BRENTANO, L.

COLDEBELLA, A.

ESTEVES, P. A.

GRITTI, D.

JAENISCH, F. R. F.

PALUDO, E.

ROSS, D.

SILVA, V. S.

TREVISOL, I. M.

Portuguese

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CAPÍTULO 11 Caracterização do genoma e teste de proteção vacinal para amostras do vírus da bronquite infecciosa das aves associadas a surtos “atípicos” da doençaIara Maria TrevisolFátima Regina Ferreira JaenischVirginia Santiago SilvaLiana BrentanoArlei ColdebellaEdiane PaludoDiane GrittiDaine RossPaulo Augusto EstevesIntroduçãoA bronquite infecciosa das aves (BI) é uma doença viral respiratória aguda, disseminada no mundo todo. É uma doença altamente contagio-sa, com sinais clínicos como: espirros, ronqueira e estertores traqueais. Os sintomas diminuem o desempenho das aves, com perda de peso e refugagem. As complicações com infecções bacterianas secundárias causam grandes perdas econômicas por condenações de carcaças devido, principalmente, a aerossaculite (CAVANAGH; NAQI, 2003). O vírus da bronquite infecciosa das aves (VBI) replica no oviduto, causan-do perdas de 10 a 50% na produção de ovos, alterações da qualidade da casca e consequente deformações nos ovos, sendo que, frequente-mente, a produção não retorna aos níveis normais (CAVANAGH; NAQI, 2003). Algumas amostras são altamente nefropatogênicas, podendo causar mortalidade de até 30% em aves jovens. A natureza altamente transmissível da doença e a ocorrência de múltiplos sorotipos do vírus têm complicado os resultados da vacinação e aumentado os custos de prevenção da doença com imunização. A capacidade do VBI de incor-porar frequentes mutações e recombinações em seu genoma resultam considerado variante ou clássico). No entanto, segundo Cavanagh et al. (1992), há evidências de uma considerável proteção cruzada mes-mo entre diferentes sorotipos, uma vez que as alterações nem sempre de falhas vacinais, os testes de proteção vacinal in vivo tornam-se tão ou mais relevantes do que apenas a caracterização sorológica ou molecular do vírus (COOK, 1997). Em 1991, na Inglaterra, em galinhas em produção vacinadas, começou a ser relatado a presença de sinais de bronquite infecciosa com características incomuns. Tais surtos foram associados a um novo tipo de vírus, completamente diferente das amostras de VBI descritas até então. O novo vírus foi denominado 793B (GOUGH et al., 1992) e amostra 4/91 (PARSONS et al., 1992). A doença relatada apresentava mortalidade elevada e uma miopatia do músculo peitoral profundo (GOUGH et al., 1992, citado por COOK et 167Caracterização do genoma e teste de proteção vacinal para amostras do vírus...al., 1996). No Brasil, a partir de 2003, surtos “atípicos” de bronquite associados com a apresentação de um novo tipo de lesão, caracteriza-da por degeneração e necrose da musculatura peitoral, também foram observados (BRENTANO et al, 2005). Nestes casos, o vírus da BI foi isolado em ovos embrionados tendo seu genoma detectado pelo teste de Reação em Cadeia da Polimerase posterior à Transcrição Reversa da região-alvo do genoma viral (RT-PCR). Ao executar-se experimentos foi possível reproduzir doença respiratória e renal, tanto com lesões macroscópicas como microscópicas, mas não foi possível reproduzir as lesões de miopatia. Os autores concluíram, então, pela necessidade de novos testes. Em 2005, três isolados brasileiros de VBI envolvidos com casos de lesões respiratórias, renais, alterações na quantidade e qualidade dos ovos e miopatia, previamente isolados, foram submetidos a PCR da sub-unidade 1 da proteína Spike (S1) e, posteriormente, sequenciados -lesões de miopatia observadas. Uma dessas amostras foi utilizada para (TREVISOL et al., 2006). Os resultados demonstraram redução dos sinais clínicos, mas não da ciliostase, e alta taxa de recuperação viral quando comparou-se grupo vacinado e agredido com o grupo somente possibilidade de rever programas vacinais, bem como o sorotipo vaci-nal, é questionada, mas não respondida. Mesmo com o uso de vacinação, o controle da BI nunca foi, conforme relatos de campo, plenamente satisfatório, sendo, porém, importante lembrar que não existem dados de prevalência nacional atualizados (ITO destas amostras que se apresentam atualmente envolvidas com miopa-168 Relatório de Projetos Concluídos 2011tia e determinar o grau de proteção conferido pela amostra vacinal Mas-sachusetts frente às amostras isoladas no Brasil para melhor caracteri-zar tais variantes presentes no território nacional, gerando informações mais concretas sobre este novo sorotipo denominado VBI 4/91.ObjetivosIsolar amostras do vírus da bronquite infecciosa das aves envolvidas em casos de miopatia, tanto em frangos de corte quanto em reprodutores (matrizes); Caracterizar o genoma do vírus da bronquite infecciosa das aves envolvi-das em casos de miopatia; Realizar um levantamento da ocorrência de variantes do vírus da bronqui-te infecciosa das aves associadas a surtos “atípicos” da doença;vírus da bronquite infecciosa das aves associada a lesões musculares;  Investigar a associação de lesões na musculatura das aves a variantes do vírus da bronquite infecciosa.Material e Métodos Durante o período de vigência do projeto, de 2007 a 2010, foram isoladas e recuperadas amostras do vírus da bronquite infecciosa das galinhas de casos de bronquite clássica (problemas respiratórios) e de casos “atípicos”, como presença de lesões na musculatura peitoral. Para isso, porções de pulmões/traqueias (amostra respiratória) e múscu-los foram submetidas à inoculação em embriões de aves SPF. As amos-tras que apresentaram lesões sugestivas da presença do VBI (Figura 1) foram submetidas à técnica molecular de RT-PCR, em que um fragmen-3130 Life Technologies). Após, as sequências obtidas foram processa-das e analisadas in sílico com o auxílio dos seguintes softwares: Vector NTI 11; BLAST; BioEdit 7.0 e MEGA 5.169Caracterização do genoma e teste de proteção vacinal para amostras do vírus...Fotos: Iara M.Trevisol/EmbrapaFigura 1. A) Inoculação em ovos embrionados, B) Embrião normal 6 dias pós inoculação; e C) Embriões seis dias pós inoculação apresentando enrolamento, nanismo e hemorragiaFigura 2. RT-PCR dos LCA colhidos da p6 em embriões de galinhas SPF:1)Mar-p6 amB; 5)LCA p6 amC; 6)LCA p6 amD; 7) LCA contr (-)in vivo: a amostra BIBR8471 recuperada de matrizes com sinais respiratórios e renais, além de lesões no músculo peitoral, e a amostra BIBR010, isolada de matrizes com sinais respirató-rios, taxa de mortalidade elevada e lesões de músculo. Tanto a vacina obtermos uma dose aproximada de 103,5DIE50/ave. A amostra M41 foi receberam duas doses de vacina via ocular aos 14 e 21 dias de idade e    1      2      3     4      5      6      7  1046pb A B CFoto: Paulo A. Esteves/Embrapa170 Relatório de Projetos Concluídos 2011do percentual de alterações ciliares das traqueias. Nesse mesmo dia fo-ram colhidas porções de traqueias em formol 10% e processados para posterior exame microscópico. As aves foram submetidas aos seguintes tratamentos:Grupos Tratamento1 Controle negativo (NV/ND)2 Controle da vacinação (V/ND)3 Patogenicidade amostra variante BIBR8471 (NV/D am.BIBR8471)4 Resposta ao vírus variante BIBR8471 (V/D am.BIBR8471)5 Patogenicidade amostra variante BIBR010 (NV/D am. BIBR010)6 Resposta ao vírus variante BIBR010 (V/D am. BIBR010)78 Controle resposta a amostra homóloga (M41) (V/D am. M41)Para os testes in vivo, aves SPF foram aleatoriamente divididas em positiva (Figura 3).  Figura 3. Cabines isoladoras – estrutura da Embrapa Suínos e Aves para testes in vivoFotos: Iara M. Trevisol/Embrapa171Caracterização do genoma e teste de proteção vacinal para amostras do vírus...Resultados e discussãoCinco amostras de vírus foram recuperadas de casos clássicos de bron-quite e 11 de casos “atípicos” da enfermidade. Dos casos em que havia lesões musculares envolvida, cinco amostras de tecido muscular foram estudas. Em nenhuma delas foi possível isolar vírus ou fazer sua identi-Das 16 amostras virais isoladas, 11 foram caracterizadas pela -ma a existência de amostras variantes e amostras clássicas envolvidas em surtos clínicos de BIG no Brasil e colabora com outros autores que citam a grande diversidade genética das amostras brasileiras (ABREU et al., 2006; VILLARREAL, 2007; MONTASSIER, 2008). BIBR010, frente à vacina H120, foi primeiramente calculado o per-centual de aves com ciliostase (Tabela 1). O inverso do percentual de ciliostase foi considerado como percentual de proteção (Tabela 2).Tabela 1.Grupos Tratamentos % de ciliostase1 NV/ND 18,02 V/ND 9,03 NV/D am. BIBR8471 91,04 V/D am. BIBR8471 9,05 NV/D am. BIBR010 37,56 V/D am. BIBR010 0,07 NV/D am. M41 100,08 V/D am. M41 18,0172 Relatório de Projetos Concluídos 2011Tabela 2. Percentual de proteção da vacina H120 frente a amostra de referên-cia para estudos de bronquite e duas amostras de campo.Tratamentos % de proteçãoV/D am. BIBR8471 91,00V/D am. BIBR010 100,0V/D am. M41 82,0-ce de lesão nos cílios traqueiais (100% de alteração nos batimentos ciliares), bem como da amostra “variante” BIBR8471. Já a amostra ciliares inferiores à amostra de referência e a “variante” BIBR8471. Isso pode ser interpretado como uma baixa patogenicidade da amostra BIBR010 para o trato respiratório das aves. Por outro lado, a amostra BIBR8471 mostrou-se altamente patogênica (91% de alteração nos batimentos ciliares) e, mesmo assim, o percentual de proteção de 82% -vas que exige no mínimo 90% de proteção (AVIAN..., 2008). Os resul-tados obtidos até o momento evidenciam que duas amostras variantes genotipicamente pertencem a um mesmo protectotipo ou imunotipo.A análise microscópica das traqueias das aves inoculadas corroborou com as avaliações de virulência e patogenia do processo infeccioso. Os achados microscópicos mais evidentes foram: descamação do epitélio, -clear e heterofílico, nas camadas mucosa e submucosa (Figura 5). As -vas para a mostra BIBR010.173Caracterização do genoma e teste de proteção vacinal para amostras do vírus... Figura 4. Corte histológico de traqueia de frango, (H&E, 40X). A) Mucosa traqueal, sem alterações: camada epitelial com cílios, glândulas mucoides evi-dentes; B) Mucosa traqueal, apresentando descamação do epitélio, perda dos Conclui-se que, embora as amostras BIBR8471 e BIBR010 tenham 103,5DIE50/ave de vacina H120 comercial (amostra tipo Massachusetts) foram capazes de induzir proteção para ambas. Entretanto a amostra BIBR8471 apresentou-se como uma amostra “variante” altamente pato-gênica, enquanto a BIBR010 foi de baixa virulência.amostras em imunotipos (protectotipos) para a tomada de decisão e elaboração de estratégias de controle dessa enfermidade. Conhecer a capacidade de proteção da vacina viva disponível é de fundamental importância no controle dessa enfermidade, uma vez que esse conheci-de novas amostras vacinais vivas no país.Fotos: Fátima R.F. Jaenisch/EmbrapaA B174 Relatório de Projetos Concluídos 2011AgradecimentosAo excelente trabalho de nossas equipes de apoio técnico:virologia das aves: Tânia Alvina Potter Klein e Magda Regina Mulinari; histopatologia: Salete de Oliveira e Francieli Ianiski; isolamento e necropsia: Altair Althaus e Dejalmo da Silva; preparo de materiais: Gérson Luís Tessmann e Valmor dos Santos; granja SPF aves: Ademar Jair Wunder e Idelsino A. Gonçalves (in memo-rian). ReferênciasABREU, J. T.; RESENDE, J. S.; FLATSCHART, R. B.; FOLGUERAS--FLATSCHART, Á. V.;  MENDES, C. A. R.; MARTINS, N. R. S.; SIL-VA, C. B. A.; FERREIRA, M. C.; RESENDE, M. Molecular analysis of --polymerase chain reaction, restriction fragment length polymorpghism, and partial sequencing of the N Gene. Avian Disease, v. 50, n. 4, p. 494-501, 2006.BRENTANO, L.; KLEIN, T. A. P.; JAENISCH, F. R.; BACK, A.; CAS-TRO, A. G. M. Isolamento do vírus de bronquite infecciosa das aves de surtos da doença associada a lesões “atípicas” de miopatia de múscu-lo peitoral. Brazilian Journal of Poultry Science – Revista Brasileira de Ciência Avícola, sup. 7, p. 232, 2005.BRENTANO, L.; ESTEVES, P. A.; TREVISOL, I. M.; HAYASHI, M. M.; LUCIANO, R. L.; CASTRO, A. G. M.; KLEIN, T. A. P.; MOLINARI, M. Sequenciamneto parcial do gene S1 de vírus da bonquite infecciosa (IBV) isolados de surtos da doença associada a lesões de miopatia pei-toral. Brazilian Journal of Poultry Science – Revista Brasileira de Ciência Avícola, sup. 8, p. 241, 2006.175Caracterização do genoma e teste de proteção vacinal para amostras do vírus...CAVANAGH, D.; DAVIS, P. J.; COOK, J. K. A. Location of the amino serotypes of infectios bronchitis virus. Avian Pathology. v. 21, p. 33-43, 1992.CAVANAGH, D.; NAQI, S.A. Infectious Bronchitis. In: SAIF, Y. M.; BARNES, H. J.; GLISSON, J. R.; FADLY, A. M.; MC DOUGALD, L. R.; SWAYNE, D. E. (Ed.). 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Caracterização do genoma e teste de proteção vacinal para amostras do vírus da bronquite infecciosa das aves associadas a surtos ?atípicos?? da doença.

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