Os fitonematoides são considerados um dos principais fatores limitantes ao cultivo do abacaxizeiro. Estes patógenos causam danos consideráveis às raízes das plantas, diminuindo a eficiência das adubações pela redução da absorção de nutrientes. As plantas apresentam sistema radicular reduzido, folhas cloróticas, estreitas e de tamanho reduzido. Consequentemente, a produção é retardada e com frutos de baixo peso e valor comercial reduzido (Arieira et al., 2008)

BARBOSA, D. H. S. G.

JUNGHANS, D. T.

PADUA, T. R. P. de

SANTOS, A. C. dos

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REAÇÃO DE GENÓTIPOS DE ABACAXIZEIRO AO NEMATOIDE Pratylenchus 1 brachyurus 2 DIMMY HERLLEN SILVEIRA GOMES BARBOSA1, ANAILDE CAVALCANTE DOS 3 SANTOS2, DAVI THEODORO JUNGHANS1, TULLIO RAFAEL PEREIRA DE PÁDUA1 4 INTRODUÇÃO 5  Os fitonematoides são considerados um dos principais fatores limitantes ao cultivo do 6 abacaxizeiro. Estes patógenos causam danos consideráveis às raízes das plantas, diminuindo a 7 eficiência das adubações pela redução da absorção de nutrientes. As plantas apresentam sistema 8 radicular reduzido, folhas cloróticas, estreitas e de tamanho reduzido. Consequentemente, a 9 produção é retardada e com frutos de baixo peso e valor comercial reduzido (Arieira et al., 2008).  10 Há relatos de mais de 100 espécies de fitonematoides associadas ao sistema radicular do 11 abacaxizeiro (SIPES et al., 2005), porém a patogenicidade da maioria das espécies encontradas é 12 ainda pouco conhecida. Os nematoides mais danosos ao abacaxizeiro são Pratylenchus brachyurus, 13 Meloidogyne javanica, M. incognita e Rotylenchulus reniformis (COSTA e MATOS, 2000; SIPES 14 et al., 2005). 15 No Brasil foi observada a presença de fitonematoides em várias regiões produtoras, 16 sobretudo nos Estados de Minas Gerais, Paraíba, Bahia, Sergipe, Espírito Santo, São Paulo e Rio de 17 Janeiro.  18 Os sintomas gerais no campo de ataque por P. brachyurus são semelhantes aos causados por 19 outros nematoides. Entre eles podem ser citados: sistema radicular necrosado e pobre, redução do 20 crescimento das plantas provocando reboleiras, coloração amarelada e avermelhada das folhas e 21 perda de turgescência da folha com murchamento das pontas, lembrando sintoma de deficiência 22 nutricional ou estresse hídrico, prolongamento do estádio vegetativo, diminuição do peso de frutos, 23 da produção, e em casos mais severos, a morte da planta (FERRAZ e ZEM, 1982). 24 Das táticas de manejo de nematoides (cultural, químico, genético e biológico), poucas de 25 mostram economicamente adequadas às práticas do produtor, havendo a necessidade de busca de 26                                                           1 Embrapa Mandioca e Fruticultura, Rua Embrapa s/n, Chapadinha, Cruz das Almas/ BA, 44380-000, Brasil, dimmy.barbosa@embrapa.br  2Universidade Federal do Recôncavo da Bahia, Rua Rui Barbosa 710,  Centro,  Cruz das Almas/BA, 44380-000, Brasil  novas alternativas no controle em substituição aos nematicidas, por serem altamente tóxicos ao 27 homem e ao meio ambiente. 28 A identificação e o uso de fontes de resistência ou tolerância a nematoides são considerados 29 altamente apropriados para a redução de problemas nematológicos (HARTMAN ET AL., 2010). 30 Diante disso, existe uma grande necessidade de se obter variedades geneticamente melhoradas para 31 a resistência ou tolerância a nematoides, garantindo uma produção sustentável e ambientalmente 32 segura. Desta forma, o objetivo deste trabalho foi avaliar o comportamento de diferentes genótipos 33 de abacaxizeiro à Pratylenchus brachyurus. 34 MATERIAL E MÉTODOS 35 As mudas dos genótipos de abacaxizeiro foram produzidas no viveiro do setor de campos 36 experimentais da Embrapa Mandioca e Fruticultura e, posteriormente, transplantadas para vasos de 37 3 litros de capacidade, com substrato na proporção de 3:1:1 de solo, areia e esterco, 38 respectivamente.  39 O inoculo foi obtido de raízes de abacaxizeiro previamente inoculadas com uma população 40 de P. brachyurus que faz parte da coleção biológica do Laboratório de Nematologia da Embrapa 41 Mandioca e Fruticultura. Os nematoides foram extraídos das raízes de acordo com a metodologia 42 proposta por Boneti e Ferraz (1981).  43   O experimento foi instalado em um delineamento inteiramente casualizado com 16 44 tratamentos (genótipos) e 08 repetições. Após 60 dias do transplantio, as mudas foram inoculadas 45 com 1.000 indivíduos (ovos + J2) de P. brachyurus, através de dois orifícios opostos abertos ao 46 redor das mudas de modo a expor as raízes e a suspensão de nematoides (2 mL) depositada sobre as 47 raízes. 48 Após 120 dias da inoculação, procedeu-se a avaliação do desenvolvimento vegetativo e do 49 comportamento dos genótipos de abacaxizeiro inoculados com P. brachyurus, sendo avaliadas as 50 seguintes variáveis: peso da parte aérea, peso do sistema radicular, número de nematoides nas raízes 51 (BONETI E FERRAZ, 1981), número de nematoides no solo (JENKINS, 1964), população final 52 dos nematoides, fator de reprodução, redução do fator de reprodução e reação dos genótipos (tabela 53 1). O fator de reprodução (FR) foi calculado dividindo-se a população final por vaso pela população 54 inicial inoculada (SEINHORST, 1967). O comportamento dos genótipos inoculados (C) foi 55 estabelecido utilizando-se os critérios estabelecidos por Moura & Regis (1987). 56  Os dados foram submetidos à análise de variância e as médias comparadas pelo teste de 57 Tukey ao nível de 5% de probabilidade com o uso do programa de análises estatísticas SISVAR 58 (FERREIRA, 2008).  59 RESULTADOS E DISCUSSÃO 60 Dos 16 genótipos avaliados, 01 comportou-se como altamente suscetível - S (Gold), 05 61 como pouco resistentes - PR (PA x PE01, Perola, Perolera, PE x SC60, SC48 x PRI02), 09 como 62 moderadamente resistentes - MR (Smooth cayenne, PE x SC73, BRS Imperial, BAG 344, PE x 63 SC52, BRS Vitória, BRS Ajubá, SC x PRI21, BAG194) e 01 como resistente - R (IAC Fantástico) à 64 P. brachyurus (tabela 1). 65 Tabela 1 – Valores médios do desenvolvimento vegetativo das plantas e multiplicação de 66 Pratylenchus brachyurus em diferentes genótipos de abacaxizeiro avaliados 120 dias após a 67 inoculação sob condições de casa de vegetação, Cruz das Almas – BA, 2014. 68 Genótipo Peso da Parte aérea (g) Peso de Raízes (g) NP Raízes NP solo  NP final (solo + raiz) FR %RFR C PA x PE01 385,0 a 14,4 b 680,0 b 150,0 b 830,0 c 0,83 65,4 PR GOLD 250,6 b 11,3 c 1899,4 a 500,0 a 2399,4 a 2,4 100,0 AS SC 197,5 b 8,1 c 413,1 b 212,5 b 625,6 c 0,62 73,9 MR BRS IMPERIAL 313,8 a 13,1 b 216,9 b 262,5 a 479,4 c 0,48 80,0 MR BAG344 334,4 a 15,0 b 117,1 b 162,5 b 265,0 c 0,26 89,0 MR PE x SC52 219,4 b 10,6 c 209,3 b 100,0 b 283,1 c 0,28 88,2 MR BRS VITÓRIA 184,4 b 6,3 c 146,7 b 62,5 b 172,5 c 0,17 92,8 MR PE x SC73 389,4 a 20,0 a 424,2 b 112,5 b 430,6 c 0,43 82,1 MR IAC FANTASTICO 232,5 b 11,9 c 131,7 b 0,0 b 98,8 c 0,1 95,9 R PEROLA 344,4 a 14,4 b 258,1 b 412,5 a 670,6 c 0,67 72,1 PR BRS AJUBA 176,3 b 6,9 c 179,0 b 37,5 b 149,4 c 0,15 93,8 MR SC x PRI21 362,5 a 16,9 b 527,9 b 50,0 b 511,9 c 0,51 78,7 MR BAG194 189,4 b 5,6 c 273,3 b 75,0 b 177,5 c 0,17 92,6 MR PEROLERA 329,4 a 21,3 a 424,4 b 362,5 a 786,9 b 0,78 67,2 PR PE x SC60 155,6 b 8,1 c 518,1 b 75,0 b 593,1 c 0,6 75,3 PR SC48 x PRI02 339,4 a 21,3 a 1022,5 a 337,5 a 1104,4 b 1,1 54,0 PR NP – nível populacional; FR – fator de reprodução; RFR – redução do FR; C – comportamento 69 Médias seguidas pela mesma letra na coluna não diferem entre si pelo teste de Scoot & Knott ao nível de 5 % de 70 probabilidade 71  72 Os genótipos (variedades e híbridos) apresentaram reações bem diferenciadas, desde 73 altamente suscetível (Gold) a resistente (IAC Fantástico) à P. brachyurus. As variedades Smooth 74 cayenne, BRS Imperial, BRS Vitória e BRS Ajubá comportaram-se como moderadamente 75 resistente, enquanto Pérola e Perolera comportaram-se como pouco resistente à P. brachyurus. 76 No Brasil, as observações realizadas por intermédio de experiências indicam que a campo as 77 populações de P. brachyurus ocorrem em maiores níveis populacionais na cultivar Pérola do que na 78 Smooth Cayenne. Em trabalho realizado na Estação Experimental de Pindorama do Instituto 79 Agronômico de Campinas (IAC) foi observado que as variedades Natal Queen e Pérola são mais 80 suscetíveis à P. brachyurus do que Smooth Cayenne, reconhecidamente suscetível à espécie em 81 questão (DINARDO-MIRANDA et al., 1996). Estudo realizado na Embrapa Mandioca e 82 Fruticultura em casa de vegetação selecionou genótipos com resistência a P. brachyurus, 83 destacando como pouco resistentes os genótipos H-3607, LBB-1396, Perolera, FRF-609 e 84 Primavera (COSTA et al., 1999). Na Costa do Marfim, seis clones do grupo Queen e oito do grupo 85 Pérola mostraram-se muito suscetíveis a P. brachyurus. Os resultados encontrados neste trabalho 86 para os genótipos Perola e Perolera, concordam com Dinardo-Miranda et al. (1996) e Costa et al. 87 (1999).  88 CONCLUSÕES 89 A variedade IAC Fantástico comportou-se como resistente, Smooth cayenne, BRS Imperial, 90 BRS Vitória e BRS Ajubá comportaram-se como moderadamente resistente, enquanto Pérola e 91 Perolera comportaram-se como pouco resistente e Gold como altamente suscetível à P. brachyurus. 92 REFERÊNCIAS 93 ARIEIRA, C. R. D.; MOLINA R. O.; ALESSANDRA T. C. Nematóides Causadores de Doenças 94 em Frutíferas. Agroambiente On-line, Boa vista, v. 2, n. 1, p. 46-52, jan/jun 2008. 95 COSTA, D. da C.; MATOS, A. P. Nematoses. Empresa Brasileira de Pesquisa Agropecuária. 96 Embrapa Mandioca e Fruticultura Tropical. Cruz das Almas, Bahia, 2000. 97 COSTA, D. da C.; CABRAL, J. R. S.; CALFA, C. H.; ROCHA, M. A. C. Seleção de genótipos de 98 abacaxi para resistência a Meloidogyne javanica e Pratylenchus brachyurus. Pesquisa Agropecuária 99 Tropical, v. 29, n. 1, p. 57-60, 1999. 100 DINARDO-MIRANDA, L. L.; SPIRONELLO, A.; MARTINS, A. L. M. Reação de variedades de 101 abacaxizeiro a Pratylenchus brachyurus. Nematologia Brasileira, Piracicaba, v. 20, n.1, p. 1- 7. 102 1996. 103 FERRAZ, L. C. C. B.; ZEM, A. C. Nematóides parasitos do abacaxizeiro. In: RUGIERO, C. 104 Simpósio Brasileiro sobre Abacaxicultura, 1, Jaboticabal, SP. Anais... Jaboticabal, SP: FCAV, 105 1982, v. 1, p.179-191. 106 GUÉROUT, R. Competition  Pratylenchus brachyurus-Meloidogyne sp. dans les cultures d’ ananas 107 de Côte d’Ivore. In: Brill, L.J. (ed.). Proceedings of 8th International Nematology Symposium. The 108 Netherlands, p. 64-69.1965  109 KEETCH, D. P. Nematodes pests of pineapple. In: Keetch, D.P.; Heyns, J. (EDS) Nematology in 110 South Africa. Department of Agriculture and Fisheries, Pretoria, South Africa, p. 9-29, 1982.  111 MANSO, E.C., TENENTE, R.C.V., FERRAZ, L.C.B., OLIVEIRA, R.S.O., MESQUITA, R. (1994) 112 Catálogo de Nematoides Fitoparasitos Encontrados associados a Diferentes Tipos de Plantas no 113 Brasil. Centro Nacional de Pesquisa de Recursos Genéticos e Biotecnologia. EMBRAPA-SPI. 114 Brasília, p. 354-355. 115 PLOETZ, R. C.; ZENTMYER, G. A.; NISHIJIMA, W. T.; ROHRBACH, K. G.; OHR, H. D. 116 Compendium of tropical fruit diseases. Saint Paul: APS Press, 1994. 88p. 117 ROHRBACH, K. G.; APTO, W. J. Nematodes and disease problems of pineapple. Plant disease, v. 118 70, p. 81-87, 1986. 119 SARAH, J. L. Influence of Pratylenchus brachyurus on the growth of development of pineapple in 120 the Ivory Coast. XVIII International Symposium E.S.N., Antibes. Revue de Nematologie, v. 9, p. 121 308-309, 1986.  122 SEINHORST, J.W. Review of methods for measuring damage caused by nematodes. FAO 123 Symposium on crop losses, 2-6 oct., Rome, 1967. 124 SIPES, B. S.; CASWELL-CHEN, E. P.; SARAH, J. L.; APT, W. J. Nematode parasites of 125 pineapple. In: LUC, M.; SIKORA, R. A.; BRIDGE, J. (EDS). Plant Parasitic Nematodes in 126 Subtropical and Tropical Agriculture. 2nd edition. Wallingford: CABI Publishing, 2005, p. 709-127 731.  128 SIPES, B. S.; SCHMITT, D. P. Rotylenchulus reniformis damage thresholds on pineapple. Acta 129 Horticulturae, v. 529, p. 239-245, 2000.  130 SIPES, B. S.; SCHMITT, D. P. Evaluation of pineapple, Ananas comosus, for host-plant resistance 131 and tolerance to Rotylenchulus reniformis and Meloidogyne Javanica. Nematropica, v. 24, p. 113-132 121, 1994. 133 TIHOHOD, D. Guia prático de identificação de fitonematóides. Jaboticabal: FCAV, FAPESP, 134 1997, 246p. 135 

Reação de genótipos de abacaxizeiro ao nematoide Pratylenchus Brachyurus.

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