ARAÚJO, W. F.

CHAGAS, E. A.

MELO, R. de S.

MENDES, P. dos S.

PEREIRA NETO, M. da S.

VENÂNCIO, J. B.

RCAAP - Repositório Científico de Acesso Aberto de Portugal

Desenvolvimento de mudas micropropagadas de abacaxizeiro sob diferentes substratos.

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 DESENVOLVIMENTO DE MUDAS MICROPROPAGADAS DE ABACAXIZEIRO SOB DIFERENTES SUBSTRATOS   WELLINGTON FARIAS ARAÚJO1; MARCELINO DA SILVA PEREIRA NETO2;  JEFFERSON BITTENCOURT VENÂNCIO3; RAFAEL DE SOUSA MELO4; PATRÍCIA DOS SANTOS MENDES5; EDVAN ALVES CHAGAS6  INTRODUÇÃO A técnica de aclimatização das plantas micropropagadas é um processo artificial que consiste em retirar a planta da condição in vitro e transferi-la para ambiente protegido, objetivando ajustá-la ao novo ambiente até sua completa aclimatação (GUERRA; NODARI, 2006).  Nesse processo a produção de mudas é influenciada por fatores internos de qualidade das sementes ou mudas e fatores externos, como água, luz, temperatura, oxigênio e agentes patogênicos, associados ao tipo de substrato (NOMURA et al., 2008). Existem vários substratos comerciais no mercado, entretanto, podem ser utilizadas diversos matérias, disponíveis na propriedade, para a composição de um substrato alternativo com boa estrutura, aeração, capacidade de retenção de água e sem patógenos propiciando adequado desenvolvimento as mudas. O abacaxizeiro (Anana comosus (L.) Merril) é uma espécie da família Bromeliaceae, de grande importância econômica no Brasil, onde a micropropagação tem sido empregada para obtenção de materiais livres de doenças. Assim, objetivou-se com este trabalho verificar o efeito de diferentes substratos, comerciais e alternativos, no desenvolvimento de mudas micropropagadas de abacaxizeiro cv. Pérola em fase de aclimatização.  MATERIAL E MÉTODOS O experimento foi conduzido em casa de vegetação localizada no campus Cauamé na Universidade Federal de Roraima, Boa Vista, RR, Brasil cujas coordenadas geográficas de referência são: 02º42’30”N e 47º38’00”W; 90m de altitude. O clima é do tipo Aw, segundo a                                                  1Eng. Agr., Prof. Associado, Universidade Federal de Roraima (UFRR)-RR, e-mail: wellington@cca.ufrr.br  2Eng. Agr., estudante de Agronomia, UFRR-RR, e-mail: marceloand2@hotmail.com   3Eng. Agr., estudante de pós-graduação, Bolsista MEC/Reuni, UFRR – RR, e-mail: jeffersonbittencourtvenncio@gmail.com 4Eng. Agr., estudante de Agronomia, bolsista do PIBIC/CNPq, UFRR-RR, e-mail: rafael.melo.ufrr@gmail.com 5Eng. Agr., estudante de pós-graduação, Bolsista MEC/Reuni, UFRR – RR, e-mail: pati_neg@hotmail.com 6Eng. Agr., pesquisador Embrapa Roraima, RR, e-mail: echagas@cpafrr.embrapa.br 3262  classificação de Köppen, com período chuvoso de meados de abril a setembro, precipitação média anual de 1614 mm, temperatura do ar de 26,7°C e umidade relativa do ar, 79%. Utilizou-se como explantes, plântulas de abacaxi cv. Pérola, oriundas do cultivo in vitro, cultivadas em meio MS na Biofábrica (CCA/UFRR). Após 60 dias, os explantes foram repicados em duas partes e transferidos para frascos de 250 ml contendo 30 ml de meio MS líquido, acrescidos de 1,0  mg L-¹ de BAP e 0,25 mg L-¹ ANA (ácido naftalenacetico), pH (5,8 ± 0,1) e, mantidos em sala de crescimento por 30 dias. Quando as plântulas atingiram 5 cm de comprimento, foram retiradas dos frasco, lavadas para a retirada do excesso de meio e transferidas tubetes de 15 cm de comprimento, contendo o substrato vivatto®, onde permaneceu em ambiente protegido por 30 dias. Após esse período, quando as plântulas tinham 10 cm de comprimento, foram transplantadas para sacos plásticos de polietileno, 15 x 25 cm, contendo diferentes substratos e colocadas em ambiente protegido. O ambiente protegido possuía 3,5m de pé direito, coberto com polietileno transparente de 100 micra de espessura e um telado com 50% de sombreamento. As mudas eram irrigadas duas vezes ao dia por 10 minutos de forma a proporcionar um bom desenvolvimento. Também a temperatura do ar foi monitorada diariamente por meio de um termômetro digital instalado a 2m do solo no centro do ambiente protegido. O delineamento estatístico utilizado foi o inteiramente casualizado com 6 tratamentos e 12 repetições. Os tratamentos foram formados pelos diferentes substratos, a saber: T1 - padrão (solo+areia); T2 – organamazon®; T3 - padrão + 25% esterco; T4 - padrão + 25% casca de arroz carbonizada (CAC); T5 - padrão + 25% CAC + 25% esterco; T6 - vivatto®. Aos 90 dias após o transplante para os sacos de polietileno, foram analisadas as seguintes variáveis: Número de folhas (NF), altura de plantas (Alt), massa fresca da parte aérea (MFPA), massa seca da parte aérea (MSPA), massa fresca das raízes (MFRaiz), massa seca das raízes (MSRaiz) e área foliar (AF). Os dados experimentais foram submetidos à análise de variância e quando significativos, os valores das médias foram comparados pelo teste de Tukey a 5% de probabilidade.  RESULTADOS E DISCUSSÃO No ambiente protegido foram observadas médias de temperatura máximas e mínimas do ar no valor de 40,3oC e 24,6oC, respectivamente. A aclimatização de mudas micropropagadas de abacaxizeiro resultou em altas taxas de sobrevivência (dados não mostrados), sem problemas para todos os substratos testados. Os resultados da análise de variância (p<0,05) indicaram que os substratos utilizados interferiram de forma diferenciada nas variáveis avaliadas (Tabela 1). 3263  Em geral, o tratamento 1 mostrou os piores resultados, ou seja, o substrato solo, evidenciando a necessidade de se ter um componente orgânico, para o bom desenvolvimento de mudas micropropagadas de abacaxizeiro, durante a aclimatização.  Tabela 1 – Número de folhas (NF), altura de plantas (Alt), massa fresca da parte aérea (MFPA), massa seca da parte aérea (MSPA), massa fresca das raízes (MFRaiz), massa seca das raízes (MSRaiz) e área foliar (AF) de mudas de Abacaxi cv. Pérola cultivada em diferentes substratos.  Tratamento NF Alt (cm) MFPA (g) MSPA (g) MFRaiz(g) MSRaiz(g) AF (cm2) T1  15,16 d 15,28 d 23,88 d 3,66 c 16,40 b 3,87 a 256,05 c T2 22,58 ab 34,16 a 105,97 a 13,84 a 22,66 ab 4,08 a 875,05 a T3 21,00 cd 29,25 b 57,61 b 6,72 b 15,02 b 2,65 a 461,19 b T4 19,08 c 19,89 c 34,74 cd 4,65 bc 21,74 ab 3,61 a 298,73 c T5 24,16 a 34,30 a 97,86 a 12,57 a 20,04 b 4,11 a 842,14 a T6 20,41  bc 18,70 c 45,01 c 6,07 b 27,92 a 3,24 a 405,15 bc * Médias seguidas de mesma letra na vertical não diferem estatisticamente pelo teste de Tukey a 5% de probabilidade. T1 - solos padrão (solo+areia); T2 – organomazon®; T3 - padrão + 25% esterco; T4 - padrão + 25% casca de arroz carbonizada (CAC); T5 - padrão + 25% CAC + 25% esterco; T6 – vivatto®.     Maior NF, Alt, MFPA, MSPA e AF foram observados em plantas cultivadas nos substratos T5 (padrão + 25% CAC + 25% esterco) e T2 (organomazon®); enquanto as cultivadas em T3 (padrão + 25% esterco) e T6 (vivatto®) apresentaram um desempenho intermediário, seguido pela cultivadas em T4 (padrão + 25% casca de arroz carbonizada - CAC) e T1(solo+areia).  Sugerindo que mudas provenientes dos tratamentos T5 e T2 terão melhores índices de pegamento no campo por apresentarem estruturas relativas à parte aérea mais desenvolvidas, propiciando uma adequada captação de energia solar e produção de fotoassimilados. Provavelmente, esses tratamentos apresentaram um substrato com boa composição física e química. Vários autores têm tentado obter uma porosidade ideal e, possibilitando o fornecimento de água e oxigênio de maneira adequada, pelo ajuste da taxa de constituintes de substrato (ARAUJO et al., 2007; FERREIRA et al., 2009). Para isto diversos materiais são utilizados: solo, areia, turfa, serragem, CAC, húmus, resíduos orgânicos, entre outros. Em outros, o húmus é utilizado na composição, o que melhora a parte física e química dos substratos. Salvador (2000) e Silva (2001) obtiveram ótimos resultados em cultivo convencional de gloxínia em estufa, utilizando-se como substrato composto de vermiculita, húmus e perlita (1:2:0,5). Esses resultados evidenciam a necessidade de se ter proporções adequadas de componentes no substrato, principalmente de matéria orgânica, para o adequado desenvolvimento das plantas. Apesar de mudas de abacaxizeiro micropropagadas serem de fácil enraizamento é importante observar o desenvolvimento das raízes na fase de aclimatização visto que as raízes 3264  formadas in vitro não são funcionais e por isso novas raízes devem ser formadas. Nota-se que os vários substratos utilizados não influenciaram no desenvolvimento radicular, cabendo à escolha de um ou outro, ser feita em função da disponibilidade para o produtor.   CONCLUSÃO O substrato comercial organomazon® e a mistura de substrato solo + areia (padrão), acrescido de 25% de casca de arroz carbonizada e 25% de esterco foram os que proporcionaram maior crescimento e desenvolvimento as mudas de abacaxi cv. Pérola.  AGRADECIMENTO Os autores agradecem ao CNPq (Processo 575587/2008-3) e a SUFRAMA pelo financiamento da pesquisa.  REFERÊNCIAS   ARAUJO, A.G. de; PASQUAL, M.; DUTRA, L. F.; CARVALHO, J. G.; SOARES, G. A. Substratos alternativos ao xaxim e adubação de plantas de orquídea na fase de aclimatação. Ciência Rural, Santa Maria, v.37, n.2, p.569-571, 2007. FERREIRA, M.G.R.; ROCHA, R.B.; GONÇALVES,E.P.; ALVES, E.U.; RIBEIRO,G.D. Influência do substrato no crescimento de mudas de cupuaçu (Theobroma grandiflorumSchum.). Acta Scientiarum,  v.31, n.4, p. 677-681. 2009. GUERRA, M. P.; NODARI, R. O.  Material didático de apoio à disciplina de Biotecnologia. Disponível em: <http://www.cca.ufsc.br/lfdgv/Apostila.htm>. Acesso em: 08 fev. 2012.         SALVADOR, E. D. Caracterização física e formulação de substratos para o cultivo de algumas plantas ornamentais. 2000. 148 f. Tese (Doutorado em Produção Vegetal) Escola Superior de Agricultura de Luiz de Queiroz, Piracicaba, 2000. SILVA, A. B. Multiplicação in vitro e aclimatização de gloxínia (Sinningia speciosa Lodd. Hiern.). 2001. 59 p. Dissertação (Mestrado em Fitotecnia) Universidade Federal de Lavras, Lavras, 2001. NOMURA, E. S.; LIMA, J. D.; GARCIA, V. A.; RODRIGUES, D. S. Crescimento de mudas micropropagadas da bananeira cv. Nanicão em diferentes substratos e fontes de fertilizante. Acta Scientiarum. Agronomy, v. 30, n. 3, p. 359-363, 2008 3265

http://www.alice.cnptia.embrapa.br/alice/bitstream/doc/950928/1/Wellington2desenvolvimentosdemudasabacaxi.pdf

Desenvolvimento de mudas micropropagadas de abacaxizeiro sob diferentes substratos.

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