Fil: Nitiu, Daniela Silvana. Cátedra de Palinología. Facultad de Ciencias Naturales y Museo. Universidad Nacional de La Plata; ArgentinaFil: Mallo, Andrea Cecilia. Cátedra de Palinología. Facultad de Ciencias Naturales y Museo. Universidad Nacional de La Plata; ArgentinaFil: Elíades, Lorena Alejandra. División Instituto Spegazzini. Facultad de Ciencias Naturales y Museo. Universidad Nacional de La Plata; ArgentinaFil: San Martín, Cintia. Cátedra de Palinología. Facultad de Ciencias Naturales y Museo. Universidad Nacional de La Plata; ArgentinaFil: Saparrat, Mario Carlos Nazareno. División Instituto Spegazzini. Facultad de Ciencias Naturales y Museo. Universidad Nacional de La Plata; Argentin

Elíades, Lorena Alejandra

Mallo, Andrea Cecilia

Nitiu, Daniela Silvana

San Martín, Cintia

Saparrat, Mario Carlos Nazareno

La contaminación aeromicrobiológica impacta negativamente en las colecciones que se custodian en los museos afectando la conservación de los ejemplares, soportes, la calidad del aire y la salud del personal y los visitantes. La mayor parte de las colecciones que se preservan y/o exhiben en los museos son de naturaleza orgánica, caracterizándose incluso por su alta capacidad de retención de agua. Ello implica un significativo incremento del contenido de humedad en el material y su soporte, especialmente cuando los objetos están sometidos a una ventilación insuficiente y a una humedad relativa superior al 65%. Bajo estas condiciones y en presencia de agentes causantes de biodeterioro como bacterias y hongos, numerosos materiales están expuestos al desarrollo de microorganismos que pueden contribuir a la pérdida irreparable de piezas históricas. En coordinación con la Unidad de Conservación y Exhibición del Museo de La Plata y en función de la importancia de las colecciones custodiadas en esa Institución, y el riesgo potencial al que se hallan expuestas, se propuso realizar estudios enfocados en la identificación y cuantificación de esporas fúngicas en el aire de dos recintos: 1- Herbario de la División de Plantas Vasculares y 2- depósito de restos humanos momificados “Ex Aula Ameghino”. Se utilizó un modelo de estudio que combina una metodología volumétrica tipo Hirst con una técnica adaptada para el cultivo de muestras. Para la toma de muestras no viables se empleó una bomba aspirante Z-lite IAQ Pump® conectada a un cassette para la captura de partículas, que se expuso a la toma de aire durante 5 minutos a un flujo de 15 l/min. El cassette fue procesado según Baxter (2006) y las muestras observadas al MO para la identificación y cuantificación de los propágulos fúngicos con bibliografía especializada. Para el análisis de las muestras viables, se reemplazó el cassette por un portafiltro Millipore con filtros GE Osmonics de 0.45 μm. El portafiltros fue conectado a la bomba mencionada y los filtros sometidos a la toma de aire durante el mismo tiempo y flujo citado previamente. Una vez obtenida la muestra, los filtros fueron lavados en agua bidestilada y alícuotas de la suspensión obtenida fueron sembradas sobre medio de cultivo conteniendo 2% (w/v) Corn Meal Agar (CMA) adicionado con glucosa (2 g l-1), cloramfenicol (50 mg l-1) y estreptomicina (100 mg l-1) y se realizó el recuento y determinación de unidades formadoras de colonia. Utilizando ambos sistemas de captura se identificaron 17 tipos fúngicos cuyos representantes más significativos pertenecen a Ascomycota con el 65 % de esporas asexuales y el 17% de ascosporas. Le sigue en importancia la división Basidiomycota con el 12% y Mycetozoa con 6 % de representación.

Con relación a los tipos esporales encontrados, Aspergillus/Penicillium, Alternaria, Rhodotorula y Epicoccum caracterizaron ambos sitios de estudio, siendo el primero el que registró mayor frecuencia. Analizando la eficiencia de las dos metodologías de muestreo se encontró un espectro diferencial según el tipo de sitio estudiado.El sistema no viable aporta información acerca de la presencia de esporas inactivas o en estado de dormancia así como del particulado inerte en el aire el cual tiene relevancia a nivel alergénico. Por otra parte, el sistema de cultivo in vitro permite la precisa identificación de la carga fúngica y su vitalidad.

Los resultados obtenidos en este estudio sugieren que ambas metodologías resultan complementarias para el adecuado diagnóstico del contenido aeromicológico en ambientes interiores siendo relevantes para la conservación del patrimonio del Museo de La Plata.Tópico 5: Conservación y restauración de bienes muebles y piezas (documentos de archivos, pinturas, cueros, maderas, textiles, metales, rocas ornamentales, vitrales, etc.)

Nitiu, Daniela S.

Elíades, Lorena

Saparrat, Mario

Centro de Servicios en Gestión de Información

382       ESTRATEGIAS METODOLÓGICAS PARA EL MONITOREO AEROMICOLÓGICO EN EL MUSEO DE LA PLATA  Nitiu Daniela S. a,b;  Mallo Andrea C.a,c; Elíades Lorena A.b,d,; San Martín Cintiaa & Saparrat Mario N.C,b,d,e,f.  aCátedra de Palinología. Facultad de Ciencias Naturales y Museo, UNLP; b CONICET; cCIC PBA; dInstituto de Botánica Carlos Spegazzini, FCNy M;  UNLP,e Instituto de Fisiología Vegetal, UNLP-CCT; f Cátedra de Microbiología Agrícola. FCAyF. UNLP. 64 Nº 3, 1900 La Plata.  danielanitiu@yahoo.com.ar    Palabras clave: esporas fúngicas, calidad ambiental, colecciones biológicas, Museo de La Plata.       RESUMEN     La contaminación aeromicrobiológica impacta negativamente en las colecciones que se custodian en los museos afectando la conservación de los ejemplares, soportes, la calidad del aire y la salud del personal y los visitantes. La mayor parte de las colecciones que se preservan y/o exhiben en los museos son de naturaleza orgánica, caracterizándose incluso por su alta capacidad de retención de agua. Ello implica un significativo incremento del contenido de humedad en el material y su soporte, especialmente cuando los objetos están sometidos a una ventilación insuficiente y a una humedad relativa superior al 65%. Bajo estas condiciones y en presencia de agentes causantes de biodeterioro como bacterias y hongos, numerosos materiales están expuestos al desarrollo de microorganismos que pueden contribuir a la pérdida irreparable de piezas históricas. En coordinación con la Unidad de Conservación y Exhibición del Museo de La Plata y en función de la importancia de las colecciones custodiadas en esa Institución, y el riesgo potencial al que se hallan expuestas, se propuso realizar estudios enfocados en la identificación y cuantificación de esporas fúngicas en el aire de dos recintos: 1- Herbario de la División de Plantas Vasculares y 2- depósito de restos humanos momificados “Ex Aula Ameghino”. Se utilizó un modelo de estudio que combina una metodología volumétrica tipo Hirst con una técnica adaptada para el cultivo de muestras. Para la toma de muestras no viables se empleó una bomba aspirante Z-lite IAQ Pump® conectada a un cassette para la captura de partículas, que se expuso a la toma de aire durante 5 minutos a un flujo de 15 l/min. El cassette fue procesado según Baxter (2006) y las muestras observadas al MO para la identificación y cuantificación de los propágulos fúngicos con bibliografía especializada. Para el análisis de las muestras viables, se reemplazó el cassette por un portafiltro Millipore con filtros GE Osmonics de 0.45 µm. El portafiltros fue conectado a la bomba mencionada y los filtros sometidos a la toma de aire durante el mismo tiempo y flujo citado previamente. Una vez obtenida la muestra, los filtros fueron lavados en agua bidestilada y alícuotas de la suspensión obtenida fueron sembradas sobre medio de cultivo conteniendo 2% (w/v) Corn Meal Agar (CMA) adicionado con glucosa (2 g l-1), cloramfenicol (50 mg l-1) y estreptomicina (100 mg l-1) y se realizó el recuento y determinación de unidades formadoras de colonia. Utilizando ambos sistemas de captura se 383  identificaron 17 tipos fúngicos cuyos representantes más significativos pertenecen a Ascomycota con el 65 % de esporas asexuales y el 17% de ascosporas. Le sigue en importancia la división Basidiomycota con el 12% y Mycetozoa con 6 % de representación.  Con relación a los tipos esporales encontrados, Aspergillus/Penicillium, Alternaria, Rhodotorula y Epicoccum caracterizaron ambos sitios de estudio, siendo el primero el que registró mayor frecuencia. Analizando la eficiencia de las dos metodologías de muestreo se encontró un espectro diferencial según el tipo de sitio estudiado.El sistema no viable aporta información acerca de la presencia de esporas inactivas o en estado de dormancia así como del particulado inerte en el aire el cual tiene relevancia a nivel alergénico. Por otra parte, el sistema de cultivo in vitro permite la precisa identificación de la carga fúngica y su vitalidad. Los resultados obtenidos en este estudio sugieren que ambas metodologías resultan complementarias para el adecuado diagnóstico del contenido aeromicológico en ambientes interiores siendo relevantes para la conservación del patrimonio del Museo de La Plata.     INTRODUCCIÓN    Los estudios de biodeterioro y biodegradación y los procesos que los originan, son fundamentales para la preservación del patrimonio histórico y cultural de un país. El biodeterioro de materiales históricos es un fenómeno multifactorial que abarca alteraciones por acción biológica con efecto perjudicial para los objetos [1]. A ello hay que sumar el impacto estético negativo que produce sobre los bienes afectados. La intensidad del biodeterioro es el resultado de la composición del material, de las condiciones ambientales y de la microbiota involucrada en el proceso.  La mayor parte de las colecciones que se preservan y/o exhiben en los museos son de naturaleza orgánica, caracterizándose incluso por su alta capacidad de retención de agua. Ello implica un significativo incremento del contenido de humedad en el material y su soporte, especialmente cuando los objetos están sometidos a una ventilación insuficiente y a una humedad relativa superior al 65%. Bajo estas condiciones y en presencia de agentes causantes de biodeterioro como bacterias y hongos, numerosos materiales están expuestos al desarrollo de microorganismos que pueden contribuir a la pérdida irreparable de piezas históricas, incluso en un breve período de tiempo [2]. Por lo tanto, es importante tener en cuenta que, sumado al efecto del biodeterioro causado por bacterias y hongos, el manejo de materiales contaminados puede constituir asimismo un serio riesgo para la salud de las personas ya que muchos de estos organismos son patógenos o toxicogénicos [3,4]. El Museo de Ciencias Naturales de La Plata fue originalmente creado como “Museo General de La Plata” el 19 de septiembre de 1884, en base a un proyecto del coleccionista Francisco Pascasio Moreno (1852-1919). Las primeras colecciones provinieron del Museo Antropológico de Buenos Aires con patrimonio donado por el propio Moreno.   En la actualidad, las Colecciones botánicas, entomológicas y de invertebrados, paleontológicas, geológicas, antropológicas, etnográficas y arqueológicas del Museo suman más de 3.000.000 objetos exhibidos en 20 salas y conservados en distintos sectores del edificio. El objetivo de este trabajo fue iniciar procedimientos de monitoreo y diagnóstico de la carga fúngica potencialmente perjudicial presente en el aire interior de los recintos de conservación, tomando como casos de estudio el Herbario de Plantas Vasculares del Museo de La Plata (figura 1A) y el depósito de Antropología “Ex Aula Ameghino” que conserva restos humanos momificados del Noroeste argentino (figura 1B).    384   Figura 1: A: Depósito de las Colecciones Botánicas, Herbario del Museo de Ciencias Naturales de La Plata; B: Depósito de restos momificados (subsuelo Museo de Ciencias Naturales).   MATERIALES Y METODOLOGIA  Sitios de estudio  1. El Herbario de Plantas Vasculares alberga 500 000 ejemplares botánicos, siendo las Compuestas y los Materiales Tipo, las colecciones más importantes del país y de América Latina. Posee una superficie de 350 m2 con diversos espacios de trabajo, incluyendo áreas de investigación y administración y un área exclusiva para la conservación de las colecciones bajo condiciones controladas de temperatura y humedad. El muestreo se realizó el 21 de diciembre de 2011; se analizaron 6 áreas representativas: H1- acceso principal al área de conservación, H2 - pasillo central, H3 - acceso auxiliar, H4 - sala de visita  H5 - recepción, H6 - pasillo exterior.   2. El depósito de restos humanos momificados “Ex Aula Ameghino” contiene piezas de distinto origen del Noroeste argentino que se hallaban originalmente en sala de exhibición y fueron trasladadas posteriormente a su ubicación actual. Dicho recinto posee una superficie de 28 m2 bajo condiciones controladas de temperatura y humedad.  El muestreo se realizó el 12 de noviembre de 2012; se tomaron muestras de aire de: 1- exterior del Aula Ameghino (M1), 2- aire interior del mismo depósito (M2) y de la atmósfera interior de las vitrinas de los siguientes ejemplares: 3 - Interior de la vitrina que contiene materiales asignados a “Serranía de Las Pirguas, Dto. Guachipas Salta. Cadáver de gemelos naturalmente momificados con ajuar funerario. Inv. 50181.” (M3), 4 - Idem “Pampa Grande, Salta: Cadáver momificado naturalmente. S/ Inv.” (M4) y 5- Idem “Pampa Grande, Salta: Cadáver momificado naturalmente. S/ Inv.” (M5).    Técnica de muestreo  El modelo de estudio utilizado (figura 2) combina una metodología volumétrica que emplea una bomba aspirante Z-LiteIAQ Pump ® calibrada a un flujo de 15 litros de aire por minuto, para la captura de partículas que impactan en un cubreobjeto revestido con silicona que se halla contenido en un cassette Air O Cell ®  proporcionando muestras no viables. Dichas muestras fueron expuestas durante 5 minutos, procesadas en laboratorio y observadas al microscopio óptico, se realizó la identificación de esporas mediante atlas especializados [5,6,7,8,9] el  recuento y  la estimación de esporas por metro cúbico de aire se calculó según Baxter 2006 [10].   Para la obtención de las muestras viables, se reemplazó el cassette por un portafiltro Millipore con filtros de 0.45 µm. El portafiltros se conectó a la bomba quedando los filtros expuestos a la toma de aire durante 5 minutos. Una vez obtenidas las muestras, los filtros 385  fueron lavados y agitados (15 minutos a 2000 rpm) y alícuotas de 1 ml de la suspensión obtenida se sembraron en medio de cultivo conteniendo 2% (w/v) Corn Meal Agar (CMA) adicionado con glucosa (2 g l-1), cloramfenicol (50 mg l-1) y estreptomicina (100 mg l-1) para el recuento y determinación de esporas fúngicas asociadas. En el momento de la toma de muestras, se registró la temperatura y humedad en cada recinto utilizando HOBO U14 LCD Datalogger.   Figura  2: Diagrama de flujo de la secuencia de muestreo de aire interior.  RESULTADOS Y DISCUSION  Utilizando ambos sistemas de captura se identificaron 17 tipos morfológicos en ambos sitios cuyos representantes más significativos pertenecen a Ascomycota con el 65 % de esporas asexuales y el 17% de ascosporas. Le sigue en importancia la división Basidiomycota con el 12% y Mycetozoa con 6 % de representación.   Con relación a los tipos esporales encontrados, Aspergillus/Penicillium, Alternaria, Rhodotorula y Epicoccum caracterizaron ambos sitios de estudio, siendo el primero el que registró mayor frecuencia hallándose presente en 4 muestras del Herbario y en todas las muestras del Depósito (tabla 1). Estos resultados han sido corroborados por otros investigadores en estudios de control de bioderioro en el Archivo del Museo de La Plata [11].  En el muestreo del Herbario, se identificaron 12 taxa siendo el pasillo exterior (sector H6), el sitio que presentó mayor la riqueza con 9 tipos esporales. No obstante, en los accesos al recinto de conservación de plantas vasculares (sectores H1 y H2) se registró un adecuado control ambiental posiblemente garantizado por el equipo de aire acondicionado y por el cuidadoso accionar del personal del Herbario tal como lo revelado por el menor número de taxa presentes (3 y 1 respectivamente) en dichas áreas. Adicionalmente, en sectores adyacentes al recinto de colecciones se identificaron esporas de Cladosporium; Penicillium sp y Rhodotorula sp., en niveles no perjudiciales para la salud humana y la preservación de estas colecciones biológicas.  Por otro lado, en las muestras ambientales del depósito del ex Aula Ameghino se detectaron esporas de Alternaria, Aspergillus, Coprinus, Penicillium  y Talaromyces.  La vitrina perteneciente a los infantes gemelos (muestra II) reveló el mayor número de tipos fúngicos (6). Analizando la diversidad de tipos fúngicos se puede decir que en el ex depósito 386  Ameghino es menor que en el Herbario y se halla menos afectado por las condiciones en el exterior.          HERBARIO          DEPOSITO MOMIAS Tipos morfológicos H1 H2 H3 H4 H5 H6 M1 M2 M3 M4 M5 Acremonium x                     Alternaria *   x x     x x x       Arthrinium *           x           Ascospora *       X x             Aspergillus-Penicillium * x   x X   x x x x x x Beauveria *                 x     Cladosporium * x   x X x x x x x     Coprinus *                        Chaetomium *           x x   x     Dreschlera- Bipolaris *         x             Epicoccum *           x x   x     Tipo Leptosphaeria     x   x x           Myxomycota       X   x           Paecilomyces             x x       Rhodotorula *      x     x x   x     Talaromyces                x x   x Torula *                   x    Tabla 1: Morfotipos de esporas fúngicas registrados en cada sitio de muestreo. El signo * corresponde a los tipos esporales citados con propiedades alergénicas.     Analizando la eficiencia de las dos metodologías de muestreo se encontró un espectro diferencial según el tipo de sitio estudiado. El sistema viable permitió la detección de propágulos fúngicos en todos los sitios. Se determinaron a nivel específico los siguientes hongos Aspergillus niger, Epicoccum nigrum y Paecylomyces lilacinus, Penicillium frequentans, P. rubrum y P. thomii, principalmente en la ex Sala Ameghino.   El sistema no viable permitió la detección de esporas fúngicas y de particulado inerte pero presenta limitaciones en cuanto a precisión en la determinación de los taxa ya que la misma se basa solo en características morfológicas de las esporas permitiendo la asignación como máximo a nivel genérico. Sin embargo, este sistema aporta información acerca de la presencia de esporas no viables o en estado de dormancia así como del particulado inerte en el aire el cual tiene mucha relevancia a nivel alergénico [3,12]. En la figura 3 se presentan algunos tipos esporales así como escamas epidérmicas hallados en los muestreos de los distintos sitios. A pesar de que se identificaron diversos taxa fúngicos o tipos morfológicos con ambos métodos es de destacar que en ninguna muestra se hallaron representantes de Stachybotrys, Fusarium, Trichoderma y Aspergillus versicolor [13,14] los cuales son utilizados como agentes indicadores de severos problemas de humedad ambiental y altamente propensos al desarrollo y progreso de biodeterioro en colecciones biológicas. Sin embargo, la presencia de Alternaria, Aspergillus, Cladosporium y Penicillium debe ser 387  considerada por su importancia como factor de riesgo para la salud del personal a cargo de las colecciones [15,16].     Figura 3: Tipos esporales capturados con el sistema no viable en los sitios de muestreo.  A: Tipo Alternaria, B: Tipo Puccinia (uredospora), C: Tipo Periconia, D: Tipo Tetraploa, E: Tipo Helminthosporium, F: escamas epidérmicas.    CONSIDERACIONES FINALES  Los resultados obtenidos en este estudio de dos casos modelo sugieren que ambas metodologías aplicadas (viable y no viable) resultan complementarias para el adecuado diagnóstico del contenido aeromicológico en ambientes interiores. La falta de información sobre la calidad del aire en museos de referencia y sus bienes patrimoniales condicionan la necesidad de este tipo de estudios de monitoreo.   Nuestros hallazgos son relevantes dado que son nuevos resultados sobre la calidad del aire interior en el Museo de La Plata con referencia a las esporas fúngicas y su posible incidencia en la salud utilizando una metodología innovadora.    AGRADECIMIENTOS  Los autores agradecen al Dr. Pedro Balatti por su colaboración en aspectos metodológicos. También expresan su reconocimiento a las autoridades del Herbario y de la División Exhibición y Conservación del Museo de La Plata. Este estudio fue financiado mediante los subsidios (CONICET), PIP 112-200801-01422, PIP 112-200801-01085, PIP 112-201101-00391, PIP 112-201101-00087; Foncyt, PICT 501 el Proyecto de Incentivos a la Investigación (N581) FCNyM, UNLP.    BIBLIOGRAFIA  388  [1] Simmons J.E. & Muñóz – Saba Y.  Eds. (2005), Cuidado, manejo y conservación de las colecciones biológicas, Serie Manuales de campo, Conservación Internacional. Universidad Nacional de Colombia.  [2] Ponizovskaya V.A., Antropova A.B., Mokeeva V.L., Bilanenko E.N. & Chekunova L.N. (2011), Effect of water activity and relative air humidity on the growth of Penicillium chrysogenum Thom, Aspergillus repens (Corda) Sacc. and Trichoderma viride Pers. isolated from living spaces, Microbiología 3:378-385.  [3] Borrego S., Guiamet P., Gómez de Saravia S., Batistini P., García M., Lavin P. &  Perdomo I. (2010), The quality air at archives and the biodeterioration of photographs. International Biodeterioration and Biodegradation 64:139-145.  [4] Klich M.A. (2009), Health effects of Aspergillus in food and air, Toxicology and Industrial Health 25 (9-10):657-667.  [5] Käärik A., Keller J., Kiffer E., Perreau J. & Reisinger O. (1983), In Nilsson, S. Ed. Atlas of airborne fungal spores in Europe.Springer-Verlag, Berlin.  [6] Barnet H.L. & Hunter BB. (1987), Illustrated Genera of Imperfect Fungi, MacMillan Publ. Co. New York.   [7] Grand Smith E. (1990), Sampling and identifying allergenic pollens and molds. Blewstone Press, San Antonio,Texas.  [8] Lacey M.E. & West J.S. (2006), The Air Spore, Springer, Dordrecht, Netherlands.  [9] Nitiu D.S., Mallo A.C., Gardella Sambeth M.C & Morbelli M.A. (2010), Contribución a la identificación de esporas del Reino Fungi en la atmósfera de La Plata (Argentina). Boletín de la Sociedad  Argentina de Botánica 45(3-4):301-308.  [10] Baxter D. (2006). Air O Cell Interpretation guide. Environmental Analysis Association. http://www.ehs.umass.edu/sites/ehs/files/IAQ Interpretation Document.   [11] Borrego S.., Perdomo I., Guiamet P. & Gómez de Saravia S. (2010). Estudio de la concentración microbiana en el aire de depósitos del Archivo Nacional de Cuba. AUGMDOMUS. 1:118-137.   [12] Simmon Nobbe B., Denk U., Poö ll V., Rid R., Breitenbach M. (2008). The spectrum of fungal allergy. International Archive Allergy Immunology. 145:58-86.  [13] Chapman J.A. (2003). Stachybotrys chartarum (chartarum = atra = alternans) and other problems caused by allergenic fungi. Allergy Asthma Proceed. 24(1):1-7.  [14] Michelsen A, Pinzari F, Barbabietola N, Piñar G. (2012). Monitoring the effects of different conservation treatments on paper-infecting fungi. International Biodeterioration & Biodegradation. 30:1-9.  [15] Burge H.A., Hoyer M.E., Solomon W.R., Simmons E.G. & Gallup J. (1989).  Quality control factors for Alternaria allergens. Mycotaxon. 34(1):55-63.   [16] López Martínez R., Hernández Hernández F., Millan Chiu B.E., Manzano Gayosso P. &  Mendez Tovar L.J. (2007). Efectividad del imazalil en el control del deterioro por hongos de momias del museo de El Carmen, Ciudad de México. Revista Iberoamericana de Micología. 24:283-288 

Estrategias metodológicas para el monitoreo aeromicológico en el Museo de La Plata

Naturalis

La contaminación aeromicrobiológica impacta negativamente en las colecciones que se custodian en los museos afectando la conservación de los ejemplares, soportes, la calidad del aire y la salud del personal y los visitantes. La mayor parte de las colecciones que se preservan y/o exhiben en los museos son de naturaleza orgánica, caracterizándose incluso por su alta capacidad de retención de agua. Ello implica un significativo incremento del contenido de humedad en el material y su soporte, especialmente cuando los objetos están sometidos a una ventilación insuficiente y a una humedad relativa superior al 65%. Bajo estas condiciones y en presencia de agentes causantes de biodeterioro como bacterias y hongos, numerosos materiales están expuestos al desarrollo de microorganismos que pueden contribuir a la pérdida irreparable de piezas históricas. En coordinación con la Unidad de Conservación y Exhibición del Museo de La Plata y en función de la importancia de las colecciones custodiadas en esa Institución, y el riesgo potencial al que se hallan expuestas, se propuso realizar estudios enfocados en la identificación y cuantificación de esporas fúngicas en el aire de dos recintos: 1- Herbario de la División de Plantas Vasculares y 2- depósito de restos humanos momificados “Ex Aula Ameghino”. Se utilizó un modelo de estudio que combina una metodología volumétrica tipo Hirst con una técnica adaptada para el cultivo de muestras.Facultad de Ciencias Naturales y Muse

San Martín, Cintia Marta

El Servicio de Difusión de la Creación Intelectual

382 
 
 
 
 
 
 
ESTRATEGIAS METODOLÓGICAS PARA EL MONITOREO 
AEROMICOLÓGICO EN EL MUSEO DE LA PLATA 
 
Nitiu Daniela S. a,b;  Mallo Andrea C.a,c; Elíades Lorena A.b,d,; San Martín 
Cintiaa & Saparrat Mario N.C,b,d,e,f. 
 
aCátedra de Palinología. Facultad de Ciencias Naturales y Museo, UNLP; b CONICET; cCIC PBA; 
dInstituto de Botánica Carlos Spegazzini, FCNy M;  UNLP,e Instituto de Fisiología Vegetal, UNLP-CCT; 
f Cátedra de Microbiología Agrícola. FCAyF. UNLP. 64 Nº 3, 1900 La Plata.  
danielanitiu@yahoo.com.ar  
 
 
Palabras clave: esporas fúngicas, calidad ambiental, colecciones biológicas, Museo de La 
Plata.   
  
 
 
RESUMEN    
 
La contaminación aeromicrobiológica impacta negativamente en las colecciones que se 
custodian en los museos afectando la conservación de los ejemplares, soportes, la calidad 
del aire y la salud del personal y los visitantes. La mayor parte de las colecciones que se 
preservan y/o exhiben en los museos son de naturaleza orgánica, caracterizándose incluso 
por su alta capacidad de retención de agua. Ello implica un significativo incremento del 
contenido de humedad en el material y su soporte, especialmente cuando los objetos están 
sometidos a una ventilación insuficiente y a una humedad relativa superior al 65%. Bajo 
estas condiciones y en presencia de agentes causantes de biodeterioro como bacterias y 
hongos, numerosos materiales están expuestos al desarrollo de microorganismos que 
pueden contribuir a la pérdida irreparable de piezas históricas. En coordinación con la 
Unidad de Conservación y Exhibición del Museo de La Plata y en función de la importancia 
de las colecciones custodiadas en esa Institución, y el riesgo potencial al que se hallan 
expuestas, se propuso realizar estudios enfocados en la identificación y cuantificación de 
esporas fúngicas en el aire de dos recintos: 1- Herbario de la División de Plantas Vasculares 
y 2- depósito de restos humanos momificados “Ex Aula Ameghino”. Se utilizó un modelo de 
estudio que combina una metodología volumétrica tipo Hirst con una técnica adaptada para 
el cultivo de muestras. Para la toma de muestras no viables se empleó una bomba aspirante 
Z-lite IAQ Pump® conectada a un cassette para la captura de partículas, que se expuso a la 
toma de aire durante 5 minutos a un flujo de 15 l/min. El cassette fue procesado según 
Baxter (2006) y las muestras observadas al MO para la identificación y cuantificación de los 
propágulos fúngicos con bibliografía especializada. Para el análisis de las muestras viables, 
se reemplazó el cassette por un portafiltro Millipore con filtros GE Osmonics de 0.45 µm. El 
portafiltros fue conectado a la bomba mencionada y los filtros sometidos a la toma de aire 
durante el mismo tiempo y flujo citado previamente. Una vez obtenida la muestra, los filtros 
fueron lavados en agua bidestilada y alícuotas de la suspensión obtenida fueron sembradas 
sobre medio de cultivo conteniendo 2% (w/v) Corn Meal Agar (CMA) adicionado con glucosa 
(2 g l-1), cloramfenicol (50 mg l-1) y estreptomicina (100 mg l-1) y se realizó el recuento y 
determinación de unidades formadoras de colonia. Utilizando ambos sistemas de captura se 
383 
 
identificaron 17 tipos fúngicos cuyos representantes más significativos pertenecen a 
Ascomycota con el 65 % de esporas asexuales y el 17% de ascosporas. Le sigue en 
importancia la división Basidiomycota con el 12% y Mycetozoa con 6 % de representación.  
Con relación a los tipos esporales encontrados, Aspergillus/Penicillium, Alternaria, 
Rhodotorula y Epicoccum caracterizaron ambos sitios de estudio, siendo el primero el que 
registró mayor frecuencia. Analizando la eficiencia de las dos metodologías de muestreo se 
encontró un espectro diferencial según el tipo de sitio estudiado.El sistema no viable aporta 
información acerca de la presencia de esporas inactivas o en estado de dormancia así como 
del particulado inerte en el aire el cual tiene relevancia a nivel alergénico. Por otra parte, el 
sistema de cultivo in vitro permite la precisa identificación de la carga fúngica y su vitalidad. 
Los resultados obtenidos en este estudio sugieren que ambas metodologías resultan 
complementarias para el adecuado diagnóstico del contenido aeromicológico en ambientes 
interiores siendo relevantes para la conservación del patrimonio del Museo de La Plata.   
 
 
INTRODUCCIÓN 
 
  Los estudios de biodeterioro y biodegradación y los procesos que los originan, son 
fundamentales para la preservación del patrimonio histórico y cultural de un país. 
El biodeterioro de materiales históricos es un fenómeno multifactorial que abarca 
alteraciones por acción biológica con efecto perjudicial para los objetos [1]. A ello hay que 
sumar el impacto estético negativo que produce sobre los bienes afectados. La intensidad 
del biodeterioro es el resultado de la composición del material, de las condiciones 
ambientales y de la microbiota involucrada en el proceso.  
La mayor parte de las colecciones que se preservan y/o exhiben en los museos son de 
naturaleza orgánica, caracterizándose incluso por su alta capacidad de retención de agua. 
Ello implica un significativo incremento del contenido de humedad en el material y su 
soporte, especialmente cuando los objetos están sometidos a una ventilación insuficiente y a 
una humedad relativa superior al 65%. Bajo estas condiciones y en presencia de agentes 
causantes de biodeterioro como bacterias y hongos, numerosos materiales están expuestos 
al desarrollo de microorganismos que pueden contribuir a la pérdida irreparable de piezas 
históricas, incluso en un breve período de tiempo [2]. 
Por lo tanto, es importante tener en cuenta que, sumado al efecto del biodeterioro 
causado por bacterias y hongos, el manejo de materiales contaminados puede constituir 
asimismo un serio riesgo para la salud de las personas ya que muchos de estos organismos 
son patógenos o toxicogénicos [3,4]. 
El Museo de Ciencias Naturales de La Plata fue originalmente creado como “Museo 
General de La Plata” el 19 de septiembre de 1884, en base a un proyecto del coleccionista 
Francisco Pascasio Moreno (1852-1919). Las primeras colecciones provinieron del Museo 
Antropológico de Buenos Aires con patrimonio donado por el propio Moreno.  
 En la actualidad, las Colecciones botánicas, entomológicas y de invertebrados, 
paleontológicas, geológicas, antropológicas, etnográficas y arqueológicas del Museo suman 
más de 3.000.000 objetos exhibidos en 20 salas y conservados en distintos sectores del 
edificio. El objetivo de este trabajo fue iniciar procedimientos de monitoreo y diagnóstico de 
la carga fúngica potencialmente perjudicial presente en el aire interior de los recintos de 
conservación, tomando como casos de estudio el Herbario de Plantas Vasculares del Museo 
de La Plata (figura 1A) y el depósito de Antropología “Ex Aula Ameghino” que conserva 
restos humanos momificados del Noroeste argentino (figura 1B).  
 
 
384 
 
 
Figura 1: A: Depósito de las Colecciones Botánicas, Herbario del Museo de Ciencias Naturales de La 
Plata; B: Depósito de restos momificados (subsuelo Museo de Ciencias Naturales).  
 
MATERIALES Y METODOLOGIA 
 
Sitios de estudio 
 
1. El Herbario de Plantas Vasculares alberga 500 000 ejemplares botánicos, siendo las 
Compuestas y los Materiales Tipo, las colecciones más importantes del país y de 
América Latina. Posee una superficie de 350 m2 con diversos espacios de trabajo, 
incluyendo áreas de investigación y administración y un área exclusiva para la 
conservación de las colecciones bajo condiciones controladas de temperatura y 
humedad. El muestreo se realizó el 21 de diciembre de 2011; se analizaron 6 áreas 
representativas: H1- acceso principal al área de conservación, H2 - pasillo central, H3 - 
acceso auxiliar, H4 - sala de visita  H5 - recepción, H6 - pasillo exterior.  
 
2. El depósito de restos humanos momificados “Ex Aula Ameghino” contiene piezas de 
distinto origen del Noroeste argentino que se hallaban originalmente en sala de 
exhibición y fueron trasladadas posteriormente a su ubicación actual. Dicho recinto 
posee una superficie de 28 m2 bajo condiciones controladas de temperatura y humedad.  
El muestreo se realizó el 12 de noviembre de 2012; se tomaron muestras de aire de: 1- 
exterior del Aula Ameghino (M1), 2- aire interior del mismo depósito (M2) y de la 
atmósfera interior de las vitrinas de los siguientes ejemplares: 3 - Interior de la vitrina 
que contiene materiales asignados a “Serranía de Las Pirguas, Dto. Guachipas Salta. 
Cadáver de gemelos naturalmente momificados con ajuar funerario. Inv. 50181.” (M3), 4 
- Idem “Pampa Grande, Salta: Cadáver momificado naturalmente. S/ Inv.” (M4) y 5- 
Idem “Pampa Grande, Salta: Cadáver momificado naturalmente. S/ Inv.” (M5).  
 
 
Técnica de muestreo 
 
El modelo de estudio utilizado (figura 2) combina una metodología volumétrica que 
emplea una bomba aspirante Z-LiteIAQ Pump ® calibrada a un flujo de 15 litros de aire por 
minuto, para la captura de partículas que impactan en un cubreobjeto revestido con silicona 
que se halla contenido en un cassette Air O Cell ®  proporcionando muestras no viables. 
Dichas muestras fueron expuestas durante 5 minutos, procesadas en laboratorio y 
observadas al microscopio óptico, se realizó la identificación de esporas mediante atlas 
especializados [5,6,7,8,9] el  recuento y  la estimación de esporas por metro cúbico de aire 
se calculó según Baxter 2006 [10].  
 Para la obtención de las muestras viables, se reemplazó el cassette por un portafiltro 
Millipore con filtros de 0.45 µm. El portafiltros se conectó a la bomba quedando los filtros 
expuestos a la toma de aire durante 5 minutos. Una vez obtenidas las muestras, los filtros 
385 
 
fueron lavados y agitados (15 minutos a 2000 rpm) y alícuotas de 1 ml de la suspensión 
obtenida se sembraron en medio de cultivo conteniendo 2% (w/v) Corn Meal Agar (CMA) 
adicionado con glucosa (2 g l-1), cloramfenicol (50 mg l-1) y estreptomicina (100 mg l-1) 
para el recuento y determinación de esporas fúngicas asociadas. En el momento de la toma 
de muestras, se registró la temperatura y humedad en cada recinto utilizando HOBO U14 
LCD Datalogger. 
 
 
Figura  2: Diagrama de flujo de la secuencia de muestreo de aire interior. 
 
RESULTADOS Y DISCUSION 
 
Utilizando ambos sistemas de captura se identificaron 17 tipos morfológicos en 
ambos sitios cuyos representantes más significativos pertenecen a Ascomycota con el 65 % 
de esporas asexuales y el 17% de ascosporas. Le sigue en importancia la división 
Basidiomycota con el 12% y Mycetozoa con 6 % de representación.   
Con relación a los tipos esporales encontrados, Aspergillus/Penicillium, Alternaria, 
Rhodotorula y Epicoccum caracterizaron ambos sitios de estudio, siendo el primero el que 
registró mayor frecuencia hallándose presente en 4 muestras del Herbario y en todas las 
muestras del Depósito (tabla 1). Estos resultados han sido corroborados por otros 
investigadores en estudios de control de bioderioro en el Archivo del Museo de La Plata [11].  
En el muestreo del Herbario, se identificaron 12 taxa siendo el pasillo exterior (sector 
H6), el sitio que presentó mayor la riqueza con 9 tipos esporales. 
No obstante, en los accesos al recinto de conservación de plantas vasculares 
(sectores H1 y H2) se registró un adecuado control ambiental posiblemente garantizado por 
el equipo de aire acondicionado y por el cuidadoso accionar del personal del Herbario tal 
como lo revelado por el menor número de taxa presentes (3 y 1 respectivamente) en dichas 
áreas. Adicionalmente, en sectores adyacentes al recinto de colecciones se identificaron 
esporas de Cladosporium; Penicillium sp y Rhodotorula sp., en niveles no perjudiciales para 
la salud humana y la preservación de estas colecciones biológicas.  
Por otro lado, en las muestras ambientales del depósito del ex Aula Ameghino se 
detectaron esporas de Alternaria, Aspergillus, Coprinus, Penicillium  y Talaromyces.  
La vitrina perteneciente a los infantes gemelos (muestra II) reveló el mayor número de tipos 
fúngicos (6). Analizando la diversidad de tipos fúngicos se puede decir que en el ex depósito 
386 
 
Ameghino es menor que en el Herbario y se halla menos afectado por las condiciones en el 
exterior.  
 
 
      HERBARIO          
DEPOSITO 
MOMIAS 
Tipos 
morfológicos H1 H2 H3 H4 H5 H6 M1 M2 M3 M4 M5 
Acremonium x                     
Alternaria *   x x     x x x       
Arthrinium *           x           
Ascospora *       X x             
Aspergillus-
Penicillium * x   x X   x x x x x x 
Beauveria *                 x     
Cladosporium * x   x X x x x x x     
Coprinus *                        
Chaetomium *           x x   x     
Dreschlera- 
Bipolaris *         x             
Epicoccum *           x x   x     
Tipo Leptosphaeria     x   x x           
Myxomycota       X   x           
Paecilomyces             x x       
Rhodotorula *      x     x x   x     
Talaromyces                x x   x 
Torula *                   x   
 
Tabla 1: Morfotipos de esporas fúngicas registrados en cada sitio de muestreo. El signo * 
corresponde a los tipos esporales citados con propiedades alergénicas.  
 
  Analizando la eficiencia de las dos metodologías de muestreo se encontró un 
espectro diferencial según el tipo de sitio estudiado. El sistema viable permitió la detección 
de propágulos fúngicos en todos los sitios. Se determinaron a nivel específico los siguientes 
hongos Aspergillus niger, Epicoccum nigrum y Paecylomyces lilacinus, Penicillium 
frequentans, P. rubrum y P. thomii, principalmente en la ex Sala Ameghino.   
El sistema no viable permitió la detección de esporas fúngicas y de particulado inerte 
pero presenta limitaciones en cuanto a precisión en la determinación de los taxa ya que la 
misma se basa solo en características morfológicas de las esporas permitiendo la 
asignación como máximo a nivel genérico. Sin embargo, este sistema aporta información 
acerca de la presencia de esporas no viables o en estado de dormancia así como del 
particulado inerte en el aire el cual tiene mucha relevancia a nivel alergénico [3,12]. En la 
figura 3 se presentan algunos tipos esporales así como escamas epidérmicas hallados en 
los muestreos de los distintos sitios. 
A pesar de que se identificaron diversos taxa fúngicos o tipos morfológicos con 
ambos métodos es de destacar que en ninguna muestra se hallaron representantes de 
Stachybotrys, Fusarium, Trichoderma y Aspergillus versicolor [13,14] los cuales son 
utilizados como agentes indicadores de severos problemas de humedad ambiental y 
altamente propensos al desarrollo y progreso de biodeterioro en colecciones biológicas. Sin 
embargo, la presencia de Alternaria, Aspergillus, Cladosporium y Penicillium debe ser 
387 
 
considerada por su importancia como factor de riesgo para la salud del personal a cargo de 
las colecciones [15,16].  
 
 
 
Figura 3: Tipos esporales capturados con el sistema no viable en los sitios de muestreo.  A: Tipo 
Alternaria, B: Tipo Puccinia (uredospora), C: Tipo Periconia, D: Tipo Tetraploa, E: Tipo 
Helminthosporium, F: escamas epidérmicas.  
 
 
CONSIDERACIONES FINALES 
 
Los resultados obtenidos en este estudio de dos casos modelo sugieren que ambas 
metodologías aplicadas (viable y no viable) resultan complementarias para el adecuado 
diagnóstico del contenido aeromicológico en ambientes interiores. La falta de información 
sobre la calidad del aire en museos de referencia y sus bienes patrimoniales condicionan la 
necesidad de este tipo de estudios de monitoreo.   
Nuestros hallazgos son relevantes dado que son nuevos resultados sobre la calidad 
del aire interior en el Museo de La Plata con referencia a las esporas fúngicas y su posible 
incidencia en la salud utilizando una metodología innovadora.  
 
 
AGRADECIMIENTOS 
 
Los autores agradecen al Dr. Pedro Balatti por su colaboración en aspectos metodológicos. 
También expresan su reconocimiento a las autoridades del Herbario y de la División 
Exhibición y Conservación del Museo de La Plata. Este estudio fue financiado mediante los 
subsidios (CONICET), PIP 112-200801-01422, PIP 112-200801-01085, PIP 112-201101-
00391, PIP 112-201101-00087; Foncyt, PICT 501 el Proyecto de Incentivos a la 
Investigación (N581) FCNyM, UNLP.  
 
 
BIBLIOGRAFIA 
 
388 
 
[1] Simmons J.E. & Muñóz – Saba Y.  Eds. (2005), Cuidado, manejo y conservación de las 
colecciones biológicas, Serie Manuales de campo, Conservación Internacional. 
Universidad Nacional de Colombia. 
 
[2] Ponizovskaya V.A., Antropova A.B., Mokeeva V.L., Bilanenko E.N. & Chekunova L.N. 
(2011), Effect of water activity and relative air humidity on the growth of Penicillium 
chrysogenum Thom, Aspergillus repens (Corda) Sacc. and Trichoderma viride Pers. 
isolated from living spaces, Microbiología 3:378-385. 
 
[3] Borrego S., Guiamet P., Gómez de Saravia S., Batistini P., García M., Lavin P. &  
Perdomo I. (2010), The quality air at archives and the biodeterioration of photographs. 
International Biodeterioration and Biodegradation 64:139-145. 
 
[4] Klich M.A. (2009), Health effects of Aspergillus in food and air, Toxicology and Industrial 
Health 25 (9-10):657-667. 
 
[5] Käärik A., Keller J., Kiffer E., Perreau J. & Reisinger O. (1983), In Nilsson, S. Ed. Atlas of 
airborne fungal spores in Europe.Springer-Verlag, Berlin. 
 
[6] Barnet H.L. & Hunter BB. (1987), Illustrated Genera of Imperfect Fungi, MacMillan Publ. 
Co. New York. 
 
 [7] Grand Smith E. (1990), Sampling and identifying allergenic pollens and molds. Blewstone 
Press, San Antonio,Texas. 
 
[8] Lacey M.E. & West J.S. (2006), The Air Spore, Springer, Dordrecht, Netherlands. 
 
[9] Nitiu D.S., Mallo A.C., Gardella Sambeth M.C & Morbelli M.A. (2010), Contribución a la 
identificación de esporas del Reino Fungi en la atmósfera de La Plata (Argentina). Boletín 
de la Sociedad  Argentina de Botánica 45(3-4):301-308. 
 
[10] Baxter D. (2006). Air O Cell Interpretation guide. Environmental Analysis Association. 
http://www.ehs.umass.edu/sites/ehs/files/IAQ Interpretation Document.  
 
[11] Borrego S.., Perdomo I., Guiamet P. & Gómez de Saravia S. (2010). Estudio de la 
concentración microbiana en el aire de depósitos del Archivo Nacional de Cuba. 
AUGMDOMUS. 1:118-137.  
 
[12] Simmon Nobbe B., Denk U., Poö ll V., Rid R., Breitenbach M. (2008). The spectrum of 
fungal allergy. International Archive Allergy Immunology. 145:58-86. 
 
[13] Chapman J.A. (2003). Stachybotrys chartarum (chartarum = atra = alternans) and other 
problems caused by allergenic fungi. Allergy Asthma Proceed. 24(1):1-7. 
 
[14] Michelsen A, Pinzari F, Barbabietola N, Piñar G. (2012). Monitoring the effects of 
different conservation treatments on paper-infecting fungi. International Biodeterioration & 
Biodegradation. 30:1-9. 
 
[15] Burge H.A., Hoyer M.E., Solomon W.R., Simmons E.G. & Gallup J. (1989).  Quality 
control factors for Alternaria allergens. Mycotaxon. 34(1):55-63.  
 
[16] López Martínez R., Hernández Hernández F., Millan Chiu B.E., Manzano Gayosso P. &  
Mendez Tovar L.J. (2007). Efectividad del imazalil en el control del deterioro por hongos 
de momias del museo de El Carmen, Ciudad de México. Revista Iberoamericana de 
Micología. 24:283-288 


Spanish

http://sedici.unlp.edu.ar/bitstream/handle/10915/66624/Documento_completo__.pdf?sequence=1

Estrategias metodológicas para el monitoreo aeromicológico en el Museo de La Plata

Abstract

Similar works

Full text

Available Versions

Centro de Servicios en Gestión de Información

Naturalis

El Servicio de Difusión de la Creación Intelectual