Moisan, Jessica

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Jessica Kelly Moisan1,2, Fatma Meddeb1,3, Jodrey Bergeron4, Benoit Daoust4, Marc Beauregard1,2  1. Centre de recherche sur les matériaux lignocellulosiques, 2. PROTEO, Université Laval, 3. Buckman Canada 4. Département de chimie, biochimie et physique, Université du Québec à Trois-Rivières Utilisation à pH alcalin Secteur médicale (Transporteur de médicaments) Agroalimentation (antioxydant)  Industrie de la peinture (colorants) Rendement de production augmenté à 5,2 mg/L  Pigment attribué à la famille des  caroténoides Mise en évience d’ une capacité antioxydante Stabilité dans les solvants organiques    Notre équipe est spécialisé dans  le criblage et l’identification de microorganismes à partir d’échantillons environnementaux Microbacterium oxydans, une souche produisant un pigment en présence de lumière, a été identifiée Les pigments présentent un grand intérêt en biotechnologies industrielles (agroalimentataion, cosmétique, pharmaceutique, matières plastique, pâtes et papiers …). Caractérisation d’un nouveau pigment produit par une souche photochromogénique Microbacterium oxydans 1. Correa-Llantén et al (2012) Antioxydant Capacity of Novel Pigments from an Antarctic Bacterium. The Journal of Microbiology Vol 50, No 3: 374-379.  2. Ibrahim A.S.S (2008) Production of Carotenoids by a Newly Isolated Marine Micrococcus sp. Biotechnology 7(3): 469-474. 2. Meddeb F, Moisan JK, Beauregard M. (2015) Wood Decay Bacteria Strains Producing Extracellular Hydrolitic Enzymes. Microbes and Environments (Soumis). 3. Meddeb F, Moisan JK, Beauregard M. (2015) Characterization of Novel pigment-Produced from photochromogenic Microbacterium oxydans. Applied Microbiology and Biotechnology (En préparation). Introduction Méthodologie Résultats Conclusions Applications Références Remerciements Production massive  de Microbacterium Oxydans Figure 4: Spectre UV-Vis  Objectifs Caractérisation biophysique du nouveau pigment Détermination de la structure du pigment 0,00,20,40,60,8190 240 290 340 390 440 490 540 590Abs Wavelength (nm) Caractérisation 0500010000150002000025000400 500 600 700 800Intensité de fluo. Wavelenght Figure 5: Spectre d’émission de fluorescence  Extraction et purification du pigment Figure 8: Stabilité du pigment dans les solvents organiques Figure 7: Stabilité du pigment en fonction du pH 0,00,30,50,81,0DO (437 nm) Solvent 0 J3 J10 J00,20,40,60,81DO 437 nm pH 0 J3 J10 JOptimisation de la production  Milieux de culture  Temps d’incubation  Taux d’aération 90929496981001025001000150020002500300035004000% Transmittance Longueur d'onde (nm) Milieu Aération (rpm) Temps  (hrs) XM            (g L-1) PM         (mg L-1) Y P/X  (mg L-1) LB Broth 100 24 0,0009 0,45 4 48 0,020 0,55 5 215 24 0,034 0,65 6 48 0,050 0,85 8 LB Broth   1/10 100 24 0,0002 0,20 2 48 0,015 0,25 2 215 24 0,025 0,45 4 48 0,015 0,65 5 Optimisation de la production du pigment Milieu Aération (rpm) Temps (hrs) XM             (g L-1) PM         (mg L-1) Y P/X  (mg L-1) Marine Broth 100 24 0,009 0,7 7 48 0,020 0,9 9 215 24 0,015 0,6 6 48 0,029 0,8 8 Marine Broth  1/10 100 24 0,008 0,8 8 48 0,014 1,2 12 215 24 0,022 0,6 6 48 0,021 0,9 9 Optimisation de l’extraction Figure 6: Spectre Infra-rouge Tableau 1: Optimisation de la production de pigment dans le milieu LB Broth. Figure 2: Chromatgraphie sur couche mince après purification Caractérisation spectroscopique Caractérisation de la stabilité  Tableau 2: Optimisation de la production de pigment dans le milieu Marine Broth. Figure 1: Comparaison de deux méthodes d’extraction Purification Capacité antioxydante Figure 3: 1 mg de pigment équivaut à 213 µg de Trolox (TEAC) 

Caractérisation d’un nouveau pigment produit par une souche photochromogénique Microbacterium oxydans

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