Carrera de Estomatología de la Universidad Científica del Sur
Doi
Abstract
Objetivo: Este reporte de caso tuvo como objetivo caracterizar las células primarias del adenoma pleomórfico obtenidas de un tumor de glándula parótida mediante biopsia de tejido, cultivo celular primario y análisis inmunohistoquímico. Métodos: Una muestra de biopsia de tejido de un paciente de 58 años con adenoma pleomórfico se sometió a examen histopatológico y cultivo celular primario. Las células primarias se caracterizaron mediante tinción inmunohistoquímica utilizando anticuerpos contra S-100, SMA, vimentina y citoqueratina AE1/AE3. Además, se tiñeron secciones de tejido embebido en parafina utilizando citoqueratina AE1/AE3, vimentina, calponina, SMA, S100 y p63. Resultados: El cultivo celular primario reveló tinción débil de S-100 y SMA positivo en células mioepiteliales, mientras que vimentina y AE1/AE3 fueron negativas en toda la población celular. En el tejido embebido en parafina, la citoqueratina exhibió positividad citoplasmática y membranosa fuerte en células luminales. La vimentina mostró tinción citoplasmática en células mioepiteliales. S-100 mostró inmunorreactividad nuclear débil y citoplasmática fuerte en células mioepiteliales. SMA presentó positividad membranosa débil en algunas células mioepiteliales y, finalmente, p63 mostró tinción nuclear en células abluminales. La calponina mostró tinción negativa en células neoplásicas y estroma. Conclusión: Los resultados mostraron que el componente primario del adenoma pleomórfico comprende células mioepiteliales. La identificación de células cultivadas in vitro es fundamental para comprender los componentes celulares de estos tumores. Esta caracterización integral de las células primarias del adenoma pleomórfico proporciona información sobre su morfología, inmunofenotipo y características histológicas.Objective: This case report aimed to characterize primary pleomorphic adenoma cells obtained from a parotid gland tumor through tissue biopsy, primary cell culture, and immunohistochemical analysis. Methods: A tissue biopsy sample from a 58-year-old patient with pleomorphic adenoma underwent histopathological examination and primary cell culture. The primary cells were characterized through immunohistochemical staining using antibodies against S-100, SMA, Vimentin, and cytokeratin AE1/AE3. Additionally, paraffin-embedded tissue sections were stained using cytokeratin AE1/AE3, Vimentin, Calponin, SMA, S100, and p63. Results: Primary cell culture revealed weak S-100 staining and positive SMA in myoepithelial cells, while Vimentin and AE1/AE3 were negative in all the cell population. In the paraffin-embedded tissue, cytokeratin exhibited strong cytoplasmic and membranous positivity in luminal cells. Vimentin showed cytoplasmic staining in myoepithelial cells. S-100 displayed weak nuclear and strong cytoplasmic immunoreactivity in myoepithelial cells. SMA presented weak membranous positivity in a few myoepithelial cells, and finally, p63 showed nuclear staining in abluminal cells. Calponin showed negative staining in neoplastic cells and stroma. Conclusion: The results showed that primary component of pleomorphic adenoma comprises myoepithelial cells. The identification of cell cultured in vitro is pivotal in comprehending the cellular components of these neoplasms. This comprehensive characterization of primary pleomorphic adenoma cells provides insights into their morphology, immunophenotype, and histological features.