sembradas las estaquitas de dos nudos, se obtiene un gran número de retoños dentro de la cá-mara; cuando éstos alcanzan una altura de 8 centímetros se coro tan a 1 centímetro del cuello con una cuchilla de afeitar esterili· zada en solución de hipoclorito de sodio O potasio al 1 por cien· to, dejando estaquitas de 1 centímetro de largo. Los nuevos reto-ños que brotan de esta estaq,üta (Figura 4), se pueden cortar a medida que alcanzan 8 centímetros de altura, lo cual ocurre a diferentes intervalos según el vigor de las estacas. Los frascos utilizados para enraizamiento se deben esterili-zar hirviéndolos en agua durante 30 minutos, lo cual debe hacer-se también con el agua que se va a utilizar en los frascos de en-raizamiento pero dejándola enfriar antes de utilízarla. Figura 4, Estaquitas de dos nudos. después de haberles cortado retoños varias veces. los cuales tienen capacidad de producir hasta más de 9 retoños por unidad sembrada. 7 Una vez hecho el corte con la cuchilla esterilizada, se colocan los retoños uno por uno en los frascos de enraizamiento y estos últimos en la mesa destinada a tal fin, Durante la primera semana, muchas hojas se marchitan y se caen. Después de una o dos semanas, se forman nuevas hojas y salen las primeras raicillas (Figura 5), Cuando éstas aparecen, las plántulas se deben transplantar directamente al campo enterrán-dolas hasta la base de la hoja más baja, teniendo cuidado de no dañar las raíces. Durante las primeras dos semanas después del transplante se requiere un riego adecuado. Discusión El éxito del método depende del crecimiento de nuevos reto-ños en la base donde se cortó el primer brote (Figura 6). Se han Figura 5. Retoño enraizado. listo para sembrar. 8 -Material de propagación Producción de ~~~~~~~'-o retooos Figura 6. Sistema de propagación rápida. 9 '1 ' v ~;t!Y'p;1 150 estaquítas de dus nudos / 8 retoños por estaquita 30 estacas de tamaño comercial logrado obtener hasta más de ocho retoños por cada estaquita de dos nudos durante los primeros cuatro meses después de la sielnbra. Partiendo de una planta madura, la cual da 30 estacas de ta-maño comercial, la tasa de multiplicación del método tradicio-nal se puede comparar con el sistema rápido de propagación: Sistema tradicional Una planta madura J, 30 plantas maduras o (30 x 30) = 900 estacas de tamaño co-mercial en un año Añublo bacterial de la yuca (CSS) Sistema rápido Una planta madura J, 150 estaquitas de dos nudos en 4 meses (150 x 8) = 1,200 x 30 = 36.000 estacas de tamaño comercial en un año En muchas partes del mundo, el añublo bacterial de la yuca o bacteriosis (CEE) es una enfermedad bastante severa, la cual causa pérdidas en el rendimiento hasta del 50 por ciento. Esta enfermedad se disemina rápidamente mediante el uso de mate-rial de propagación contaminado, reduciendo el prendimiento en el campo y aumentando la incidencia de pudrición radical. Con este método de propagación se puede obtener fácilmente material libre de CEE, el cual puede ser usado como semilla básica. Por consiguiente, el sistema puede también proporcionar un aumento rápido de material de siembra libre de bacteriosis*. * Ver Informes Anuales del CIAT (1973 y 1974) Y las publicaciones hechas por el CIAT sobre el Añublo Bacterial de la Yuca. 10 1 Si se llega a tomar material de siembra de un cultivo infec-tado con CBB, se deben seguir las siguientes recomendaciones: 1. Seleccione dentro del cultivo las plantas aparentemente sa-nas. Estas se pueden reconocer por la ausencia de defoliación, muerte descendente, manchas y quemazón foliar y exudación de goma a lo largo de las partes verdes del tallo. 2. Tome la parte del tallo más leñosa (madura) y córtela, este-rilizando las herramientas entre cada corte con una solución comercial de formol al 5 por ciento. 3. Siembre este material en cámaras de propagación aisladas. evitando el riesgo por aspersión. Después de la brotación, se-leccione solamente aquellos retoños sanos. Estos deben cor-tarse antes de 20 días después de la siembra de las estacas, debido a que la bacteriosis puede infestar sistemáticamente los retoños jóvenes provenientes de estaquitas con la enfer-medad. 4. Observe el enraizamiento de los retoños diariamente, elimi-nando cualquiera que aparezca infectado con CBB. Después de cortarlos, queme la estaquita inicial y esterilice completa-mente la cámara de propagación con un esterilizante de sue-lo (bromuro de metilo, formol, etc.) antes de volver a sem-brar. ~¡¡~ plántu!¡¡G olJrenidilB por eBte método conBtituyen I~ Bemi-lla básica libre de CBB y se deben sembrar en un campo alslado, libre de esta enfermedad, o donde no se haya cultJva~o yuca or lo menos durante seis meses. Las plantas. obtemdas ~on p d t' 1 limpio el cual se puede utihzar a los seis o f\.\entes e ma ena, . ón diez meses de sembraÁn ~DYM m~~Ü~ Qe ~tov~aC1 I 1\ ' UI ¡na""" ""re ~. Generalme.n e ~6 ~taminación si no se toman 9.l Ul<","''''-GTIfi p¡¡.ra evitar la co nes necesarias. • Si un cultivo está infectado con CBB, el material limpio no se debe sembrar inmediatamente. La eliminación de CBB en el suelo es posible, dejándolo en barbecho, haciendo rotación de cultivos o liberando la tierra de yuca durante seis meses por lo menos. Todos los residuos de yuca infectados se deben quemar. Se recomienda que haya una buena separación entre cultivos in· fectados y libres de la enfermedad, debido al peligro de canta· minación por lluvia llevada por el viento, salpicaduras de suelo, insectos, agua de irrigación o de drenajes y cualquier otro medio mecánico o accidental de diseminación de CBB. 12 --=  • -• ..... I " = !!!!! ------=--D5-S fE-S ES-7 EE-8 ES-9 [E-14 [,E-15 EE-17 FS-1 HE-26 OTRAS PUBLICACIONES DEL CIAT SOBRIo YUCA Enfermedades de la yuca (Manillat esculenta Crantl). J. Carlos Lozano y R. H. 800th. 1974. Casts and Uf>e of inputs in cassava production in Colombia: a bricf descrip-tion. Rafael O. Días. Per Pinstrup-Andersen and RubénDarÍo Estrada. 1975. La yuca en alimentación de cerdos. Anális económico de dos experimen-tos. Néstor Gutiérrez. 1974. Cassava bacterial blight (CHB). J. Carlos Lozano. 1975. Tendencias de la producción mundial y rendimiento de la yuca. 1960-1968. (Availablc in English). Rafael O. oíaz. 1972. A guide for cassava fietd trails R.L Thompson and D.W. Wholey. 1972. Cassava in s\Vine feeding. Jerome H. Maner. 1972 Cassava storage. R. H. Booth. 1975. Programa de si~temas de producción de yuca. 1974. 2.000 abstracts on cassava (Manillat esculenta Crantz). v.1. 1975. PUBLICACIONES RECIENTES DEL CIID QlOe Chronic cassava toxicity: proceedings of an ioterdisciplinary workshop. London, England 29-30 J anuary 1973. Barry Nestetand Reginald MacIntyre. cd_ 1973. 020e Cassava utilization aod potcntial markets. Trumao P. Phillips. 1974. 031e C'..assava processing aod storage: procccdings of an interdisciptinary work-shop. Pattaya. Thailand. 17-19 April 1974. E.V. Araullo, Barry Nestel and Marilyn Campbell, ed. 1974. 036e Current trends in cassava research. Barry Nestel. 1974. 04ge Thc international cxchange and tcsting of cassava genn pla.,>m: procccd-ings of an intcrdisciplinary workshop held at eIAT, Palmira, Colom-bia. 4-6 February 1975. Barry Nestel aod Reginald MacIntyre, ed. 1975. 13 

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