Se realizaron inducciones en hembras de cachama (Colossoma macropomum) con peso promedio de 5,9 Ó 0,7 kg y longitud de 65,3 Ó 11,9 cm. Se trataron con hipófisis de carpa, lográndose desoves naturales (66,6%) y artificiales (33,3%) con tasa de fertilización de 83,5% y 65,3%, respectivamente. Los huevos se incubaron en macroincubadoras circulares, en volúmenes que oscilaron entre 600 ”“ 1.200 ml. El porcentaje de eclosión varió entre 46,8 y 53,6% en los desoves naturales y 26,2 y 34,4% en artificiales

González, Mario

Perdomo, Daniel

Useche, Manuel

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425UTILIZACIÓN DE MACROINCUBADORAS EN EL PROCESODE REPRODUCCIÓN INDUCIDA DE CACHAMAS(Colossoma macropomum) PISCES CHARACIDAEMacro-incubator Utilization in the Induced Reproduction Process of Cachama(Colossoma macropomum) Pisces CharacidaeDaniel Perdomo C.¹, Manuel Useche G.², Mario González E.¹¹ Unidad de Investigaciones en Recursos Subutilizados. Universidad de Los Andes. Trujillo. Edo. Trujillo, Venezuela. ²Decanato de Investigación. Universidad Nacional Experimental del Táchira.   San Cristóbal. Edo. Táchira, Venezuela. .E-mails: danperd@yahoo.es , usechemanuel@telcel.net.ve.RESUMENSe real izaron  inducciones en hembras de cachama(Colossoma macropomum )  con peso promedio de 5,9 ± 0,7kg y longitud de 65,3 ± 11,9 cm. Se trataron con hipófisis decarpa,  lográndose desoves naturales (66,6%) y artificiales(33,3%) con tasa de fertilización de 83,5% y 65,3%, respectiva-mente. Los huevos se incubaron en macroincubadorascirculares, en volúmenes que oscilaron entre 600 – 1.200 ml.El porcentaje de eclosión varió entre 46,8 y 53,6% en los desovesnaturales y 26,2 y 34,4% en artificiales.Palabras clave: Cachama, ferti l ización, huevos,macroincubadoras.ABSTRACTInductions performed in females of cachama (Colossomamacropomum ) with average weight of 5.9 ± 0.7 kg and length of65.3 ± 11.9 cm., treated with hypophysis of carpa, reached  na-tural spawnings (66.6%)  and artificials (33.3%) with fertilizationrate of 83.5 and 65.3%, respectively. The eggs were  incubatedon circular macro-incubators, in bulks that ranged between 600– 1200 ml. The porcentage or rate of blooming varied between46.8 – 53.6% in natural spawnings and 26.2 – 34.4% in artificialspawnings.Key words: Cachama, fertilization, eggs, macro-incubators.INTRODUCCIÓNLa cachama (Colossoma macropomum ) es una especiedulceacuícola ampliamente distribuida en toda la cuencaamazónica. En la actualidad se le considera como uno de lospeces de mayor potencial productivo y reproductivo para lapiscicultura extensiva, semi-intensiva e intensiva en aguas con-tinentales de los países que integran la gran cuenca amazónica[2,3,9]. Sin embargo, presenta un comportamiento similar aotros carácidos cuando son confinados en recintos cerrados;desarrollan sus gónadas pero la maduración final y el desoveno ocurren por la carencia de estímulos apropiados [1,7]. Por talmotivo la reproducción en cautiverio debe realizarse mediantela utilización de diferentes agentes inductores, que estimulanlas vías  positivas a nivel de la hipófisis [4], o directamente enlas gónadas [6], como extractos hipofisarios de peces. Llegadoel momento del desove, la fertilización de los óvulos puede rea-lizarse de forma natural o espontánea cuando se observa con-ducta previa de apareamiento por parte de los reproductores , yde manera artificial o en seco por extracción de los productosgónadales de los peces. Normalmente una hembra decachama desova entre 1 a 3 millones de óvulos [5]. Una vezfertilizados, es imprescindible disponer de incubadoras ade-cuadas, donde se faciliten las condiciones necesarias para eldesarrollo de estos. En tal sentido han sido varios los modelosde incubadoras utilizadas, las cuales difieren en tamaño y ca-pacidad [8]; sin embargo en muchos casos resultan insuficien-tes por la gran cantidad de huevos obtenidos y, en otros casos,no se finalizan las etapas siguientes que ocurren una vezeclosionados los huevos, como son el levantamiento larval. Estetrabajo tiene como objetivo determinar cantidad y % de óvulosdesovados y fertilizados, en hembras de cachama tratadashormonalmente y sometidas a corrientes de agua continuas,así como describir el uso de macroincubadoras circulares en elproceso de incubación y posterior eclosión de larvas decachama.MATERIALES Y MÉTODOSEl trabajo se realizó en la Estación Experimental dePiscicultura de Aguas Cálidas de la Universidad Nacional Ex-perimental del Táchira (UNET) ubicada en San Antonio deCaparo, Municipio Libertador del estado Táchira, coordenadasgeográficas 07º35’10" latitud norte y 71º27’10" longitud oeste,zona de vida bosque húmedo tropical, precipitación promedioanual de 1768 mm y temperatura media anual de 26,6 ºC. Seutilizaron 18 ejemplares reproductores de cachama con pesopromedio en las hembras (n=6) de 5,9 ± 0,7 kg (rango: 4,9 – 6,7)y una longitud estándar de 65,3 ± 11.9 cm (rango: 45,3 – 78); enlos machos (n=12) el peso promedió 4,8 ± 0,6 kg (rango: 4 –Recibido: 30/06/2002 Aceptado: 30/09/2002Revista Científica Vol. XII-Suplemento 2, Octubre, 425-427,  20024266,1) y su longitud fue de 52,1 ± 7,6 cm (rango: 41,5 – 66). Laselección de los reproductores se efectuó siguiendo aspectosde madures sexual (machos: descarga de líquido seminal alser presionados levemente en la región abdominal; hembras:abdomen abultado y blando al tacto, papila urogenital enrojeciday pronunciada hacia fuera) [7]. Adicionalmente, a las hembrasse les practicó una canulación observando presencia  de óvulosverde pálido, diámetros de 1,8 mm, núcleo definido y desplazadoo migrando hacia la periferia entre 40–75%, e hidratación alponerlos en contacto con el agua; características indicativas dela maduración gónadal [5]. Para la inducción de los peces seutilizo extracto hipofisario de carpa, calculándose la dosis enbase a 5 mg/kg y 1,5 mg/kg de peso corporal para hembras ymachos, respectivamente; en ambos casos la hormona fuedisuelta a razón de 0,5 ml/kg de peso vivo. El protocolo consistióen una dosis dividida en dos aplicaciones (hembras: 10 y 90%,machos: 33,3 y 66,6% de la dosis total); con un intervalo entredosis de 14–18 horas (promedio: 16 ± 2,8). Todas las inyeccio-nes se administraron intraperitonealmente. Los reproductoresinoculados se colocaron en tanques circulares de fibra de vidriode 2 m de diámetro y altura de 0,8 m, en una relación de 2machos por cada hembra. Estos se sometieron a un procesodonde se crearon fuertes corrientes de agua circulares provo-cando estímulos similares a los encontrados en la naturaleza.El desove de los óvulos se produjo de manera natural o espon-tánea o de manera artificial (desove en seco) por estrujamientode los reproductores para obtener sus productos gónadales,en los casos donde transcurrieron más de 320 horas-gradosin desovar. Finalizado el desove, los peces se trataron conuna solución antimicótica y recibieron 1,5 ml de vitamina B12 +fósforo intramuscularmente. Los huevos obtenidos se colocaronen macroincubadoras circulares de 2.500 litros diseñadas porUseche [8]. Los parámetros físico-químicos se valorizaron conun kit de acuicultura La Motte (temperatura: 27–29 ºC, pH: 6,5–7, O2: 4–5 mg/L, CO2: 3,5–4 mg/L. dureza: 30–32 mg/L). Trans-currida una hora post-desove se determino el % de fertilizacióntomando una muestra de huevos (n=100), lo mismo se realizópara determinar el % de larvas a eclosionar (n=100). Se consi-deraron positivos los desoves cuando los huevos completaronsu desarrollo hasta la etapa de larvas. El ensayo se realizo en4 semanas consecutivas, utilizándose 2 macroincubadoras cir-culares por cada 2 hembras tratadas a la semana. Los datosobtenidos se analizaron mediante procedimientos estadísticosdescriptivos tales como promedio, desviación estándar y por-centaje.RESULTADOS Y DISCUSIÓNEl 66,6% (n=4) de las hembras desovaron espontánea-mente con un promedio de 270,5 ± 15,2 horas-grado (rango:257,1–288) en un tiempo de 8,5 ± 0,5 horas posterior a la se-gunda dosis, lo cual supera lo reportado por González y col. [6].Sin embargo, el 33,3% (n=2) de las hembras tratadas desovaronartificialmente con un promedio de 320,7 ± 5,3  horas-grado(rango: 317 – 324,5) en un intervalo  de 11,5 ± 0,7 horas desdela segunda dosis. Se recolectaron en los desoves espontá-neos un promedio de 1.005 ± 179 ml de óvulos (rango: 800–1200) lo cual supera las cantidades obtenidas en los desovesartificiales (promedio: 625 ± 35 ml, rango: 600–650). Estas can-tidades demuestran la efectividad del desove natural para ob-tener mayores cantidades de óvulos, lo cual se traduce en unamayor fertilización [8] y una mejor respuesta al procesoreproductivo inducido en esta especie.En los desoves espontáneos se logró una tasa de fertili-zación de 83,5 ± 4,3% (rango: 78,5–88,6), mientras que con eldesove artificial ésta alcanzó 65,3 ± 5,8% (rango: 61,2–69,4),debido posiblemente a la fricción que se le hace a los óvulos almomento de ser extraídos, lo cual puede provocar el rompi-miento de estos [1]; además ésta manipulación origina estrésen los reproductores, que es causado al ser retirados del me-dio acuático, generándoles asfixia, lesiones en la piel que pue-den desencadenar infecciones bacterianas y micóticas; todoesto provocado por la extracción de sus productos gónadales[7] repercutiendo en la calidad y cantidad de óvulos y semen enfuturas inducciones. Se ha reportado, que en ciertos casos eldesove en seco produce la pérdida signif icat iva dereproductores, sobre todo cuando estos son de gran tamaño[5].Las cantidades de huevos colocados en lasmacroincubadoras oscilaron entre 600.000–650.000 (prome-dio: 625.000) para los desoves artificiales  y entre 800.000–1.200.000 (promedio: 1.005.000) para los desoves espontá-neos, asumiendo que en carácidos 1 ml de huevos representa1.000 unidades [1]. Para ambos desoves, las cantidades incu-badas superan ampliamente las reportadas en incubadorascónicas [1,9] donde se ha logrado incubar hasta 300.000 huevos.El porcentaje de eclosión en las macroincubadoras fuemayor en el desove espontáneo obteniéndose un promedio de48,5 ± 4,3% (rango: 46,8–53,6) en comparación al obtenido enel desove artificial (promedio: 30,3 ± 5,8; rango: 26,2–34,4), es-tos resultados coinciden con los reportados en otros tipos deincubadoras [5,8]. La eclosión ocurrió entre 12 y 14 horas (pro-medio: 12,6 ± 0,8) post-desove para ambos casos, lo cual nodifiere con lo señalado en otras incubadoras [1,5]. Las larvasfueron levantadas en las macroincubadoras por un periodo de6–7 días y posteriormente se sembraron en lagunas previa-mente preparadas.CONCLUSIONES Se  obtuvo un mayor número de óvulos y tasa de fertiliza-ción en los desoves espontáneos; lográndose una mayor eclo-sión de larvas de cachama. Las macroincubadoras circularespermitieron la incubación de grandes cantidades de huevosfertilizados.REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS[1]         CONTRERAS, P.; CONTRERAS, J. Reproducción induci-da de peces tropicales. En: Rodríguez, H.; Polo, G.,Salazar, G. (Eds). Fundamentos de Acuicultura Conti-nental. Instituto Nacional de Pesca y Acuicultura. Bogotá,Colombia. Cap. VI: 125 – 138. l993.[2]     DÍAZ, F.; LOPEZ, R. El cultivo de la cachama blanca (Piaractusbrachypomus) y de la cachama negra (Colossomamacropomum ). En: Rodríguez, H.; Polo, G.; Salazar, G.(Eds). Fundamentos de Acuicultura Continental. Insti-tuto Nacional de Pesca y Acuicultura. Bogotá, Colombia.Cap. X: 207 – 219. l993.Utilización de Macroincubadoras / Daniel Perdomo C. y col.427[3]        GARCÍA, E.  Engorde de las cachamas y sus híbridos.Asociación  Americana de Soya. Caracas, Venezuela. 55pp. 2000.[4]        GONZÁLEZ, J. A. Incidencia de la precipitación y agentesinductores en el ciclo reproductivo de la cachama(Colossoma macropomum) Characidae, en cautiverio.Acta Científica Venezolana. 48 (3): 173 – 176. l997.[5]        GONZÁLEZ, J.; HEREDIA, B. El cultivo de la cachama(Colossoma macropomum). Segunda Edición. Maracay,Venezuela. 134 pp.1998.[6] GONZÁLEZ, J.; GUERRERO, H.; CACERES, G.;MARCANO, D. Reproducción inducida de la cachama,Colossoma macropomum con extracto hipofisario y unanálogo de la hormona liberadora de las Gonadotropinas(LHRH–A). Acta Científica Venezolana. 42 (4): 229 –231. 1991.[7] PERDOMO, D. A. Reproducción de la cachama(Colossoma macropomum , CUVIER 1818) y su hibrida-ción con el morocoto (Piaractus brachypomus, CUVIER1818). Núcleo Universitario Rafael Rangel. Universidadde Los Andes. Trabajo de Grado. Trujillo, Venezuela. 185pp. 2000.[8]        USECHE, M. Panorama actual del cultivo del Colossomay Piaractus en Venezuela. II Congreso Suramericano deAcuicultura. Puerto La Cruz, Estado Anzoategui, Vene-zuela. Tomo II: 292 – 306. 1999.[9]        USECHE, M. El cultivo de la cachama, manejo y produc-ción. Taller Actualización en Acuicultura. UniversidadNacional Experimental del Táchira. San Cristóbal, Esta-do Táchira, Venezuela. pag. 2001.Revista Científica Vol. XII-Suplemento 2, Octubre, 425-427, 2002

Utilización de macroincubadoras en el proceso de reproducción inducida de cachamas (Colossoma macropomum) pisces characidae

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