ARAUJO, A. G. de

LEDO, A. da S.

QUIRINO, Z. B. de R.

RIBEIRO, M. M. J.

VILANOVA NETA, J. L.

RCAAP - Repositório Científico de Acesso Aberto de Portugal

Produção de mudas de abacaxizeiro Pérola utilizando a técnica do estiolamento in vitro.

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61Produção de Mudas de Abacaxizeiro ‘Pérola’ Utilizando a Técnica do Estiolamento In Vitro1 Engenheira-agrônoma, Doutora em Fitotecnia, pesquisadora da Empresa de Desenvolvimento Agropecuário de Sergipe (Emdagro), Aracaju, SE, agaraujo2003@hotmail.com.2 Engenheira-florestal, bolsista da Empresa de Desenvolvimento Agropecuário de Sergipe (Emda-gro), Aracaju, SE, milenarjm@gmail.com.3 Engenheira-agrônoma, mestre em Agroecossistemas, Aracaju, SE, zilna_br@hotmail.com.4 Engenheira-agrônoma, doutora em Fitotecnia, pesquisadora da Embrapa Tabuleiros Costeiros, Aracaju, SE, ana.ledo@embrapa.br.5 Mestranda, Universidade Tiradentes (UNIT), Aracaju, SE, jaci_vilanova@yahoo.com.br.Aparecida Gomes de Araujo¹, Milena M. de J. Ribeiro2, Zilna B. de R. Quirino3, Ana da S. Lédo4, Jaci L. Vilanova-Neta5  ResumoObjetivou-se otimizar a multiplicação do abacaxizeiro por meio do estiolamento in vitro com uso de sacarose e ácido giberélico e regeneração em diferentes consistência de meio de cultura e condições de luz. Rizomas de abacaxizeiro com 1 cm foram transferidos para frascos contendo meio MS semissólido (6 gL-1 de ágar) com os diferentes tratamentos [ácido giberélico (GA3) (0; 2,5; 5,0 e 10,0 mgL-1) x sacarose (15, 30 e 45 gL-1)]. Após estiolados, os brotos foram transferidos para meio MS líquido estacionário e MS semissólido, em condições de sala de crescimento (luz artificial) e casa de vegetação (luz natural), totalizando quatro tratamentos. O método do estiolamento in vitro é viável sendo recomendado o meio MS contendo de 30 a 45 g/L de sacarose para alongamento caulinar e para a regeneração dos segmentos, o meio MS líquido e incubação dos frascos em luz artificial.Palavras-chave: Ananas comosus L., carboidrato, giberelina, multiplicação in vitro.62IntroduçãoA micropropagação é a técnica mais utilizada e demandada para multiplicar diversas espécies vegetais, com aplicações práticas comprovadas (ERIG; SCHUCH, 2005). Em escala comercial, o sucesso dessa tecnologia depende do desenvolvimento de protocolos mais eficientes e de menor custo, bem como da capacidade da planta produzida em superar, sem grandes estresses, a transferência para condições ex vitro. A técnica do estiolamento in vitro (cultivo na ausência de luz) durante a multiplicação permite o alongamento caulinar, podendo seus segmentos nodais serem utilizados na propagação vegetativa (SUZUKI et al. 2004), eliminando a constante necessidade por subcultivos e reduzindo a manipulação, número de frascos envolvidos no processo de cultivo in vitro e o espaço laboratorial. Dessa forma, objetivou-se otimizar a multiplicação do abacaxizeiro por meio do estiolamento in vitro com uso de sacarose, ácido giberélico e regeneração em diferentes tipos de luz e meios de cultivo.Material e MétodosBrotações de abacaxizeiro já estabelecidas in vitro foram desfolhadas completamente, restando apenas a porção basal com 1 cm, que foram transferidos para frascos contendo 30 mL do meio MS semissólido com os diferentes tratamentos os quais foram constituídos por concentrações de ácido giberélico (GA3) (0; 2,5; 5,0 e 10,0 mg L-1) em combinação com sacarose (15, 30 e 45 g L-1). O meio foi solidificado com ágar (6 g L-1) e teve seu pH ajustado para 5,7 ± 0,1, antes da autoclavagem a 121ºC, pressão de 1,1 atm por 20 minutos e, em seguida as culturas foram incubadas no escuro a 25 ± 2ºC, por dois meses. Após esse período, as plântulas foram avaliadas por meio do número de brotos, número de nós, número de raízes e comprimento da parte aérea. O experimento foi instalado em um delineamento inteiramente casualizado (DIC), em esquema fatorial 4x3, num total de 12 tratamentos com seis repetições composta por três explantes cada uma. Após as avaliações, os brotos estiolados foram submetidos à regeneração. Para isso, o sistema radicular dos brotos 63estiolados foi removido e os segmentos caulinares colocados horizontalmente em frascos contendo 20 mL de meio MS líquido estacionário e MS semissólido (6 g/L de ágar), em condições de sala de crescimento (luz artificial) e casa de vegetação (luz natural), totalizando quatro tratamentos. Foi utilizado o delineamento inteiramente casualizado (DIC) e cada repetição constitui-se de um frasco contendo cinco segmentos caulinares estiolados e cada um contendo duas gemas. Aos 60 dias, foi avaliado o número de brotos regenerados a partir de cada segmento estiolado. Os dados de todos os experimentos foram submetidos à análise e as médias comparadas pelo teste de Tukey, do programa Sisvar, a 5% de probabilidade ou realizado regressão polinomial.Resultados e DiscussãoApós 60 dias de incubação, o número de brotos, bem como o número de raízes, tiveram influência da concentração de sacarose utilizada, sendo 45 g/L eficaz na obtenção de maior número de brotos (3,28) e a de 15 g/L responsável pelo maior número de raízes (1,3), conforme Figuras 1A e 1B. Altas concentrações de sacarose no meio podem aumentar a taxa de contaminação, a qual interferirá negativamente na sobrevivência e no desenvolvimento das plântulas durante a aclimatização (SOUZA et al. 2007). Apesar de o número de nós ter sido significativo para o fator ácido giberélico, a ausência do regulador de crescimento favoreceu a emissão dos mesmos (5,28), conforme Figura 1C. Concentrações crescentes do fitorregulador reduziram o número de nós emitidos de forma linear. Os dados obtidos corroboram com os de Moreira et al., (2003). 64O número de brotos regenerados por número de nós bem como o número de brotos total apresentaram significância para os tratamentos testados.Melhores resultados de regeneração in vitro de brotos da cv. Pérola foram obtidos em meio de cultura MS líquido e em frascos mantidos em luz artificial ou sala de crescimento (Tabela 1). Nota-se que com o uso do meio líquido apresentou melhores resultados em comparação ao meio sólido, independente do ambiente. Os brotos obtidos em meio sólido, independente do ambiente de cultivo, se apresentavam amarelados e com menores comprimento. A BCFigura 1. Número de brotos (A) e Número de raízes (B) de brotos estiolados e cultivados em diferentes concentrações de sacarose; e Número de nós (C) oriundos de segmentos estiolados de abacaxizeiro cv. Pérola cultivados em diferentes concentrações de ácido giberélico (GA3).65ConclusõesO método do estiolamento in vitro é viável para abacaxizeiro ‘Pérola’, sendo recomendado o meio MS contendo de 30 a 45 g/L de sacarose para alongamento caulinar e para a regeneração dos segmentos, o meio MS líquido e incubação dos frascos em luz artificial (sala de crescimento).AgradecimentosAo CNPq, à Fapitec-SE, ao Sergipetec e à Embrapa Tabuleiros Costeiros.Referências BibliográficasERIG, A.C.; SCHUCH, M.W. Micropropagação fotoautotrófica e uso da luz natural. Revista Ciência Rural, Santa Maria, v.35, n.4, p. 961-965, jul-ago. 2005.Tabela 1. Número de brotos regenerados por nó (NBR/nó) e número de brotos regenerados por frasco (NBR/frasco) a partir de segmentos estiolados e cultivados em diferentes ambientes e consistência de meios de cultura.Tratamento NBR/nó NBR/frascoLuz artificial e meio líquido 4,42 a 18,00 aLuz artificial e meio sólido 1,09 b 5,33 bLuz natural e meio líquido 1,52 ab 8,00 bLuz natural e meio sólido 1,02 b 4,67 bDados seguidos de mesma letra na coluna não diferem entre si estatisticamente ao nível de 5% de significância pelo teste Tukey.66MOREIRA, M.A.; PASQUAL, M.; CARVALHO, J.G.; FRÁGUAS, C.B. Estiolamento na micropropagação do abacaxizeiro cv. Pérola. Ciência e Agrotecnologia, Lavras, v.27, p. 1002-1006, set-out. 2003.SOUZA, G.C.; CLEMENTE, P.L.; ISAAC, V.L.R.; FARIA, S.P.; CAMPOS, M.R.C. Contaminação microbiana na propagação in vitro de Cattleya walkeriana e Schomburgkia crispa. Revista Brasileira de Biociências, Porto Alegre, v.5, p.405-407, jul. 2007.SUZUKI, R.M.; KERBAUY, G.B.; ZAFFARI, G.R. Endogenous hormonal levels and growth of dark-incubated shoots of Catasetum fimbriatum. Journal of Plant Physiology, Stuttgart, v.161, p.929-935, aug. 2004.

http://www.alice.cnptia.embrapa.br/alice/bitstream/doc/936507/1/Abacaxi.pdf

Produção de mudas de abacaxizeiro Pérola utilizando a técnica do estiolamento in vitro.

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