ANDRADE NETO, R. de C.

ARAÚJO NETO, S. E. de

CUSTÓDIO, R. A.

FERMINO JUNIOR, P. C. P.

SILVA. I. F. da

O objetivo deste trabalho foi avaliar a variação morfoanatomica de abacaxizeiro cultivado sob sombreamento natural de mandioca em diferentes densidades de plantio

Repository Open Access to Scientific Information from Embrapa

  1 Eng. Agr. M.Sc. Produção Vegetal pela Universidade Federal do Acre, e-mail:robertocustodio@hotmail.com 2Eng. Agr. Dr. Fitotecnia, Prof. Universidade Federal do Acre - UFAC – AC, e-mail:selviro2000@yahoo.com.br 3Biólogo. D. Sc. Prof. Universidade Federal do Acre, UFAC - AC, e-mail:paulobio@hotmail.com 4 Eng. Agr. Dr. Fitotecnia, Pesquisador da Embrapa Acre. e-mail:romeu.andrade@embrapa.br 5 Eng. Agr. M.Sc. Produção Vegetal pela Universidade Federal do Acre, e-mail:daireneagro@hotmail.com  1 MORFOANATOMICA FOLIAR DE ABACAXIZEIRO CULTIVADO SOB 1 SOMBREAMENTO NATURAL DE MANDIOCA 2 ROBERTO APARECIDO CUSTÓDIO1; SEBASTIÃO ELVIRO DE ARAÚJO NETO2;  3 PAULO CÉSAR POETA FERMINO JUNIOR3; ROMEU CARVALHO DE ANDRADE NETO4 4 IRENE FERRO DA SILVA5 5  6 INTRODUÇÃO 7 O cultivo do abacaxizeiro em regiões tropicais com alta irradiação solar causa queima do 8 fruto ou escaldadura. Tal anomalia e causada pela irradiação solar direta nos tecidos de 9 revestimento do fruto, mais sensível durante a sua maturação e pode causar perdas de até 70% na 10 produção, a depender da época de colheita (CUNHA; HAROLDO, 2008). Este dano é considerado 11 pelo Sistema Nacional de Classificação Vegetal/MAPA, como um defeito grave. 12 Uma das alternativas para o cultivo do abacaxizeiro é o sombreamento das plantas.   13 Mudanças nos níveis de luminosidade a que as espécies vegetais são submetidas podem acarretar 14 diferentes respostas nas características anatômicas, fisiológicas, bioquímicas e de crescimento das 15 plantas, permitindo maior eficiência fotossintética (KIM et al., 2005). 16 Em condições de exposição a pleno sol as folhas tornam-se mais espessas e melhoram sua 17 eficiência na dissipação do excesso da radiação (MARKESTEIJN et al., 2007). Os estômatos 18 exercem um controle significativo sobre a fotossíntese e a temperatura da folha, através da variação 19 na densidade e nas dimensões, permitindo variações nas trocas de gases e na transpiracão (AL 20 AFAS et al., 2006; HETHERING; WOODWARD, 2003). 21 O objetivo deste trabalho foi avaliar a variação morfoanatomica de abacaxizeiro cultivado 22 sob sombreamento natural de mandioca em diferentes densidades de plantio. 23  24 MATERIAL E MÉTODOS 25 O cultivo do abacaxizeiro (Ananas cosmosus L.) consorciado com mandioca (Manihot 26 esculenta) foi realizado no Sítio Ecológico Seridó, localizado na Rodovia AC-10, km 04, em Rio 27 Branco (AC), situado a 09°53’10,6”S e 67°49’08,6”W com altitude média de 170 m, no período de 28 março de 2011 a novembro de 2012. O solo é classificado como ARGISSOLO AMARELO Alítico 29 Plíntico, sem erosão aparente, de drenagem moderada. 30  31   2  O clima, segundo a classificação de Köppen, é do tipo Am. Os teores de nutrientes na 32 camada de 0-20 cm de profundidade são: pH (H2O)= 5,1; P= 2 mg dm-3; K= 1,8 mmolc dm-3; Ca= 33 19 mmolc dm-3; Mg= 9 mmolc dm-3; Al= 8 e H= 64 mmolc dm-3; matéria orgânica=17 g dm-3; 34 saturação de bases= 29%; Fe= 530 mg dm-3; Cu= 1,6 mg dm-3; Mn= 99 mg dm-3; Zn= 2,6 mg dm-3 35 e B= 0,17 mg dm-3. 36 O abacaxizeiro do grupo Smooth Cayenne, cultivar Rio Branco 1, foi plantado em março 37 de 2011, após aração e gradagem do solo, em linhas triplas na forma de triângulo isósceles de 0,80 38 x 0,25 x 0,25 m (15.000 plantas ha-1). A mandioca consorciada foi do cultivar BRS Caipora,  39 plantada na primeira semana de setembro de 2011, em linhas duplas paralelas ao abacaxi em 40 parcelas de 2,8 x 4,0 m com densidade variando de acordo com o espaçamento entre plantas na 41 linha em 0,50 m (14.280 plantas ha-1); 0,75 m (9.520 plantas ha-1); 1,0 m (7.140 plantas ha-1); 1,25 42 m (5.712 plantas ha-1) e sem consórcio, cultivo de abacaxi a pleno sol (Testemunha).  43 O delineamento utilizado foi em blocos casualizados, com cinco tratamentos e quatro 44 repetições. Cada repetição foi composta por três linhas triplas de 24 plantas cada, sendo as 18 45 plantas centrais consideradas parcela útil. 46 As análises microscópicas descritivas dos tecidos da lâmina foliar foram efetuadas na 47 região mediana, do terço médio da lâmina foliar da folha “D” de três plantas de cada tratamento, 48 aos 14 meses de idade. As lâminas semipermanentes foram confeccionadas através de secções 49 paradérmicas e transversais à mão livre, com auxílio de lâminas de aço, com gelatina glicerinada 50 em material fresco de folhas. Para a detecção das epidermes foi utilizado o teste histoquímico de 51 Sudam III. As secções foram coradas com Azul de Astra e Safranina.  52 Para as medições das espessuras dos tecidos e dos estômatos, as imagens das secções 53 transversais e paradérmicas, respectivamente, foram projetadas, com auxílio de câmara clara 54 OPTON acoplada ao microscópio de luz Olympus, modelo CH030, sobre o papel e aferida com 55 escala micrométrica, através de lâmina com escala micrométrica Zeiss, de modo a apresentar os 56 resultados em micrômetros. 57 As imagens das lâminas semipermanentes, obtidas a partir de secções transversais da 58 lâmina foliar, foram projetadas em folha de papel, com auxílio de câmara clara acoplada em 59 microscópio de luz. Os contornos de abrangência das células epidérmicas, hipodérmicas e 60 parênquima clorofilado constituintes da lâmina foliar foram delimitados. 61 A densidade estomática foi determinada a partir da contagem do número de estômatos por 62 área em microscópio de luz, através de lâminas temporárias preparadas para observações em vista 63 frontal da superfície epidérmica, que foram confeccionadas utilizando-se películas de esmalte 64 incolor com impressão da face abaxial da folha (BARBOZA et al., 2006). As imagens foram 65   3  projetadas, com auxílio de câmara clara acoplada ao microscópio de luz sobre área delimitada 66 conhecida (200 x 200 µm) e os dados apresentados em número de estômatos por mm2. 67 A determinação das dimensões das células-guarda foi feita considerando o comprimento 68 (eixo longitudinal, entre os dois polos da célula) e largura (eixo transversal, na porção média da 69 célula) e para as dimensões do poro estomático também foi considerado o eixo longitudinal e o 70 transversal, quando em vista frontal da superfície epidérmica. 71  72 RESULTADOS E DISCUSSÃO 73 As folhas de abacaxizeiro são hipoestomáticas, com os estômatos distribuídos em faixas 74 paralelas (BARBOZA et al., 2006). A densidade estomática do abacaxizeiro (estômatos mm-2) 75 apresentou tendência de maiores valores quanto maior a luminosidade (TABELA 1). Este aumento 76 sob altos níveis de luminosidade pode ser atribuído à adaptação da planta para otimizar a troca de 77 gases por longos períodos (SCHLUETER et al., 2003) em função da maior atividade fotossintética. 78 A espessura do mesofilo e espessura total das folhas do abacaxizeiro desenvolvidas em 79 condições de sombreamento natural com mandioca foi significativamente maior que em folhas 80 desenvolvidas a pleno sol. Neste caso, promovido pela expansão da hipoderme aquífera.  81 O parênquima clorofilado não sofreu alteração na espessura para os diferentes níveis de 82 sombreamento e pleno sol. 83  84 TABELA 1 – Comprimento da folha “D” (CFD) Espessura do parênquima clorofilado (PC), hipoderme 85 aquífera (HA), do mesofilo (EMES) e espessura total (ET), espessura da epiderme abaxial 86 (EABA), epiderme adaxial (EADA), comprimento da célula guarda (CCG), largura da 87 célula guarda (LCG), comprimento do poro (CP), largura do poro (LP) e densidade 88 estomática (DE) em folha “D” de abacaxizeiro. Sítio Ecológico Seridó, Rio Branco – Acre, 89 2012. 90  Espaçamento entre mandioca  CV (%) F calculado Estruturas 50 cm 75 cm 100 cm 125 cm Pleno sol PC (µm) 1.206a 1.172a 1.187a 1.199a 1.206a 5,12 0,208ns HA (µm) 803a 848a 866a 867a 570b 6,80 24,580** E.MES (µm) 1.944a 1.999a 2.033a 2.042a 1.748b 5,36 5,365* ET (µm) 1.966a 2.020a 2.054a 2.066a 1.776b 5,29 5,145* E.ABA (mµ) 10,5b 10,5b 9,9b 11,2b 13,3a 8,16 8,114** E.ADA (mµ) 11,1b 10,9b 10,7b 12,6a 14,8a 10,33 7,849** CCG (mµ) 33,54a 32,54a 32,97a 32,57a 34,29a 2,26 3,093ns LCG (mµ) 13,36b 13,05b 13,13b 13,33b 14,29a 2,26 10,333** CP (mµ) 15,78b 15,61b 15,26b 15,62b 16,67a 2,29 4,235* LP (mµ) 1,49b 1,38b 1,54b 1,48b 1,83a 2,90 11,591** DE (nº.mm-2) 92,7b 81,5c 93,1b 108,9a 116,2a 6,57 18.581** n = 120 para cada variável. 91 Médias seguidas de mesma letra, na horizontal, não diferem estatisticamente, ao nível de 5% pelo teste de Scott-Knott 92 (P<0,05). ns =não significativo; (*) significativo a 5% e (**) significativo a 1%. 93   4  A hipoderme aquífera foi maior em plantas submetidas aos diferentes níveis de 94 sombreamento comparada às plantas em pleno sol (TABELA 1), proporcionando maior 95 investimento da planta na captura de luz (ROZENDAAL et al., 2006), aumentando o retro 96 espalhamento da luz difusa em ambiente com baixa radiação (MARKESTEIJN et al., 2007). 97 A espessura da epiderme abaxial e adaxial de folhas de abacaxizeiro desenvolvidas a pleno 98 sol foram maiores que àquelas desenvolvidas sob o sombreamento natural. As folhas de sombra 99 apresentam epiderme menos espessa, indicando uma adaptação estrutural de maior proteção contra 100 a alta radiação solar. Markesteijn et al. (2007), observaram que o maior espessamento da epiderme 101 em folhas de sol minimiza o efeito da radiação. 102  103 CONCLUSÃO 104 O abacaxizeiro cultivado sob o sombreamento natural de mandioca consorciada apresenta 105 plasticidade fenotípica com maior espessamento da folha “D”, menor densidade estomática, menor 106 largura e comprimento do poro estomático, menor largura das células-guarda do estômato, menor 107 espessura das epidermes abaxial e adaxial e menor espessura da hipoderme aquífera. 108  109 REFERÊNCIAS 110 AL AFAS, N.; MARRON, N.;  CEULEMANS, R. Clonal variation in stomatal characteristics 111 related to biomass production of 12 poplar (Populus) clones in a short rotation coppice culture. 112 Environmental and Experimental Botany, Amsterdã, n. 58, p. 279-286, 2006. 113 BARBOZA, S. B. S. C.; GRACIANO-RIBEIRO, D.; TEIXEIRA, J. B. PORTES, T.A.; SOUZA, L. 114 A. C. Anatomia foliar de plantas micropropagadas de abacaxi. Pesquisa Agropecuária Brasileira, 115 Brasília, DF, v. 41, n. 2, p. 185-194, 2006. 116 CUNHA, G. A. P. DA; HAROLDO, D. Cuidados para evitar queima solar no abacaxi. Revista 117 Frutas e derivados, Ano 3, Edição 9, p.17, 2008. 118 HETHERINGTON, A. M.; WOODWARD, F. I. The role of stomata in sensing and driving 119 environmental change. Nature, Lancaster, v. 424, p.901-908, 2003. 120 KIM, G.; YANO, S.; KOZUKA, T.; TSUKAYA, H. Photomorphogenesis of leaves: shade-121 avoidance and differenciation of sun and shade leaves. Photochemetry, Photobiology and 122 Science, Cambridge, v. 4, n. 5, p.770-774, 2005. 123 MARKESTEIJN, L.; POORTER, L.; BONGERS, F. Light-dependent leaf trait variation in 43 124 tropical dry forest tree species. American Journal of Botany. St. Louis v. 94, n. 4, p. 515–525, 2007. 125 ROZENDAAL, D. M. A.; HURTADO, V. H.; POORTER, L. Plasticity in leaf traits of 38 tropical 126 tree species in response to light; relationships with light demand and adult stature. Functional 127 Ecology, London, v. 20, n. 2, p. 207-216, 2006. 128 SCHLUETER, U.; MUSCHAK, M.; BERGER, D.; ALTMANN, T. Photosynthetic performance of 129 an Arabidopsis mutant with elevated stomatal density (sdd1-1) under different light regimes. 130 Journal of Experimental Botany, Oxford, v. 54, n. 383, p. 867-874, 2003. 131 

Morfoanatomica foliar de abacaxizeiro cultivado sob sombreamento natural de mandioca.

http://www.alice.cnptia.embrapa.br/alice/bitstream/doc/999744/1/25271.pdf

Morfoanatomica foliar de abacaxizeiro cultivado sob sombreamento natural de mandioca.

Abstract

Similar works

Full text

Available Versions

Repository Open Access to Scientific Information from Embrapa