ALVES, L.

POZZA, J. dos S.

RECH, D. V.

VAZ, C. S. L.

RCAAP - Repositório Científico de Acesso Aberto de Portugal

Sobrevivência de Campylobacter termófilos em amostras de frangos de corte congeladas.

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Anais do Prêmio Lamas - 2011SanidadeSOBREVIVÊNCIA DE Campylobacter TERMÓFILOS EM AMOSTRAS DE FRANGOS DE CORTE CONGELADAS D Voss-Rech1, L Alves2, J Pozza3, CSL Vaz1* 1Embrapa Suínos e Aves. Concórdia, SC, Brasil.2Bolsista ITI-CNPq (Embrapa/Universidade do Contestado - UnC). Concórdia, SC, Brasil.3Bolsista PIBIC-CNPq (Embrapa/Universidade do Contestado - UnC). Concórdia, SC, Brasil.IntroduçãoCampylobacter termófilos são bactérias frequentes na avicultura de corte. Lotes positivos não apresentam sinais clínicos ou perdas significativas na produção, a preocu-pação está associada à segurança dos alimentos, onde a carne de frango contaminada pela bactéria durante o abate é vista como um fator de risco para a infecção de consumidores. Embora sejam conhecidos níveis de mais de 70% de prevalência em granjas de frangos de corte (1), o diagnóstico e cultivo laboratorial de Campylobacter são difíceis devido às necessidades de atmosfera e meios de cultivo específicos, e sensibilidade à exposição ao oxigê-nio, que implica no rápido processamento das amostras no laboratório. O Campylobacter também é sensível ao congelamento, que é descrito como capaz de reduzir ou inviabilizar a bactéria. Por esse motivo, o congelamento da carne de frango poderia favorecer a redução da bac-téria eventualmente presente no produto. Por outro lado, amostras enviadas a laboratórios para realização de monitoria bacteriológica de Campylobacter não poderiam ser congeladas para a remessa. O presente trabalho teve por objetivo testar a sobrevivência de Campylobacter termófilos em materiais avícolas submetidos a diferentes períodos de congelamento.Material e MétodosForam utilizadas amostras de frangos de corte com 5 semanas de idade, alojados em 2 aviários comerciais de uma granja. O lote foi considerado positivo pelo isolamen-to de Campylobacter jejuni a partir de suabe de arrasto. Foi coletado um total de 4 amostras de fezes, 4 suabes de arrasto e 4 amostras da cama, os quais foram trans-portados ao laboratório em cerca de 3 volumes de Caldo Bolton sob refrigeração; e 4 suabes de cloaca (pool de 3 aves), transportados em Cary Blair. As amostras foram submetidas a tratamento térmico por congelamento a -70°C pelo período de 7, 12, 16 e 70 dias, seguido da pesquisa de Campylobacter termófilos pelo isolamento bacteriológico (2). Os isolados foram confirmados pela coloração de Gram, catalase e oxidase; e submetidos às provas de hidrólise do hipurato e hidrólise do acetato de indoxil, para diferenciação das espécies. Sete isolados foram genotipificados por PFGE, utilizando a enzima SmaI, conforme previamente descrito (3). Os padrões de macror-restrição foram analisados pelo Bionumerics 6.1 (Applied Maths) com similariade calculada pelo coeficiente de Dice e dendograma gerado pelo UPGMA. Como controles fo-ram utilizados C. fetus subsp. fetus (ATCC 27374), C. coli (ATCC 33559), C. jejuni subsp. jejuni (ATCC 33560), C. jejuni subsp. doylei (ATCC 49349 ) e C. lari (ATCC 35221).Resultados e DiscussãoFoi isolado Campylobacter de aproximadamente 62% das amostras pesquisadas (10/16), dos quais 9 foram identificados como C. jejuni e 1 como C. coli (Tabela 1). O tempo de congelamento não influenciou a recuperação da bactéria, que foi isolada até o 70º dia em ao menos uma das amostras avaliadas em cada período.A análise de macrorrestrição por PFGE diferenciou os isolados em 2 genótipos, que foram distintos das amostras padrões ATCC, utilizadas como controle do teste (Figura 1).Figura 1 - Relação dos genótipos identificados por PFGE nos isolados de C. jejuni.ConclusãoO tratamento térmico por congelamento a -70ºC por até 70 dias não impediu a recuperação de Campylobacter termófilos das matrizes avaliadas (cama, fezes, suabe de cloaca e suabe de arrasto), e por isso o efeito prático do congelamento sobre a bactéria em amostras avícolas deve ser melhor investigado.Bibliografia1. European Food Safety Authority. EFSA Journal, v.8, n.3, p. 1-99. 2010.2. International Organization for Standardization. 2006. 10272-1: Microbiology of food and animal feeding stuffs - Horizontal method for detection and enumeration of Campylobacter sp. 3. Ribot EM. et al. J. Clin. Microbiol. 2001; 399(5):1889-1894.Tabela 1 - Campylobacter termófilos isolados após diferentes períodos de congelamento.Dias à -70°C Material nº de amostras/ n° de positivos Espécie (número de identificação)7 Fezes 2/0 -S. cloaca 2/2 C. jejuni (15729, 15730)12 S. arrasto 2/2 C. coli, C. jejuni (15731)Cama 2/0 -16 Fezes 2/2 C. jejuniS. cloaca 2/2 C. jejuni (15737, 15732)70 Cama 2/1 C. jejuni (15744)S. arrasto 2/1 C. jejuni(15745)S.: Suabe; nº: número de amostras analisadas e de positivas.

Sobrevivência de Campylobacter termófilos em amostras de frangos de corte congeladas.

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